软枣猕猴桃叶片缺素症的溶液培养法研究

魏丽红

摘要：采用溶液培養研究方法，研究缺素处理对猕猴桃幼苗叶片生长发育的影响。结果表明，从6月16日定植到7月11日，大部分处理的猕猴桃幼苗长势较好，有新叶萌发，生长迅速。部分缺素处理的猕猴桃幼苗叶片表现出缺素症状。从7月11日到8月7日，所有缺素处理的幼苗状态不佳，新叶生长缓慢或停止。到8月7日，除完全营养液的处理外，其余所有缺素处理的猕猴桃叶片均表现出缺素症状。

关键词：溶液培养；缺素症；猕猴桃叶片；生长发育

中图分类号：S663.4 文献标识码：A 文章编号：0439-8114（2017）15-2888-05

DOI：10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2017.15.023

Abstract： The solution cultivation methods was taken to study the effects of deficiency on the kiwifruit leaves. The results showed， from June 16th to July 11th， kiwifruit plants of most treatments grew well， new leaves have sprout and grew rapidly. Kiwifruit leaves of several deficiency treatments showed deficiency symptoms. From July 11th to August 7th， kiwifruit plants of all deficiency treatments were in poor growth states， new leaves grew slowly or stopped growing at all. Until August 7th， except for the complete nutrient solution treatment， kiwifruit leaves of all other deficiency treatments showed deficiency symptoms.

Key words： solution cultivation； deficiency disease； kiwifruit leaves； growth and development

猕猴桃必需的营养元素有多种[1]，缺少某一种都会表现出特有的症状。当植株缺乏矿质元素时，叶片的颜色、外部形态会发生相应的改变。叶片外部形态诊断是确定叶片营养水平的重要依据，是诊断缺素与否的有效手段，在一定程度上，叶片外部形态诊断可作为对果树潜在营养状况进行诊断的参考标准。为此，试验采用溶液培养研究法，研究不同缺素处理对猕猴桃叶片生长的影响，获得健康猕猴桃叶片及缺素叶片的叶色图谱，以期为今后的猕猴桃缺素症诊断及矫正提供一定的理论依据。

1 材料与方法

1.1 试验设计

试验材料为软枣猕猴桃幼苗，试验在辽宁农业职业技术学院食品药品系主体实验室进行。试验共设13个处理，每个处理两次重复。随机区组设计。处理1为完全营养液，处理2到处理13分别为缺氮、缺磷、缺钾、缺钙、缺镁、缺铁、缺锰、缺铜、缺锌、缺硼、缺钼和缺氯营养液。

1.2 休伊特营养液的母液配制

试验主要为了研究某种营养元素对植物的生理效应，因此采用不完全营养液，同时做完全营养液的对照。试验采用的是休伊特营养液[2]，其母液配制如下。

1号母液：称取27.8 g FeSO4·7H2O，溶于水后，稀释到1 000 mL；2号母液：称取2.496 g MnSO4·H2O，溶于水后，稀释到1 000 mL；3号母液：称取0.240 g CuSO4·5H2O，溶于水后，稀释到1 000 mL；4号母液：称取0.290 g ZnSO4·7H2O，溶于水后，稀释到1 000 mL；5号母液：称取1.860 g H3BO3，溶于水后，稀释到 1 000 mL；6号母液：称取0.350 g （NH4）6Mo7O24·4H2O，溶于水后，稀释到1 000 mL；7号母液：称取5.850 g NaCl，溶于水后，稀释到1 000 mL。

1.3 休伊特完全营养液处理及缺素处理

休伊特完全营养液处理及各个缺素[2]处理的溶液配制如表1。对于完全营养液处理以及每种缺素处理，按表1所列的量，称取试剂及量取母液，加入对应的缺素容器内，迅速用玻璃棒搅拌溶解。所有试剂及母液加入完毕，加蒸馏水稀释至1 000 mL。缺铁处理不加1号母液，缺锰处理不加2号母液，缺铜处理不加3号母液，缺锌处理不加4号母液，缺硼处理不加5号母液，缺钼处理不加6号母液，缺氯处理不加7号母液。其余母液的加入量同完全营养液处理。

1.4 试验管理

1.4.1 幼苗的培育和定植 短期幼苗试验采用白色的塑料盆，容积大约1 L，容器先用洗涤剂洗净，再用蒸馏水冲洗干净。盆的上方覆盖黑色的地膜，以保证溶液培养试验盆内的黑暗环境，保证根系正常生长。2016年6月16日，当幼苗根系伸长达到5～7 cm时定植。定植时选择生长均匀一致的幼苗，每个容器定植2株幼苗，待幼苗生长正常时再间苗，每盆留1株苗。

1.4.2 试验期间的管理

1）通气。在溶液培养试验中，适时适量进行通气，促进根系的生长和对养分的吸收，保证幼苗的正常生长发育。在容器内安装了自动通气装置，调节气泡进入盆内的速度为每秒2～3个气泡，幼苗生长初期每天或隔天通气10 min，以后通气的时间则加倍。当气温较高，比较闷热的天气，在营养液中加入少量H2O2，以达到供氧的目的。每个容器内加入3% H2O2溶液2～6滴，每隔1 d加一次。endprint

2）pH的调节。适宜猕猴桃幼苗生长的pH为5.0～6.5。当用酸、碱调节营养液pH时，为了消除随酸碱进入营养液中的副成分（如硫酸中的SO42-，氢氧化钠中的Na+）的影响，在未加酸碱的处理中，也加入相应的离子。

3）铁的补充。在整个试验期间，每个容器内经常加入少量的柠檬酸铁，每隔2 d加入0.1%柠檬酸铁4～8滴。

4）营养液的更换。幼苗生长过程中，不断消耗盆中的水分和养分，营养液液面逐渐下降，必须经常补充水分以保持原有的液面，使各盆的液面保持相同高度。另外，定期更换营养液，保证营养液的浓度稳定，每周更换2～4次。

2 结果与分析

2.1 部分处理表现出缺素症状

从6月16日定植开始到7月11日，各处理的猕猴桃幼苗生长状况良好，大部分植株长出新叶，同时有部分处理的叶片表现出缺素症状，具体症状见图1。从图1可以看出，如2号缺氮处理，初期叶片从深绿色渐变为淡绿色[3]，首先表现在老叶[4]，以后向新叶发展。5号缺钙处理，叶片色淡发黄，边缘向上卷曲；首先表现在老叶，并逐渐向幼叶扩展。6号缺镁处理，症状多发生于老叶，老叶脉间为浅黄绿色。出现退绿带，叶缘更加明显，由此向侧脉及中脉扩展，叶基部、主侧脉处留存相对较宽的健康带状绿色部分[5]。10号缺锌处理，缺锌时生长素合成受限[6]，使叶绿素含量降低，表现出黄化病。症状初发于老叶，老叶叶肉和脉间退绿呈亮黄色[4]。叶脉为原有的深绿色，叶缘失绿比较明显。13号缺氯处理，缺素症多见于老叶，嫩叶很少受到影响。叶片顶端和主侧脉间形成分散状失绿斑，叶缘呈连续带状失绿，老叶叶边向下反卷呈杯状。

2.2 大部分处理表现出缺素症状

从7月11日到8月7日，除完全营养液的处理外，其余所有处理的新叶均生长缓慢，表现出不同程度的缺素症状，具体见图2。从图2可以看出，1号完全营养液处理的植株，其叶片快速生长，叶色健康。2号缺氮处理，随着时间的推移，老叶边缘焦枯黄化。日灼状焦枯由叶尖开始沿叶缘向叶基部发展，坏死组织较为向上弯曲。3号缺磷处理，叶片变得小而且薄弱，形态不正常。老叶叶脉间退绿，显示出灰绿色。叶脉退色，并从叶尖向叶柄扩展。4号缺钾处理，光合作用受阻，叶片面积变小、叶的边缘破烂不完整[7]。新叶退绿较轻、老叶边缘轻微失绿。随着缺素的发展，叶片呈现向上的卷曲，叶色变为浅黄绿，逐渐萎蔫、焦枯。叶片边缘持久性卷曲，在生长后期，支脉间的叶肉组织向上部隆起，叶片组织从叶缘开始变干退绿。

5号缺钙处理，缺素早期，叶基部的叶脉变黑坏死。后期扩大的坏死组织形成坏死斑块并干枯，之后叶片破碎，变脆易于脱落。6号缺镁处理，缺素初期不会导致叶片组织坏死，但随缺镁程度的加剧，叶片退绿并逐步枯萎，叶缘或叶脉组织坏死[7]。若发生在幼嫩叶上，叶片向内侧凹陷，一部分叶缘坏死。7号缺铁处理，缺铁时幼叶叶绿素含量明显下降，叶片黄化剧烈。缺铁的症状多发于嫩叶，幼叶失绿，叶脉间颜色由淡黄色到黄白色再到苍白色，最后完全失绿，老叶一般为健康的绿色。铁在叶片内移动慢，缺铁初期失绿常在叶缘，叶边缘黄化，叶基部保持健康绿色，不会导致叶组织坏死。

8号缺锰处理，脉间失绿呈现淡黄色及淡黄绿色。严重缺锰时，症状发展到整个幼苗的所有叶片，大部分的叶子全部退绿[5]。先从叶缘开始失绿，然后在主脉间扩展并向中脉推进，仅在脉两边留有一窄带状绿色健康组织区。随着缺素的加重，除叶脉以外的整个叶肉均为蜡黄色。侧脉及主脉失绿，小叶脉间组织向上隆起，叶片大小不发生显著变化。9号缺铜处理，缺铜初见于幼嫩叶片上，叶片均匀一致失绿为淡绿色。随后脉间失绿不断加重，只有主脉维持绿色，失绿叶最终为漂白色。叶片没有韧性而变脆易落。

10号缺锌处理，缺锌出现黄化病，随着缺锌程度的加剧，叶肉和脉间退绿呈亮黄色[4]。缺锌部分与健康部分分界明显，并不产生坏死斑，有时顶端叶片生长成簇状[7]。11号缺硼处理，缺硼首先见于幼叶，受害嫩叶卷曲变形，叶尖变厚，支脉间叶肉组织时常凸起。叶心处中脉附近出现不规则的小黄斑[8]，黄斑沿中侧脉两边扩展，在中脉两侧连结成大面积黄斑，叶缘依然保持正常绿色。12号缺钼处理，猕猴桃对钼需要量极低[3]，即使叶中钼含量低于0.01 μg/g干物質时仍能正常生长。试验没有观察到缺钼症状。13号缺氯处理，叶片顶端和主侧脉间形成分散状失绿斑，叶缘呈连续带状失绿。

3 小结

试验结果表明，在软枣猕猴桃幼苗期，植株对各种营养元素需求较大，对于营养元素的缺乏较为敏感，会表现出一定的缺素症状。当缺乏某一种元素时，叶片形态和叶色都会发生明显的改变。本次试验取得了猕猴桃叶片缺氮、缺磷、缺钾、缺钙、缺镁、缺铁、缺锰、缺铜、缺锌、缺硼、缺钼和缺氯的缺素症叶色图，与健康猕猴桃叶色标准图形成鲜明对比，构建了猕猴桃缺素症叶色诊断技术，为今后缺素的诊断工作提供了可靠的参考资料。

由于8月的高温炎热天气，营养液的温度也会增高，早晚温差较大，温度变化剧烈，加上猕猴桃植株不耐热的特点，在8月中旬后，大部分处理的猕猴桃幼苗都出现了萎蔫的现象，在这之后做了降温的保护措施，但效果不理想。今后在进行营养液培养试验时，应注意温度方面的考虑，可以把容器放入流动水槽中，使水没过容器的1/2～2/3，以达到降温的目的。另外，在今后的研究中，应进行缺素植株叶片和营养液中养分的分析检测，结合猕猴桃不同缺素症，研制猕猴桃专用叶面肥。使用专用叶面肥进行缺素矫治，确定专用叶面肥的使用时期、浓度、使用次数等，并对效果进行比较评价。

参考文献：

[1] 陈永安，刘艳非，陈 鑫，等.不同施肥措施对猕猴桃叶片营养状况及果实品质与产量的影响[J].北方园艺，2004（1）：169-173.

[2] 毛达如.植物营养研究方法[M].第二版.北京：中国农业大学出版社，2005.

[3] 秦仲麒.猕猴桃缺素症及其矫治[J].中国南方果树，2001，30（3）：62-63.

[4] 苍 晶，王学东，桂明珠，等.狗枣猕猴桃果实生长发育的研究[J].果树学报，2001，18（2）：87-90.

[5] 朴一龙，赵兰花.软枣猕猴桃研究进展[J].北方园艺，2008（3）：76-78.

[6] 田宝安，刘贵珍.猕猴桃树缺素症及其防治[J].陕西林业，1997（5）：28-29.

[7] 孙兆军.猕猴桃缺素症及防治措施[J].河北果树，2008（6）：30-32.

[8] 秦玉芝，陈 军，李朝阳，等.米良1号猕猴桃营养期主要矿质元素分配、吸收特性研究[J].果树学报，2004，21（3）：212-215.endprint