APP下载

HIF-1α在子宫内膜异位症中的研究进展

2017-04-09朱媛媛崔毓桂冒韵东

生殖医学杂志 2017年4期
关键词:糖酵解低氧异位

朱媛媛,崔毓桂,冒韵东*

(1.南京医科大学,南京 210029;2.南京医科大学第一附属医院临床生殖医学中心,南京 210029)

·综述·

HIF-1α在子宫内膜异位症中的研究进展

朱媛媛1,崔毓桂2,冒韵东2*

(1.南京医科大学,南京 210029;2.南京医科大学第一附属医院临床生殖医学中心,南京 210029)

子宫内膜异位症(Endometriosis,EMs)是育龄妇女的常见病,但其发病机制至今仍不清楚。越来越多的证据表明,低氧与EMs发生发展有密切的联系。在EMs异位组织中低氧诱导因子-1α(HIF-1α)的表达明显增高;HIF-1α通过调节雌激素产生、血管生成、细胞增殖和炎症等相关基因,促进EMs发展;HIF-1α是EMs有氧糖酵解过程中关键的调节因子;抑制HIF-1α的表达有助于抑制EMs的发生发展,表明HIF-1α在EMs的病理形成中的作用。本文介绍HIF-1α的研究进展,着重论述其在EMs中的作用。

子宫内膜异位症; 低氧诱导因子-1α; 雌激素; 血管生成; 有氧糖酵解

(JReprodMed2017,26(4):377-381)

子宫内膜异位症(Endometriosis,EMs)是一种复杂的雌激素依赖性疾病,指功能性的子宫腺体和内膜出现在子宫腔以外的部位,如卵巢、盆腔腹膜、直肠阴道隔等,并种植生长而产生病变,主要表现为慢性盆腔痛、不孕、痛经和性交痛。EMs患者中不孕症的发病率是非EMs人群的20倍,是导致不孕的主要因素之一。EMs发病机制至今尚未完全阐明,主要有经血逆流、体腔上皮化生、淋巴及静脉播散、免疫内分泌、遗传等学说[1]。研究表明,雌激素介导的抗细胞凋亡、促细胞增殖以及增强伤害感受等,可能是EMs形成的一个主要机制[2]。孕激素受体的低表达也能够抑制细胞凋亡,因此阻断孕激素受体可能成为EMs的治疗靶点[3]。此外,环氧合酶2(COX-2)、血管生成相关基因和前列腺素(PG)的高表达与EMs的发生发展密切相关。炎症、免疫和遗传易感性等相关因子在EMs的进展中起着主导作用。由此可见,EMs发病机理非常复杂,许多未知有待深入研究。

低氧和低氧诱导因子-1α(Hypoxia inducible factor-1α,HIF-1α)在EMs病理形成中的作用,成为当前的研究热点之一[4]。与正常及在位基质细胞相比,异位子宫内膜基质细胞中HIF-1α的表达明显增高,而高表达HIF-1α则促进了EMs中血管生成相关基因的表达。体内试验亦证实,低氧处理可以增加内异囊肿的血管生成,从而促进EMs囊肿的生长,抑制HIF-1α的表达,可能有助于治疗EMs[5]。本文综述HIF-1α在EMs发生发展中的作用。

一、HIF-1α

研究证实,细胞在低氧的应激作用下,通过改变其转录活性调节细胞的糖酵解、增殖、凋亡和侵袭等过程[6-7]。其中,低氧诱导因子(HIFs)是最关键的调节因素。HIFs是由α和β亚基构成的异质二聚体[8]。HIFs中最具代表性的因子是HIF-1,几乎各种细胞均有表达。HIF-1由HIF-1α和HIF-1β两个亚基组成,β亚基不受氧的影响,稳定表达于细胞中,参与一系列转录调控;α亚基受氧浓度的影响较大,因此HIF-1的活性主要依赖于HIF-1α亚基的活性。

HIF-1α是1995年由Semenza首次定义的,属于basic helix-loop-helix(bHLH)/Per-Arnt-Sim(PAS)家族蛋白[9]。在常氧条件下,HIF-1α极易降解。脯氨酸羟化酶(PHD)和HIF抑制因子(FIH)最先被氧激活。PHD是一种氧依赖性酶,可以使HIF-1α上ODDD区域内的564位和402位脯氨酸残基被羟基化,羟化的HIF-1α与肿瘤抑制蛋白(von Hippel-Lindau,pVHL)结合,募集RBX1、cullin 2、elongin B和elongin C等多种泛素蛋白,共同组成泛素连接蛋白酶复合体,使HIF-1α亚基泛素化,并经泛素连接蛋白酶复合体途径降解[10]。FIH也是氧依赖的酶,可将HIF-1α C端反式激活域TAD-C内803位的天冬氨酸残基羟基化,阻止HIF-1α与转录辅助激活因子P300/CBP(CREB-binding protein)结合,从而抑制HIF-1α的转录激活功能[11];同时,FIH也能与pVHL结合,募集组蛋白去乙酰化酶(HDACs),进一步抑制HIF-1α的转录激活功能[12]。在低氧的条件下,PHD和FIH的活性被抑制,HIF-1α不易被降解,导致细胞质内HIF-1α积聚。HIF-1α C-末端的核定位序列(NLS)辅助胞质中HIF-1α蛋白快速与核孔蛋白结合,介导HIF-1α进入细胞核内;HIF-1α N-末端的激活域与HIF-1β结合,形成二聚体后与P300/CBP结合启动靶基因的转录[13]。

HIF-1α能激活多种靶基因的转录,如血管生成因子、血管表皮生长因子(VEGFA)、糖酵解基因、抑癌基因p53等。细胞增殖相关的信号通路,如PI3K/AKT/mTOR信号通路,通过调节HIF-1α的活性促进肿瘤的发展,阻断PI3K/AKT信号通路可以抑制HIF-1α的表达[14]。体外实验证实,Ras/Raf/MAPK信号通路促使HIF-1α发生磷酸化作用,通过调节p300的活性,促进HIF-1α-p300复合物的形成,进而激活HIF-1α[15]。此外,表观遗传修饰,包括microRNAs、DNA甲基化和组蛋白修饰等在HIF-1α的调控中亦发挥着一定作用[16]。低氧条件下,表观遗传修饰直接抑制了HIF-1α表达,而常氧条件下,通过负性调节VHL和PHD维持HIF-1α的活性。

二、HIF-1α与EMs

在整个月经周期的子宫内膜组织中,存在低氧的状况。子宫内膜功能层的腺细胞和基质细胞中,分泌期HIF-1α表达开始升高,到月经期达最高值[17]。与正常人相比,EMs患者的子宫内膜中HIF-1α表达升高,说明HIF-1α在EMs发生发展中存在某种作用。对23例(14例EMs,9例卵巢囊肿和子宫肌瘤)患者的子宫内膜组织进行免疫组化研究发现,与卵巢囊肿和子宫肌瘤患者相比,EMs患者的异位病灶中HIF-1α的表达显著升高;与正常人相比,卵巢囊肿和子宫肌瘤患者子宫内膜组织中HIF-1α的表达并未明显增加[18]。EMs患者的在位内膜与正常人的内膜相比,HIF-1α的表达并无显著差别。Kato等[19]人发现,细胞核和细胞质中的HIF-1α表达与EMs正相关,且在EMs相关的卵巢透明细胞癌(CCAs)中显著升高,表明HIF-1α很可能促使EMs发展成为CCAs。这些研究结果提示,HIF-1α在EMs发生发展中起基础性作用。

1.HIF-1α与雌激素水平:EMs是一种雌激素依赖性疾病,临床治疗应用促性腺激素释放激素激动剂(GnRHa)、芳香化酶抑制剂等雌激素合成抑制药物,或者通过口服避孕药反馈抑制内源性雌激素合成,可有效减轻患者症状。EMs异位病灶表现了芳香化酶(P450arom)活性增高及17β-羟类固醇脱氢酶2(17β-HSD2)低表达,使局部雌激素浓度升高,刺激异位病灶前列腺素E2(PGE2)的分泌[20]。如此,PGE2-P450arom-E2之间的自分泌方式的正反馈循环促进了高浓度雌激素微环境的形成,有利于异位内膜种植生长。

在EMs患者中,高水平的PGE2被认为与EMs引起的慢性盆腔痛有关[21]。低氧条件下PGE2促进子宫内膜的血管生成;PGE2的活化使子宫内膜基质细胞中雌激素的水平异常升高。研究发现,低氧下的子宫内膜基质细胞可以诱导ERβ的表达,而HIF-1α的表达下调则抑制了低氧诱导的ERβ表达,并增加ERα表达,说明EMs中HIF-1α通过不同的ER表达调节雌激素水平[22]。膜联蛋白A2(ANXA2)是一种雌激素反应蛋白,在EMs中表达增高,过表达的ANXA2通过活化HIF-1α/VEGFA途径促进EMs的发展[23]。

2.HIF-1α与血管生成:EMs与血管生成密切相关。异位组织内的新生血管形成,为内膜腺体和间质种植发展的基础,并受到多种因素的调控,其中VEGF增高为主要调节因素。有文献报道,HIF-1α与血管生成因子的表达密切相关,与良性妇科疾病的患者相比,EMs患者的异位组织中VEGF和HIF-1α的表达显著升高,同时微血管密度(MVD)显著升高[24]。其中,EMs异位囊肿的外层(由纤维层的成纤维细胞和血管组成)HIF-1α的表达比内层(由子宫内膜腺体、基质细胞和血管组成)更高;与基质细胞相比,外层的成纤维细胞中HIF-1α、促血管生成因子和氮氧合酶复合体1(iNOS,eNOS)的表达是增高的,说明异位组织的血管再生主要在卵巢异位囊肿的外层进行[25]。在EMs和卵巢癌中,HIF-1α可以调节葡萄糖转运体(Glut1)的表达[26]。研究发现,在EMs和EMs相关的CCAs中,p-mTOR、Glut1和HIF-1α的表达均升高[19]。EMs中铁过量和慢性炎症能够诱导氧化应激和Akt/MAPK信号通路的激活,进一步促进p-mTOR、HIF-1α及其靶基因Glut1的表达[25]。

在EMs动物模型中发现,异位灶中HIF-1α表达升高促进瘦素的水平,后者促进基质细胞增殖和EMs发展;当在位子宫内膜基质细胞处于低氧环境或加入去铁敏(DFO,化学性低氧)进行培养时,随着时间的延长细胞中的瘦素表达逐渐增高[18]。异位灶组织的腺上皮和基质中环氧酶2(COX-2)是过度表达的,并与非月经期EMs患者的慢性盆腔痛相关,抑制COX-2的表达可以预防EMs的发生,降低异位病灶的范围和严重程度以及抑制血管再生[27]。研究发现,EMs中HIF-1α能够通过不同的途径调节COX-2的表达:① HIF-1α引起的孤儿核受体SHP加速可以升高尾型转录因子1(CDX1)的水平,导致COX-2的表达增高;同时激活了NF-kB信号通路,调节EMs的炎症反应,促进EMs的发生发展。② HIF-1α通过上调miR-20a的水平抑制DUSP2的表达,加强细胞外信号调节激酶(ERK)和p38 MAPK的活化作用,增加COX-2的表达,进而促进IL-8调节的血管生成,加快EMs的发生发展[28]。

3.HIF-1α与有氧糖酵解:EMs具有侵袭行为和易于复发的特点,类似于肿瘤细胞,故又称为具有恶性行为的“良性疾病”。与正常细胞相比,恶性肿瘤细胞具有独特的能量代谢特点,称为“Warburg效应”[29],又称有氧糖酵解,其定义为:即使在氧充足的条件下,恶性肿瘤细胞也由有氧磷酸化供能转换为糖酵解作为供能途径,表现为葡萄糖消耗增加和乳酸产量增多。这一效应为细胞的生长提供了生物需求,从而促进了恶性肿瘤细胞的快速增殖。有研究表明,HIF-1α在此效应中发挥重要作用。低氧环境下HIF-1α不断累积并向核内转移,与HIF-1β构成异源二聚体,通过与靶基因启动子序列上的低氧反应元件(Hypoxia response element,HRE)结合,最终导致下游的靶基因转录[30]。这些基因可以上调肿瘤细胞中葡萄糖转运体蛋白(GLUTs)的表达,高表达的GLUT促进更多的葡萄糖进入细胞内,进一步促进细胞的糖酵解过程。此外,HIF-1α升高会引起糖酵解酶升高[31],增加的糖酵解可以产生很多的丙酮酸,在HIF-1α诱导下通过乳酸脱氢酶(Dehydrogenase A,LDHA)转化为乳酸[32]。而在线粒体内,由于依赖HIF-1的PDK1的诱导,进入的三羧酸(Tricarboxylic acid,TCA)循环的丙酮酸大大减少,阻断了线粒体三羧酸循环及氧化磷酸化,减少了活性氧的生成,利于细胞的生存。最近的研究显示,HIF-1α的激活还能影响磷酸戊糖途径[33],这条途径能将糖酵解的中间产物转化为合成核苷酸的重要原料5-磷酸核糖。因此,HIF-1α依赖的代谢通路的转换,能促进细胞在低氧下存活,而且HIF-1α将葡萄糖代谢转换成RNA和DNA合成所需的一个步骤,这对于低氧肿瘤细胞的存活和生长有重要意义。Young等[34]发现,在EMs的异位组织中也存在着“Warburg效应”。与常氧相比,低氧条件下内异囊肿的HIF-1α表达水平明显升高,表明HIF-1α在EMs有氧糖酵解中也起同样的作用。

三、HIF-1α在EMs中治疗应用及展望

HIF-1α作为EMs发生发展中最重要的调节因子之一,通过调控VEGF的表达和血管生成促进疾病的发展,因而HIF-1α被认为是治疗EMs的潜在新靶点[35]。有研究表明,抑制HIF-1α的表达可以阻滞EMs的发展。在EMs的小鼠模型中,血管生成抑制剂2-甲氧雌二醇(2-ME)可以抑制HIF-1α及其靶基因的表达,如磷酸甘油酸激酶、Glut1和VEGF。同时,2-ME亦能抑制VEGF诱导的血管渗透性和类似EMs病灶的生长[26]。在EMs的大鼠模型中,抑癌基因WXT通过抑制HIF-1α、VEGF及其受体Flk-1的表达,从而有效地减少异位病灶的范围,抑制子宫内膜细胞的增殖[36]。此外,表观遗传学亦参与调节EMs中HIF-1α表达。在人子宫内膜异位的上皮细胞系中,组蛋白去乙酰化酶(HDAC)通过使HIF-1α降解从而降调节VEGF的表达[37]。低氧条件下,miR-199a抑制了HIF-1α/VEGF通路,从而减弱了异位子宫内膜基质细胞的血管生成能力。

EMs机制中血管生成标记基因与HIF-1α密切相关,而HIF-1α是通过调节雌激素产生、血管生成、细胞增殖和炎症等相关基因,如ERβ、VEGF、Glut、COX-2和NF-kB,进而促进EMs的发展。此外,细胞增殖信号通路,如PI3K/AKT和ERK/MAKP信号通路,在HIF-1α诱导的EMs中起着至关重要的作用。由HIF-1α调节的免疫因子IL-8在EMs中也起着重要的作用[38]。

综上所述,HIF-1α在多种疾病中均起着重要的作用,抑制HIF-1α的这种治疗策略已广泛适用于临床治疗上。最近的研究阐明HIF-1α通过调节雌激素产生、血管生成、细胞增殖和炎症等相关基因,进而促进EMs发展。此外,EMs中HIF-1α相关的治疗方法也在探索中,如2-ME,HDAC抑制剂等,主要有助于抑制血管生成。然而,HIF-1α与EMs间具体的作用机制仍是不明确的,抑制HIF-1α的治疗策略亦有一定的限制性,进一步探索出EMs中HIF-1α的作用有助于创新EMs的生物学治疗。

[1] Augoulea A,Alexandrou A,Creatsa M,et al. Pathogenesis of endometriosis:the role of genetics,inflammation and oxidative stress[J].Arch Gynecol Obstet,2012,286:99-103.

[2] Shao R,Cao S,Wang X,et al. The elusive and controversial roles of estrogen and progesterone receptors in human endometriosis[J].Am J Transl Res,2014,6:104-113.

[3] Bedaiwy MA,Dahoud W,Skomorovska-Prokvolit Y,et al. Abundance and localization of progesterone receptor isoforms in endometrium in women with and without endometriosis and in peritoneal and ovarian endometriotic implants[J].Reprod Sci,2015,22:1153-1161.

[4] Imesch P,Samartzis EP,Schneider M,et al. Inhibition of transcription,expression,and secretion of the vascular epithelial growth factor in human epithelial endometriotic cells by romidepsin[J].Fertil Steril,2011,95:1579-1583.

[5] Lu Z,Zhang W,Jiang S,et al. Effect of oxygen tensions on the proliferation and angiogenesis of endometriosis heterograft in severe combined immunodeficiency mice[J]. Fertil Steril,2014,101:568-576.

[6] Zhang M,Zhang W,Wu Z,et al. Artemin is hypoxia responsive and promotes oncogenicity and increased tumor initiating capacity in hepatocellular carcinoma[J].Oncotarget,2016,7:3267-3282.

[7] Liu Z,Sun Y,Tan S,et al. Nutrient deprivation-related OXPHOS/glycolysis interconversion via HIF-1α/C-MYC pathway in U251 cells[J].Tumour Biol,2016,37:6661-6671.

[8] Schödel J,Grampp S,Maher ER,et al. Hypoxia,hypoxia-inducible transcription factors,and renal cancer[J].Eur Urol,2016,69:646-657.

[9] Wang GL,Jiang BH,Rue EA,et al. Hypoxia-inducible factor 1 is a basic-helix-loop-helix-PAS heterodimer regulated by cellular O2 tension[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1995,92:5510-5514.

[10] Semenza GL.Regulation of cancer cell metabolism by hypoxia-inducible factor1[J].Semin Cancer Biol,2009,19:12-16.

[11] Hewitson KS,McNeill LA,Riordan MV,et al. Hypoxia-inducible factor (HIF) asparagine hydroxylase is identical to factor inhibiting HIF (FIH) and is related to the cupin structural family[J].J Biol Chem,2002,277:26351-26355.

[12] Mahon PC,Hirota K,Semenza GL. FIH-1:a novel protein that interacts with HIF-1alpha and VHL to mediate repression of HIF-1 transcriptional activity[J].Genes Dev,2001,15:2675-2686.

[13] Lendahl U,Lee KL,Yang H,et al. Generating specificity and diversity in the transcriptional response to hypoxia[J]. Nat Rev Genet,2009,10:821-832.

[14] Miyasaka A,Oda K,Ikeda Y,et al.PI3K/mTOR pathway inhibition overcomes radioresistance via suppression of the HIF1-α/VEGF pathway in endometrial cancer[J].Gynecol Oncol,2015,138:174-180.

[15] Sang N,Stiehl DP,Bohensky J,et al. MAPK signaling up-regulates the activity of hypoxia-inducible factors by its effects on p300[J].J Biol Chem,2003,278:14013-14019.

[16] Nangaku M,Inagi R,Mimura I,et al. Epigenetic changes induced by hypoxia-inducible factor:a long way still to go as a target for therapy?[J].J Am Soc Nephrol,2015,26:1478-1480.

[17] Critchley HO,Osei J,Henderson TA,et al. Hypoxia-inducible factor-1alpha expression in human endometrium and its regulation by prostaglandin E-series prostanoid receptor 2 (EP2)[J].Endocrinology,2006,147:744-753.

[18] Wu MH,Chen KF,Lin SC,et al. Aberrant expression of leptin in human endometriotic stromal cells is induced by elevated levels of hypoxia inducible factor-1alpha[J].Am J Pathol,2007,170:590-598.

[19] Kato M,Yamamoto S,Takano M,et al. Aberrant expression of the mammalian target of rapamycin,hypoxia-inducible factor-1α,and glucose transporter 1 in the development of ovarian clear-cell adenocarcinoma[J].Int J Gynecol Pathol,2012,31:254-263.

[20] Zheng J,Qi XC,Cui YG. Local high estrogen and endometriosis[J]. J Int Reprod Health/Fam Plan,2013,32:132-135.

[21] Wu MH,Lin SC,Hsiao KY,et al. Hypoxia-inhibited dual-specificity phosphatase-2 expression in endometriotic cells regulates cyclooxygenase-2 expression[J].J Pathol,2011,225:390-400.

[22] Wu MH,Lu CW,Chang FM,et al. Estrogen receptor expression affected by hypoxia inducible factor-1α in stromal cells from patients with endometriosis[J].Taiwan J Obstet Gynecol,2012,51:50-54.

[23] Zhou S,Yi T,Liu R,et al. Proteomics identification of annexin A2 as a key mediator in the metastasis and proangiogenesis of endometrial cells in human adenomyosis[J].Mol Cell Proteomics,2012,11:M112.017988.

[24] Goteri G,Lucarini G,Montik N,et al. Expression of vascular endothelial growth factor(VEGF),hypoxia inducible factor-1alpha (HIF-1alpha),and microvessel density in endometrial tissue in women with adenomyosis[J].Int J Gynecol Pathol,2009,28:157-163.

[25] Goteri G,Lucarini G,Zizzi A,et al. Proangiogenetic molecules,hypoxia-inducible factor-1alpha and nitric oxide synthase isoforms in ovarian endometriotic cysts[J].Virchows Arch,2010,456:703-710.

[26] Semaan A,Munkarah AR,Arabi H,et al. Expression of GLUT-1 in epithelial ovarian carcinoma:correlation with tumor cell proliferation,angiogenesis,survival and ability to predict optimal cytoreduction[J].Gynecol Oncol,2011,121:181-186.

[27] Kim KH,Kim HY,Kim HH,et al. Hypoxia induces expression of COX-2 through the homeodomain transcription factor CDX1 and orphan nuclear receptor SHP in human endometrial cells[J].Mol Hum Reprod,2011,17:710-719.

[28] Hsiao KY,Chang N,Lin SC,et al. Inhibition of dual specificity phosphatase-2 by hypoxia promotes interleukin-8-mediated angiogenesis in endometriosis[J].Hum Reprod,2014,29:2747-2755.

[29] Vander Heiden MG,Cantley LC,Thompson CB. Understanding the Warburg effect:the metabolic requirements of cell proliferation[J].Science,2009,324:1029-1033.

[30] Courtnay R,Ngo DC,Malik N,et al. Cancer metabolism and the Warburg effect:the role of HIF-1 and PI3K[J]. Mol Biol Rep,2015,42:841-851.

[31] Kim JW,Tchernyshyov I,Semenza GL,et al. HIF-1-mediated expression of pyruvate dehydrogenase kinase:a metabolic switch required for cellular adaptation to hypoxia[J].Cell Metab,2006,3:177-185.

[32] Denko NC. Hypoxia,HIF1 and glucose metabolism in the solid tumour[J].Nat Rev Cancer,2008,8:705-713.

[33] Zhao F,Mancuso A,Bui TV,et al. Imatinib resistance associated with BCR-ABL upregulation is dependent on HIF-1alpha-induced metabolic reprograming[J].Oncogene,2010,29:2962-2972.

[34] Young VJ,Brown JK,Maybin J,et al. Transforming growth factor-β induced Warburg-like metabolic reprogramming may underpin the development of peritoneal endometriosis[J]. J Clin Endocrinol Metab,2014,99:3450-3459.

[35] Masoud GN,Wang J,Chen J,et al. Design,synthesis and biological evaluation of novel HIF1α inhibitors[J].Anticancer Res,2015,35:3849-3859.

[36] Zhang ZZ,Hu CP,Tang WW,et al. Wenshen Xiaozheng Tang suppresses the growth of endometriosis with an antiangiogenic effect [J]. Climacteric,2013,16:700-708.

[37] Imesch P,Samartzis EP,Schneider M,et al. Inhibition of transcription,expression,and secretion of the vascular epithelial growth factor in human epithelial endometriotic cells by romidepsin[J].Fertil Steril,2011,95:1579-1583.

[38] Luo XZ,Zhou WJ,Tao Y,et al.TLR4 activation promotes the secretion of IL-8 which enhances the invasion and proliferation of endometrial stromal cells in an autocrine manner via the FAK signal pathway[J].Am J Reprod Immunol,2015,74:467-479.

[编辑:辛玲]

Research progress of HIF-1α in endometriosis

ZHUYuan-yuan1,CUIYu-gui2,MAOYun-dong2*

1.NanjingMedicalUniversity,Nanjing210029 2.ClinicalCenterofReproductiveMedicine,theFirstAffiliatedHospitalofNanjingMedicalUniversity,Nanjing210029

Endometriosis (EMs) is a common gynecologic disorder affecting 10-15% of women in reproductive age. However,the underlying etiology of the disease is still poorly understood. In recent years,a growing body of evidence validated that hypoxia developed a close relationship with EMs,and the expression of hypoxia inducible factor-1alpha (HIF-1α) was significantly increased in development of EMs. HIF-1α contributed to endometriosis by regulating the genes which were essential to estrogen production,angiogenesis,proliferation and inflammation. In addition,HIF-1α is a key regulator in the process of aerobic glycolysis in EMs. Furthermore,inhibition of the expression of HIF-1α contributed to suppress EMs progression,suggesting HIF-1α plays a critical function in EMs. This paper reviews the research progress of HIF-1α and its role in endometriosis.

Endometriosis; HIF-1α; Estrogen; Angiogenesis; Aerobic glycolysis

10.3969/j.issn.1004-3845.2017.04.018

2016-07-31;

2016-09-18

国家自然科学基金(81200424);江苏省卫生厅妇幼保健重点学科(FXK201221);江苏省妇幼保健重点人才(FRC201215);江苏省科技厅临床医学科技专项(BL2012009)

朱媛媛,女,江苏盐城人,硕士,生殖医学专业.(*

,Email:drmaoyd@aliyun.com)

猜你喜欢

糖酵解低氧异位
非编码RNA在胃癌糖酵解中作用的研究进展
间歇性低氧干预对脑缺血大鼠神经功能恢复的影响
糖酵解与动脉粥样硬化进展
自发型宫内妊娠合并异位妊娠1 例报道
放射对口腔鳞癌细胞DNA损伤和糖酵解的影响
18F-FDG PET/CT中病灶糖酵解总量判断局部晚期胰腺癌放射治疗的预后价值
Wnt/β-catenin信号通路在低氧促进hBMSCs体外增殖中的作用
米非司酮结合MTX用于异位妊娠治疗效果观察
中西医联合保守治疗异位妊娠80例临床观察
中西医结合保守治疗异位妊娠46例