APP下载

荒漠植物梭梭稳定碳同位素组成与环境因子的关系

2017-06-26程军回刘耘华刘利利李瑞霞盛建东

生态学报 2017年8期
关键词:梭梭荒漠利用效率

赵 丹,程军回,刘耘华,刘利利,李瑞霞,盛建东,*

1 新疆农业大学草业与环境科学学院, 乌鲁木齐 830052 2 新疆土壤与植物生态过程重点实验室,乌鲁木齐 830052



荒漠植物梭梭稳定碳同位素组成与环境因子的关系

赵 丹1,2,程军回1,2,刘耘华1,2,刘利利1,2,李瑞霞1,2,盛建东1,2,*

1 新疆农业大学草业与环境科学学院, 乌鲁木齐 830052 2 新疆土壤与植物生态过程重点实验室,乌鲁木齐 830052

以广泛分布于新疆荒漠地区的建群种植物——梭梭(Haloxylonammodendron)为研究对象,通过对23个样地101份梭梭同化枝样品δ13C值的测定,分析了梭梭稳定碳同位素组成的变化特征及其与环境因子(海拔、日照时数、潜在蒸散量、年平均降水量和年平均温度)的关系,并讨论了不同生境下梭梭同化枝δ13C值的变化特征。研究结果显示:(1)梭梭同化枝δ13C平均值为-14.15‰,其在95%置信区间的变化范围为-13.14‰—-15.38‰,表明梭梭是C4光合途径的植物。(2)梭梭同化枝δ13C值与年平均降水量和年平均温度呈显著负相关关系,而与日照时数、潜在蒸散量和海拔呈显著正相关关系。我们推测梭梭同化枝δ13C值对各环境因子响应趋势的不同,可能是由气孔限制因素造成的,它是梭梭适应干旱荒漠环境的一种策略。(3)在不同生境下,梭梭同化枝的碳同位素组成存在显著差异。当梭梭群落中的主要伴生种为白刺、红砂时,其δ13C值最高,当主要伴生种为沙拐枣和假木贼时,其δ13C值最低。在灰漠土与灰棕漠土样地中的梭梭δ13C值高于棕钙土、风沙土、石质土样地;盆地中梭梭同化枝δ13C值低于平原、山地、丘陵地形条件下的样地。以上结果表明:梭梭水分利用效率在不同环境梯度和生境中,存在着显著不同,表现出显著的适应策略差异。

稳定碳同位素值;环境因子;生境条件;梭梭

碳(C)是植物最重要的生命元素之一,自然界中稳定的碳同位素有两种,即12C和13C。二者在生化反应和热运动中活性的不同导致了植物利用CO2进行光合作用时碳同位素的分馏。植物δ13C值主要受遗传因素的控制,不同光合途径的植物其δ13C值范围不同,但在不同气候环境条件下同种植物的δ13C值也存在较大差异,所以植物的δ13C能够准确记录与植物生长过程相联系的气候环境信息。通过对植物δ13C值的研究,可以从中提取其生长时期相应的区域环境信息,因此,对现代植物稳定碳同位素的研究己经成为全球变化研究的一个重要内容[1- 6]。

在干旱和半干旱地区,水分可利用性是限制群落结构和生态系统功能的主要限制因子[7- 8]。在这些极度缺乏土壤水分的地区,通过对植物叶片水分利用效率(WUE, 光合速率与蒸腾速率之比)的测定,可综合反映植物碳同化过程和水分消耗之间生理特征[9]。比如:较高的WUE意味着单位重量的水分可以产生较多的干物质,从而有利于植物在干旱环境中生存。研究表明:在水分限制的地区,不同生态型间的植物,其WUE之间存在着显著差别[10],这种WUE在种间的差异,被认为和植物在群落中的多度紧密相关[11]。因此,在干旱和半干旱地区,研究建群种和优势种水分利用效率,对深入理解其生活策略,有重要意义。

在以往的研究中,常用气体交换法来测定植物的WUE,这种方法的缺点为:其测得的是瞬时WUE,只能代表某一特定时间点植物叶片的生理活动,它随生长季节和外界环境条件的变化而改变[12- 13]。因此,利用该法所测得的WUE,在不同研究中,其可比性较低。近几年,随着稳定性C同位素技术的发展,可以通过测定δ13C值分析长期积累于叶片中的碳代谢产物来评估植物生长过程中总的水分利用效率,且不受时间和季节的限定,是研究植物长期水分利用效率的最佳方法[14- 17]。

梭梭是荒漠生态系统主要的建群种之一,广泛分布于中亚荒漠地区[18]。在我国,梭梭荒漠分布面积广阔,约占整个荒漠面积的十分之一。其中新疆和内蒙古梭梭荒漠植被面积占全国梭梭荒漠植被面积的87.2%[19]。以往的研究认为,梭梭高效的水分利用效率使其能够适应水分亏缺,热量过剩等水热因素极度不平衡的荒漠环境[20]。但这些研究都是对不同地点不同群落中梭梭的单独报道,在较大空间尺度上,梭梭水分利用效率的变化特征,以及其与环境因子之间的关系仍不清楚。因此,本文以广泛分布于新疆荒漠中的梭梭为研究对象,通过野外调查,选取不同气候和土壤条件下的梭梭,通过稳定碳同位素法,试图回答以下问题:(1)在新疆荒漠中,梭梭水分利用效率呈何种变化特征?(2)环境因子(如降水量、温度等)如何影响梭梭稳定碳同位素组成?(3)不同生境下梭梭同化枝δ13C值呈何种变化特征?

1 材料和方法

1.1 研究材料

梭梭(Haloxylonammodendron),又称梭梭柴,藜科梭梭属灌木,根系发达,最深可达地下5.5m[21],防风固沙能力强,抗旱、抗热、抗寒、耐盐碱性都很强。有研究显示,梭梭当年生绿色同化枝生物量在其整个群落初级生产力的构成中作用明显,自6月上旬始占据优势地位,可占群落初级生产力的72.3%—85.8%[22]。因此,梭梭在维护荒漠生态系统的稳定方面,有重要的作用。

1.2 取样方法

在新疆荒漠区选取23个典型的梭梭群落为采样点进行采样,这些样地跨越80°44′—90°37′E,43°57′—46°40′N,海拔230—1252m (表1)。所有样本于2011—2012年的7月中旬至8月下旬这一植物生长高峰期进行采集,先用GPS定位并记录采样点的经度、纬度和海拔,然后在每个样地间隔150m设置3—5个样方,在每个样方中随机选取23—65株生长健康、没有人为干扰和病虫害影响的梭梭个体,对其同化枝进行采样。对于每个梭梭个体,从梭梭植株上、中、下不同部位随机选取同化枝,然后混合成一个整体样本进行δ13C值的测定。

表1 23个样地的地理信息及梭梭δ13C值

1.3 梭梭同化枝δ13C值测定

将梭梭同化枝洗净后及时放入105℃烘箱杀青30min后带回室内,置于70℃烘箱中烘至恒重,经球磨仪粉碎后过120目筛制成供试样品。采用Flash EA 2000型元素分析仪(Thermo Electron, USA)与Delta V Advantage气体稳定同位素质谱仪(Thermo Finnigan, German)联用测定梭梭同化枝样品的碳同位素组成,结果以PDB标准表示(Craig, 1957),根据下面公式进行计算:

δ13C(‰)=[(13C/12C)sample/(13C/12C)standard-1]×1000‰

整个测量误差不超过0.2‰。

1.4 气候数据获取

根据各样点调查的经度、纬度和海拔信息,获取各样点相对应的年平均降水量(MAP)、年平均温度(MAT),日照时数和潜在蒸散量,进一步分析梭梭同化枝δ13C与环境因子之间的关系。本文气候数据通过以下两个途径所获取:对MAP和MAT而言,首先,从中国国家气象局气候数据库(http://www.cma.gov.cn/)中获取了全国756个气象观测点近50年的气候观测数据,然后,利用Ninyerola[23]等2000年所提出的模型,以采样点的经度、纬度和海拔为自变量,利用地理信息系统(GIS)插值法推导出各采样点所对应的MAP,MAT。对日照时数和潜在蒸发量而言,因为一些气象站缺乏完整的数据记录,用空间插值进行推导时,可能会增大误差。因此,对各采样点,其日照时数和潜在蒸散量用邻近气象站的观测数据来表述。

1.5 统计分析

为了回答本文的第1个问题,利用Origin绘制了梭梭同化枝δ13C值频率分布直方图,分析了新疆荒漠中梭梭水分效率的变化特征。为了回答第2个问题,通过最小二乘法,分别分析了同化枝δ13C值与平均降水量、年平均温度、日照时数和潜在蒸散量之间的关系,并作图。为了解决第3个问题,通过单因素方差分析,反映了梭梭同化枝δ13C值在不同伴生种、土壤类型和地形条件下的差异,并利用LSD进行多重比较。

2 结果与分析

2.1 梭梭同化枝δ13C值组成特征

图1 梭梭稳定碳同位素分布直方图 Fig.1 Distribution frequency of δ13C values of Haloxylon ammodendron

研究区内所测定的101份梭梭同化枝样品的δ13C平均值为-14.15‰,最大值为-13.14‰,最小值为-15.38‰,标准误为0.05,变异系数为3.86%(表1),其在95%的置信区间,变化范围为-13.07‰—-15.23‰。由图1可知,超过一半的梭梭个体,其δ13C值介于-14.7‰—-13.7‰之间。因为C3植物的δ13C值一般分布在-23‰—-38‰之间,C4植物的δ13C值一般在-19‰—-6‰之间变化,CAM植物的δ13C值主要分布在-38‰—-13‰之间(PDB标准)[24- 25]。根据本文对梭梭δ13C值的测定可知,梭梭是C4光合途径的植物。

单因素方差分析结果显示,不同样地梭梭同化枝δ13C值之间存在着显著差异(表1),由于植物叶片的δ13C值能够间接指示植物长期水分利用效率,因此,不同样地间梭梭的水分利用效率也存在着显著差异,即梭梭水分利用效率存在着空间上的变化。

2.2 环境因子对梭梭同化枝δ13C值的影响

对梭梭同化枝δ13C值与环境因子之间关系的分析(图2)发现:在新疆荒漠中,梭梭同化枝δ13C值与年平均降水量(r=-0.233;P=0.019)和年平均温度(r=-0.214;P=0.032)呈显著负相关关系,而与海拔(r=0.314;P=0.001)、日照时数(r=0.358;P<0.0001)和潜在蒸散量(r=0.245;P=0.013),则呈显著正相关关系。这表明,梭梭的水分利用效率随着降水和温度的增加而降低,随着海拔、日照时数和潜在蒸散量的增加而升高。

图2 梭梭同化枝稳定碳同位素值(δ13C)与环境因子的关系Fig.2 Relationships between δ13C values in Haloxylon ammodendron and environment factors

2.3 不同生境下梭梭同化枝δ13C值的变化特征

研究区内梭梭的伴生种为红砂、沙拐枣、假木贼、驼绒藜、白刺,根据各样地中主要伴生种的不同,将23个梭梭群落分为6类:全梭梭、梭梭-红砂、梭梭-沙拐枣、梭梭-假木贼、梭梭-驼绒藜、梭梭-白刺。分析结果表明,群落中主要的伴生种不同,梭梭同化枝的δ13C值之间也存在显著差异,梭梭-白刺与梭梭-红砂群落中的梭梭同化枝δ13C值显著高于其他4种群落类型(P<0.05)(图3)。不同的土壤类型与地形条件下,梭梭的δ13C值存在显著差异,在灰漠土与灰棕漠土样地中的梭梭同化枝δ13C值显著高于棕钙土、风沙土、石质土样地(P<0.05)(图3);盆地中梭梭同化枝δ13C值显著低于平原、山地、丘陵地形条件下的样地(P<0.05)(图3)。

图3 不同生境下梭梭同化枝δ13C值的变化Fig.3 Variation of δ13C values in Haloxylon ammodendron in different habitats不同字母表示P<0.05水平上的差异显著

3 讨论

3.1 梭梭δ13C值组成特征

由于植物在光合作用的过程中存在碳同位素分馏,因此植物叶片的δ13C值能够间接指示植物长期水分利用效率的高低,叶片δ13C值越大,植物水分利用效率越高[16]。旺罗等[26]分析了青藏高原8种C4植物叶片的稳定碳同位素组成,其δ13C的平均值为-12.22‰。王国安等[27]探讨了中国北方黄土区C4植物稳定碳同位素的组成,发现C4植物δ13C值分布区间为-10.50‰—-14.66‰,其平均值为-12.60‰±-0.82‰。本研究区内的梭梭同化枝δ13C值与之相比略有偏轻,这是由于不同的气候区,C4植物在物种、生境等方面均存在差异,导致了其δ13C值的不同。马剑英等[28]通过对准噶尔盆地荒漠植物稳定碳同位素的分析,得出该区4种C4光合途径灌木叶片δ13C平均值为-13.10‰,其中梭梭同化枝的δ13C值为-13.68‰,本研究区内梭梭同化枝δ13C平均值为-14.15‰,与之相近。

不同光合途径的植物在光合羧化酶(C3植物为二磷酸核酮糖羧化酶,C4植物为磷酸烯醇丙酮酸羧化酶)和羧化时空上的差异导致了C3、C4植物δ13C值的显著不同。在较恶劣的环境条件下C4光合途径相对于C3途径具有较高的碳获取能力,与C3植物相比,C4植物具有更高的水分利用效率[29- 31]。新疆荒漠位于中纬度内陆干旱区,全年干旱少雨,梭梭高水分利用效率的C4光合途径,使其得以在新疆荒漠广泛分布,对研究区内荒漠生态系统的稳定起着关键作用。

3.2 环境因子对梭梭同化枝δ13C值的影响

温度是影响植物碳同位素分馏的另一个重要气候因子,温度可直接影响光合过程中酶的活性、气孔导度、CO2同化速率和Ci/Ca,从而导致碳同位素分馏的变化[45]。Wang等[46]探讨了中国北方400mm等降雨线上17种C4植物的δ13C值与年平均温度的关系,发现二者没有显著关系;而在其之后刘贤赵等[47]的控温实验发现3种C4植物的δ13C平均值与温度呈先增大后减小的抛物型关系,但在去掉最低点温度对应的δ13C值后二者呈显著的线性负相关。Troughton等[48]对5种C4植物进行了控温实验,其结果表明C4植物的δ13C值随温度升高而略微偏负。在本研究中梭梭同化枝δ13C与温度呈显著负相关关系,我们推测这是由于在本研究区炎热的气候条件下,温度升高使水分蒸散增加,气孔导度的降低,从而导致了梭梭同化枝δ13C值降低。实际上,温度对植物δ13C值的影响非常复杂,其影响植物碳同位素分馏的机理目前仍不是十分清楚。Francey等[45]认为温度对植物δ13C的影响与生长季温度是否高于或低于植物本身的最适温度有关。不同植物的最适光合温度存在差异,当环境温度低于最适光合温度时,光合效率和气孔导度均随着温度的升高而增大,且光合效率的提升幅度大于气孔导度的增加幅度,导致温度与植物δ13C呈正相关;而当环境温度高于植物的最适光合温度时,温度升高增加了水分蒸散,导致叶片部分气孔关闭,植物δ13C值偏负[49]。

目前,国内外已有大量关于C3植物δ13C值随海拔高度变化的研究,但关于C4植物δ13C值随海拔变化的研究很少。与C3植物相比,C4植物的碳同化过程较为复杂,C4植物的δ13C值不仅取决于Ci/Ca值的变化,而且与受温度控制的φ值有关。对于C4植物而言,虽然Ci/Ca主要取决于植物自身的生理和结构[50- 51],但是在一定程度上还是受光照、湿度、养分等外界环境因子的影响[52- 54]。王国安等[55]对北京东灵山C4植物δ13C随海拔高度的研究发现:C4植物总体、功能群植物和单个植物种的δ13C值都随着海拔的升高而有明显的增加趋势,这与本研究区内得到的结果相一致;而与Van de Water等[56]在美国西南部犹他州获得的结果正好相反,C4植物密叶滨藜δ13C值与海拔高度呈显著的负相关。这可能是由于不同研究区的气候条件的差异导致了C4植物δ13C随海拔高度变化的趋势不同。在本研究中,由于梭梭同化枝的δ13C值与其氮含量(数据未列出)没有显著的相关关系,因此,梭梭同化枝δ13C值随着海拔的升高而增大可能是由气孔限制因素造成的,而与养分引起的光合效率改变无关。海拔本身并不会直接对植物δ13C产生影响,而海拔高度的变化会导致温度、降水、气压、光强等气候因子的变化,因此,海拔对植物δ13C的影响是这些因子综合作用的结果。

3.3 不同生境下梭梭同化枝δ13C值的变化特征

前人的研究结果表明,不同生境下植物叶片的δ13C值变化明显[27]。陈世苹[57]等在内蒙古锡河流域的研究发现,黄囊苔草叶片δ13C值与土壤含水量呈显著负相关关系,本研究中不同的土壤类型间的梭梭δ13C值存在显著差异,这可能是由于不同土壤类型其土壤水分含量、土壤养分等土壤理化性质均存在一定的差异。需要说明的是,本研究区内的梭梭-驼绒藜群落,虽然其主要的伴生种为驼绒藜,但是群落中还包括少量的沙拐枣、假木贼等伴生种。梭梭、沙拐枣、假木贼为C4光合途径的植物,白刺、红砂、驼绒藜为C3光合途径的植物,在本研究中梭梭-白刺与梭梭-红砂群落的梭梭δ13C值显著高于梭梭-驼绒藜、梭梭、梭梭-假木贼、梭梭-沙拐枣群落,即以C3植物为伴生种的梭梭群落,其δ13C值高于以C4为伴生种的梭梭群落。由于C4植物的水分利用效率高于C3植物,在以C4植物为主要伴生种的梭梭群落中,植物间对可利用水分的竞争也更加激烈,而在干旱地区,可利用水分这一资源是十分有限的,这种激烈的竞争必然会导致梭梭可利用水分的极度匮乏,进而影响其生理活动及生长发育[58]。

4 结论

通过对梭梭同化枝δ13C值与环境因子的关系进行分析,可以得出以下初步认识:

(1)新疆荒漠区梭梭水分利用效率,存在着空间上的变化,其δ13C值的分布区间为-13.14‰—-15.38‰,平均值为-14.15‰,梭梭是C4光合途径的植物。

(2)梭梭同化枝δ13C值与年平均降水量和年平均温度呈显著负相关关系,而与日照时数、潜在蒸散量和海拔呈显著正相关关系。梭梭同化枝δ13C值对各环境因子响应趋势的不同,可能是由气孔限制因素造成的,它是梭梭适应干旱荒漠环境的一种策略。

(3)在不同生境下,梭梭同化枝的碳同位素组成存在显著差异。当梭梭群落中的主要伴生种为白刺、红砂时,其δ13C值最高,当主要伴生种为沙拐枣和假木贼时,其δ13C值最低。在灰漠土与灰棕漠土样地中的梭梭δ13C值高于棕钙土、风沙土、石质土样地;准噶尔盆地中梭梭同化枝δ13C值低于平原、山地、丘陵地形条件下的样地。以上结果表明:梭梭水分利用效率在不同环境梯度和生境中,存在着显著不同,表现出显著的适应策略差异。

[1] Schleser G H, Helle G, Lücke A, Vos H. Isotope signals as climate proxies: the role of transfer functions in the study of terrestrial archives. Quaternary Science Reviews, 1999, 18(7): 927- 943.

[2] Terwilliger V J, Eshetu Z, Colman A, Bekele T, Gezahgne A, Fogel M L. Reconstructing palaeoenvironment fromδ13C and δ15N values of soil organic matter: A calibration from arid and wetter elevation transects in Ethiopia. Geoderma, 2008, 147(3): 197- 210.

[3] Diefendorf A F, Mueller K E, Wing S L, Koch P L, Freeman K H. Global patterns in leaf13C discrimination and implications for studies of past and future climate. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2010, 107(13): 5738- 5743.

[4] Kohn M J. Carbon isotope compositions of terrestrial C3 plants as indicators of (paleo) ecology and (paleo)climate. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2010, 107(46): 19691- 19695.

[5] Gao J Q, Lei G C, Zhang X W, Wang G X. Canδ13C abundance, water-soluble carbon, and light fraction carbon be potential indicators of soil organic carbon dynamics in Zoigê wetland?. Catena, 2014, 119(2): 280-286.

[6] Liu X Z, Su Q, Li C K, Zhang Y, Wang Q. Responses of carbon isotope ratios of C3herbs to humidity index in northern China. Turkish Journal of Earth Sciences, 2014, 23(1): 100- 111.

[7] Knapp A K, Briggs J M, Koelliker J K. Frequency and extent of water limitation to primary production in a mesic temperate grassland. Ecosystems, 2001, 4(1): 19- 28.

[8] Noy-Meir I. Desert ecosystems: environment and producers. Annual Review of Ecology and Systematics, 1973, 4(1): 25- 51.

[9] Tambussi E A, Bort J, Araus J L. Water use efficiency in C3cereals under Mediterranean conditions: a review of physiological aspects. Annals of Applied Biology, 2007, 150(3): 307- 321.

[10] Guo W H, Li B, Zhang X S, Wang R Q. Effects of water stress on water use efficiency and water balance components ofHippophaerhamnoidesandCaraganaintermediain the soil-plant-atmosphere continuum. Agroforestry Systems, 2010, 80(3): 423- 435.

[11] Tsialtas J T, Handley L L, Kassioumi M T, Veresoglou D S, Gagianas A A. Interspecific variation in potential water‐use efficiency and its relation to plant species abundance in a water‐limited grassland. Functional Ecology, 2001, 15(5): 605- 614.

[12] 邱权, 潘昕, 李吉跃, 王军辉, 董蕾, 马建伟, 杜坤. 青藏高原20种灌木幼苗生物量分配、水分利用效率及叶片δ13C比较. 西北林学院学报, 2014, 29(4): 8- 14.

[13] 胡红玲, 张健, 万雪琴, 陈洪, 易万洋, 周永春. 巨桉与5种木本植物幼树的耗水特性及水分利用效率的比较. 生态学报, 2012, 32(12): 3873- 3882.

[14] Farquhar G D, Ehleringer J R, Hubick K T. Carbon isotope discrimination and photosynthesis. Annual Review of Plant Biology and Plant Molecular Biology, 1989, 40(1): 503- 537.

[15] Farquhar G D, Hubick K T, Condon A G, Richards R A. Carbon isotope fractionation and plant water-use efficiency // Rundel P W, Ehleringer J R, Nagy K A, eds. Stable Isotopes in Ecological Research. New York: Springer, 1989: 21- 40.

[16] Adiredjo A L, Navaud O, Muos S, Langlade N B, Lamaze T, Grieu P. Genetic control of water use efficiency and leaf carbon isotope discrimination in sunflower (HelianthusannuusL.) subjected to two drought scenarios. Plos One, 2014, 9(7): e101218.

[17] 任书杰, 于贵瑞. 中国区域478种C3植物叶片碳稳定性同位素组成与水分利用效率. 植物生态学报, 2011, 35(2): 119- 124.

[18] 马全林, 王继和, 朱淑娟. 降水、土壤水分和结皮对人工梭梭(Haloxylonammodendron)林的影响. 生态学报, 2007, 27(12): 5057- 5067.

[19] 郭泉水, 郭志华, 阎洪, 王春玲, 谭德远, 马超, 何红艳. 我国以梭梭属植物为优势的潜在荒漠植被分布. 生态学报, 2005, 25(4): 848- 853.

[20] 苏培玺, 赵爱芬, 张立新, 杜明武, 陈怀顺. 荒漠植物梭梭和沙拐枣光合作用、蒸腾作用及水分利用效率特征. 西北植物学报, 2003, 23(1): 11- 17.

[21] 盛晋华, 乔永祥, 刘宏义, 翟志席, 郭玉海. 梭梭根系的研究. 草地学报, 2004, 12(2): 91- 94.

[22] 刘晓云, 刘速. 梭梭荒漠生态系统: Ⅰ初级生产力及其群落结构的动态变化. 中国沙漠, 1996, 16(3): 287- 292.

[23] Ninyerola M, Pons X, Roure J M. A methodological approach of climatological modelling of air temperature and precipitation through GIS techniques. International Journal of Climatology, 2000, 20(14): 1823- 1841.

[24] O′Leary M H. Carbon isotope fractionation in plants. Phytochemistry, 1981, 20(4): 553- 567.

[25] 刘贤赵, 张勇, 宿庆, 田艳林, 全斌, 王国安. 现代陆生植物碳同位素组成对气候变化的响应研究进展. 地球科学进展, 2014, 29(12): 1341- 1354.

[26] 旺罗, 吕厚远, 吴乃琴, 除多, 韩家懋, 吴玉虎, 吴海斌, 顾兆炎. 青藏高原高海拔地区C4植物的发现. 科学通报, 2004, 49(13): 1290- 1293.

[27] 王国安, 韩家懋, 周力平, 熊小刚, 谭明, 吴振海, 彭隽. 中国北方黄土区C4植物稳定碳同位素组成的研究. 中国科学 D辑: 地球科学, 2005, 35(12): 1174- 1179.

[28] 孙惠玲, 马剑英, 王绍明, 张霞. 准噶尔盆地荒漠植物碳同位素组成研究. 中国沙漠, 2007, 27(6): 972- 976.

[29] Ehleringer J R, Cerling T E, Helliker B R. C4photosynthesis, atmospheric CO2, and climate. Oecologia, 1997, 112(3): 285- 299.

[30] Ghannoum O. C4photosynthesis and water stress. Annals of Botany, 2009, 103(4): 635- 644.

[31] Taylor S H, Ripley B S, Martin T, De-Wet L A, Woodward F I, Osborne C P. Physiological advantages of C4grasses in the field: a comparative experiment demonstrating the importance of drought. Global Change Biology, 2014, 20(6): 1992- 2003.

[32] Farquhar G D, Ball M C, Von Caemmerer S, Roksandic Z. Effect of salinity and humidity onδ13C value of halophytes-Evidence for diffusional isotope fractionation determined by the ratio of intercellular/atmospheric partial pressure of CO2under different environmental conditions. Oecologia, 1982, 52(1): 121- 124.

[33] Jackson P C, Meinzer F C, Goldstein G, Holbrook N M, Cavelier J, Rada F. Environmental and physiological influences on carbon isotope composition of gap and understory plants in a lowland tropical forest // Ehleringer J R, Hall A E, Farquhar G D, eds. Stable Isotopes and Plant Carbon-Water Relations. New York: Academic Press, 1993: 131- 140.

[34] Li Z Q, Yang L, Lu W, Guo W, Gong X S, Xu J, Yu D. Spatial patterns of leaf carbon, nitrogen stoichiometry and stable carbon isotope composition ofRanunculusnatansC. A. Mey. (Ranunculaceae) in the arid zone of northwest China. Ecological Engineering, 2015, 77: 9- 17.

[35] Swap R J, Aranibar J N, Dowty P R, Gilhooly III W P, Macko S A. Natural abundance of13C and15N in C3and C4vegetation of southern Africa: patterns and implications. Global Change Biology, 2004, 10(3): 350- 358.

[36] Murphy B P, Bowman D M J S. The carbon and nitrogen isotope composition of Australian grasses in relation to climate. Functional Ecology, 2009, 23(6): 1040- 1049.

[37] Tieszen L L, Boutton T W. Stable carbon isotopes in terrestrial ecosystem research // Rundel P W, Ehleringer J R, Nagy K A, eds. Stable Isotopes in Ecological Research. New York: Springer, 1989: 167- 195.

[38] Schulze E D, Ellis R, Schulze W, Trimborn P, Ziegler H. Diversity, metabolic types andδ13C carbon isotope ratios in the grass flora of Namibia in relation to growth form, precipitation and habitat conditions. Oecologia, 1996, 106(3): 352- 369.

[39] Wang G, Feng X, Han J, Zhou L, Tan W, Su F. Paleovegetation reconstruction usingδ13C of soil organic matter. Biogeosciences Discussions, 2008, 5(2): 1795- 1823.

[40] Basu S, Agrawal S, Sanyal P, Mahato P, Kumar S, Sarkar A. Carbon isotopic ratios of modern C3-C4plants from the Gangetic plain, India and its implications to paleovegetational reconstruction. Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology, 2015, 440(6):209- 221.

[41] Liu W G, Feng X H, Ning Y F, Zhang Q L, Cao Y N, An Z S.δ13C variation of C3and C4plants across an Asian monsoon rainfall gradient in arid northwestern China. Global Change Biology, 2005, 11(7): 1094- 1100.

[42] 苏培玺, 严巧娣. C4荒漠植物梭梭和沙拐枣在不同水分条件下的光合作用特征. 生态学报, 2006, 26(1): 75- 82.

[43] Farquhar G D. On the nature of carbon isotope discrimination in C4species. Australian Journal of Plant Physiology, 1983, 10(2): 205- 226.

[44] 许强, 杨自辉, 郭树江, 王强强. 梭梭不同生长阶段的枝系构型特征. 西北林学院学报, 2013, 28(4): 50- 54.

[45] Francey R J, Farquhar G D. An explanation of13C/12C variations in tree rings. Nature, 1982, 297(5861): 28- 31.

[46] Wang G N, Li J Z, Liu X Z, Liu X Y. Variations in carbon isotope ratios of plants across a temperature gradient along the 400 mm isoline of mean annual precipitation in north China and their relevance to paleovegetation reconstruction. Quaternary Science Reviews, 2013, 63(1): 83- 90.

[47] 刘贤赵, 宿庆, 李嘉竹, 全斌, 李朝奎, 张勇, 王志强, 王国安. 控温条件下 C3、C4草本植物碳同位素组成对温度的响应. 生态学报, 2015, 35(10): 3278- 3287.

[48] Troughton J H, Card K A. Temperature effects on the carbon-isotope ratio of C3, C4and crassulacean-acid-metabolism (CAM) plants. Planta, 1975, 123(2): 185- 190.

[49] Schleser G H. Investigations of theδ13C Pattern in Leaves ofFagussylvaticaL. Journal of Experimental Botany, 1990, 41(5): 565- 572.

[50] Buchmann N, Brooks J R, Rapp K D, Ehleringer J R. Carbon isotope composition of C4grasses is influenced by light and water supply. Plant Cell & Environment, 1996, 19(4): 392- 402.

[51] Evans J R, Sharkey T D, Berry J A, Farquhar G D. Carbon isotope discrimination measured concurrently with gas exchange to investigate CO2diffusion in leaves of higher plants. Australian Journal of Plant Physiology, 1986, 13(2): 281- 292.

[52] Wong S C, Cowan I R, Farquhar G D. Leaf conductance in relation to rate of CO2assimilation: I. Influence of nitrogen nutrition, phosphorus nutrition, photon flux density, and ambient partial pressure of CO2during ontogeny. Plant Physiology, 1985, 78(4): 821- 825.

[53] Wong S C, Cowan I R, Farquhar G D. Leaf conductance in relation to rate of CO2assimilation: II. Effects of short-term exposures to different photon flux densities. Plant Physiology, 1985, 78(4): 826- 829.

[54] Wong S C, Cowan I R, Farquhar G D. Leaf conductance in relation to rate of CO2assimilation: III. Influences of water stress and photoinhibition. Plant Physiology, 1985, 78(4): 830- 834.

[55] Wang G A, Zhou L P, Liu M, Han J M, Guo J H, Faiia A, Su F. Altitudinal trends of leafδ13C follow different patterns across a mountainous terrain in north China characterized by a temperate semi-humid climate. Rapid Communications in Mass Spectrometry, 2010, 24(11): 1557- 1564.

[56] Van De Water P K, Leavitt S W, Betancourt J L. Leafδ13C variability with elevation, slope aspect, and precipitation in the southwest United States. Oecologia, 2002, 132(3): 332- 343.

[57] 陈世苹, 白永飞, 韩兴国, 安吉林, 郭富存. 沿土壤水分梯度黄囊苔草碳同位素组成及其适应策略的变化. 植物生态学报, 2004, 28(4): 515- 522.

[58] 褚建民. 干旱区植物的水分选择性利用研究[D]. 北京: 中国林业科学研究院, 2007.

Relationship of stable carbon isotope composition with environmental factors in the desert plant,Haloxylonammodendron

ZHAO Dan1,2,CHENG Junhui1,2,LIU Yunhua1,2,LIU Lili1,2,LI Ruixia1,2,SHENG Jiandong1,2,*

1CollegeofGrasslandandEnvironmentalSciences,XinjiangAgriculturalUniversity,Urumqi830052,China2XinjiangKeyLaboratoryofSoilandPlantEcologicalProcesses,Urumqi830052,China

Haloxylonammodendronis a dominant shrub widely distributed in the desert in the Xinjiang Uygur Autonomous Region, northwest China. In the present study, we investigated the variation in the stable carbon isotope composition (δ13C) in an assimilating branch ofH.ammodendronand the relationship ofδ13C fromH.ammodendronwith environmental factors (altitude, duration of sunshine, evaporation, mean annual precipitation, and mean annual temperature) using a dataset collected from 101 communities and 23 ecosystem sites. Our results showed that: (1)δ13C in the assimilating branch ofH.ammodendronaveraged 14.15‰ with a range from -13.14 to -15.38‰ at a 95% confidence interval, which indicated thatH.ammodendronwas characterized by a C4photosynthetic pathway. (2) Along an environmental gradient,δ13C values ofH.ammodendronwas negatively and significantly correlated with mean annual precipitation and mean annual temperature, but positively correlated with altitude, duration of sunshine, and evaporation. We inferred that the different response patterns ofδ13C values to environmental factors were possibly caused by stomatal limitation in the assimilating branch ofH.ammodendron, which was considered an adaptation to the dry desert conditions. (3)δ13C values ofH.ammodendronvaried significantly among different habitats. The highestδ13C values appeared whenH.ammodendronwas found withNitrariatangutorumandReaumuriaLinn. in grey and grey-brown desert soils, and distributed in plain, mountainous and hill habitats, whereas the lowestδ13C values were observed whenH.ammodendronwas found withCeratoidesarborescensandCalligonummongolicumlocated in aeolian sandy and chisley soils, and distributed in Junggar Basin. Together, our results demonstrated that water use efficiency ofH.ammodendronvaried significantly along environmental gradients and habitats, indicating a divergent adaptation strategy for water use efficiency.

stable carbon isotope; environmental factors; habitat;Haloxylonammodendron

中国科学院战略性先导科技专项(XDA05050400)

2015- 11- 13; 网络出版日期:2016- 10- 29

10.5846/stxb201511132307

*通讯作者Corresponding author.E-mail: sjd_2004@126.com

赵丹,程军回,刘耘华,刘利利,李瑞霞,盛建东.荒漠植物梭梭稳定碳同位素组成与环境因子的关系.生态学报,2017,37(8):2743- 2752.

Zhao D,Cheng J H,Liu Y H,Liu L L,Li R X,Sheng J D.Relationship of stable carbon isotope composition with environmental factors in the desert plant,Haloxylonammodendron.Acta Ecologica Sinica,2017,37(8):2743- 2752.

猜你喜欢

梭梭荒漠利用效率
向荒漠宣战
梭梭的建筑课
20载扎根荒漠保“第一”
与生命赛跑的“沙漠植被之王”——梭梭
荒漠生态系统的演变
沙漠梭梭的守望者
避免肥料流失 提高利用效率
体制改革前后塔里木河流域水资源利用效率对比分析
荒漠之路上的三首情歌
环保志愿者在阿拉善种梭梭固沙