胃癌组织miR-215表达变化及其与患者预后的关系
2017-03-13刁卓刘晓超唐玉虎范莉静
刁卓,刘晓超,唐玉虎,范莉静
(汉中市中心医院,陕西汉中723000)
胃癌组织miR-215表达变化及其与患者预后的关系
刁卓,刘晓超,唐玉虎,范莉静
(汉中市中心医院,陕西汉中723000)
目的 探讨miR-215在胃癌发生、发展中的作用。方法 选择胃癌患者55例,取手术切除的胃癌组织及其配对的癌旁正常组织,采用qRT-PCR法检测miR-215表达,并分析其与患者临床病理参数及预后的关系。结果 胃癌组织miR-215的相对表达量明显高于癌旁正常组织(P<0.05),且其表达与胃癌组织分化程度、淋巴结转移、临床病理分期等密切相关(P均<0.05),与患者性别、年龄无关(P均>0.05)。以miR-215相对表达量的中位值(2.83)为界值,胃癌患者miR-215高表达33例、miR-215低表达22例;生存分析显示,miR-215高表达者中位生存时间显著低于miR-215低表达者(P<0.05)。结论 miR-215在胃癌的发生、发展过程中起癌基因作用,其高表达者预后较差;miR-215有可能成为胃癌预后的监测指标。
胃癌;微小RNA-215;生存分析;预后
微小RNA(miRNA)是一类高度保守的小片段非编码RNA,通过整合到RNA诱导的沉默复合物中,与其靶mRNA的3′非编码区完全或不完全结合,降解靶mRNA或抑制翻译,参与调节个体生长、发育及疾病发生过程相关基因的表达,在细胞分化、凋亡和肿瘤生成等过程中发挥重要作用[1]。有研究发现,在多种肿瘤组织中可检测到异常表达的miRNAs,且其不易被RNA酶降解,在室温放置超过24 h或反复冻融下仍十分稳定[2,3]。因此认为,miRNAs可作为理想的分子生物学标志物,用于肿瘤诊断、治疗及预后评估等。miR-215是受p53诱导表达的一个miRNA,通过调控一系列细胞周期检验点蛋白表达,起到癌基因或抑癌基因作用[4]。大量研究证实,在结直肠癌、肾脏肿瘤、肝癌等组织中miR-215表达下调,发挥抑癌基因作用[3~6]。但在胃癌组织中miR-215表达上调,可能具有癌基因作用[7]。2010年1~4月,我们观察了胃癌组织miR-215表达变化,并分析其表达与患者临床病理参数及预后的关系。现分析结果并报告如下。
1 资料与方法
1.1 临床资料 选择同期在我院手术治疗的胃癌患者55例,均经术后组织病理检查明确诊断。所有患者临床病理资料完整,术前未接受任何抗肿瘤治疗,并排除远处转移者。其中,男31例、女24例,年龄30~69(56.09±8.26)岁;临床分期:Ⅰ、Ⅱ期23例,Ⅲ、Ⅳ期32例;组织分化程度:中高分化21例,低分化34例;淋巴结转移:有37例,无18例。本研究经医院伦理委员会批准,患者均知情同意。
1.2 miR-215表达检测 采用qRT-PCR法。取手术切除的胃癌组织及癌旁正常组织,TRIzol法提取组织总RNA,分光光度计检测总RNA的浓度和纯度合格后,-80 ℃冰箱保存。取总RNA约2 μg,采用逆转录酶逆转录成cDNA,-20 ℃冰箱保存。参照GeneBank提供的基因序列,由天根生化科技(北京)有限公司合成特异性目的基因引物。miR-215上游引物:5′-CTCGAGATGTCATCCTCAG-3′,下游引物:5′-GAATTCGTGAGTTCTTCTG-3′;内参GADPH上游引物:5′-AATCCCATCACCATCTTCCA-3′,下游引物:5′-CCTGCTYCAACCACCTTCTTG-3′。采用美国ABI StepOnePlus实时荧光定量PCR仪进行扩增反应。PCR反应体系:10×PCR buffer 2.5 μL,25 mmol/L MgCl21.5 μL,10 mmol/L dNTP 0.5 μL,5 U/μL Taq酶0.5 μL,10 mmol/L引物1 μL,cDNA 2 μL(相当于100 ng RNA),双蒸水补足至25 μL。扩增条件:95 ℃热启动5 min,95 ℃变性20 s,60 ℃退火和延伸共1 min,共40个循环。在PCR扩增过程中,收集荧光信号,通过Bio-Rad CFX Manager软件计算Ct值。以GADPH基因作为内参,采用2-ΔΔCt法计算miR-215的相对表达量。试验重复3次,取平均值。
1.3 预后随访 所有患者术后定期电话随访,随访截至2016年4月。生存时间以月计算,以手术日至末次随访所获得的截至时间为准。55例胃癌患者中,术后接受辅助化疗38例,随访期间出现复发转移43例,死亡39例;因其他疾病死亡2例,失访1例。研究结束、其他原因死亡和失访作为截尾数据处理。
2 结果
2.1 胃癌组织及癌旁正常组织miR-215表达比较 胃癌组织miR-215的相对表达量为3.18±0.36,癌旁正常组织为1.03±0.32,二者比较P<0.05。
2.2 胃癌组织miR-215表达与患者临床病理参数的关系 见表1。
2.3 胃癌组织miR-215表达与患者预后的关系 以miR-215相对表达量的中位值(2.83)为界值,55例胃癌患者miR-215高表达33例、低表达22例。Kaplan-Meier生存曲线分析显示,其中位生存时间分别为24.6、65.3个月,二者比较P<0.01。见图1。
3 讨论
表1 胃癌组织miR-215表达与患者临床病理参数的关系±s)
图1 胃癌患者不同miR-215表达者的生存曲线
胃癌是源自胃黏膜上皮的恶性肿瘤,其发病率居所有消化系统恶性肿瘤的首位,是一种威胁人类健康的常见病、多发病[8]。胃癌的发生、发展是幽门螺杆菌感染、环境因素、遗传因素共同作用的结果[9]。正常情况下,胃黏膜上皮细胞的增殖和凋亡保持动态平衡,而这种平衡的维持依赖于癌基因、抑癌基因及下游靶基因的共同调控。近年来,随着医疗水平的不断进步,胃癌患者的生存率有所提高,但5年生存率仍不足30%。侵袭和转移是导致胃癌患者预后不良的主要原因[10,11]。由于胃癌的早期症状隐匿或无任何症状,易被误诊或漏诊。 因此, 寻找敏感、 特异的分子生物学标志物一直是近年来研究的热点。
miRNAs在进化过程中具有保守性,可参与细胞增殖、凋亡、分化及癌变等生命过程[12]。miR-215定位于人染色体1q41,在多种肿瘤组织中起癌基因或抑癌基因作用。Song等[3]研究发现,在骨肉瘤、结肠癌组织miR-215低表达,具有抑癌基因作用,并与化疗耐药有关。有研究发现,肺癌组织miR-215低表达,并通过下调靶基因ZEB2,参与肿瘤进展[13];还可通过调控相关靶基因TYMS、DHFR、TS及DTL表达,参与细胞增殖、凋亡等生物过程[13,14]。与其他实体肿瘤不同,miR-215在胃癌组织中高表达,具有癌基因作用,并与肿瘤侵袭和转移明显相关[15~17]。但目前其作用机制尚不清楚。有研究认为,miR-215可能通过下调靶基因活化白细胞黏附因子、MMP-9表达及抑制上皮间质转化,参与胃癌的侵袭和转移过程[18,19]。Jin等[18]通过miRNA芯片技术及实时荧光定量PCR技术证实,胃癌组织中miR-215的表达明显高于癌旁正常组织,且其过表达可促进胃癌细胞HFE145的迁移。
本研究结果显示,胃癌组织miR-215的相对表达量明显高于癌旁正常组织,表明miR-215在胃癌的发生过程中起癌基因作用,与相关报道[20~22]基本一致。临床分期Ⅲ、Ⅳ期者miR-215的相对表达量明显高于Ⅰ、Ⅱ期者,组织分化程度低分化者明显高于中高分化者,表明miR-215的相对表达量越高,肿瘤浸润和侵袭能力越强;有淋巴结转移者miR-215的相对表达量明显高于无淋巴结转移者,表明miR-215的相对表达量越高,肿瘤淋巴结转移能力越强;但其表达与患者性别、年龄无关;与李良平等[23]报道基本一致。本研究还发现,miR-215高表达者中位生存时间明显低于miR-215低表达者,提示miR-215表达越高,胃癌患者中位生存时间越短,预后越差。
综上所述,miR-215在胃癌的发生过程中具有癌基因作用,可参与胃癌的侵袭和转移过程,并与患者预后有关,有可能成为胃癌诊断及预后判断的分子生物学标志物之一。
[1] Mitchell PS, Parkin RK, Kroh EM, et al. Circulating microRNA as stable blood-based markers for cancer detection[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2008,105(30):10513-10518.
[2] Mongre RK, Sodhi SS, Ghosh M, et al. A new paradigm to mitigate osteosarcoma by regulation of microRNAs and suppression of the NF-κB signaling cascade[J]. Dev Reprod, 2014,18(4):197-212.
[3] Song B, Wang Y, Titmus MA, et al. Molecular mechanism of chemoresistance by miR-215 in osteosarcoma and colon cancer cells[J]. Mol Cancer, 2010(9):96.
[4] Georges SA, Biery MC, Kim SY, et al. Coordinated regulation of cell cycle transcripts by p53-inducible microRNAs, miRNA-192 and miRNA-215[J]. Cancer Res, 2008,68(24):10105-10112
[5] Khella HW, Bakhet M, Allo G, et al. miR-192, miR-194 and miR-215: a convergent microRNA network suppressing tumor progression in renal cell carcinoma[J]. Carcinogenesis, 2013,34(10):2231-2239.
[6] Liu F, You X, Chi X, et al. Hepatitis B virus X protein mutant HBxΔ127 promotes proliferation of hepatoma cells through up-regulating miR-215 targeting PTPRT[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2014,444(2):128-134
[7] Deng Y, Huang Z, Xu Y, et al. MiR-215 modulates gastric cancer cell proliferation by targeting RB1[J]. Cancer Lett, 2013,342(1):27-35.
[8] Ferlay J, Autier P, Boniol M, et al. Eestimates of the cancer incidence and mortality in Europe in 2006[J]. Ann Oncol, 2007,18(3):581-592.
[9] 文亦磊,张锡流.EB病毒相关胃癌的研究新进展[J].广东医学,2015,36(8):1291-1293.
[10] Mahar AL, Mcleod RS, Kiss A, et al. A systematic review of the effect of institution and surgeon factors on surgical outcomes for gastric cancer[J]. J Am Coll Surg, 2012,214(5):860-868.
[11] Mcguill MJ, Byrne P, Ravi N, et al. The prognostic impact of occult lymph node metastasis in cancer of the esophagus or esophago-gastric junction: systematic review and meta-analysis[J]. Dis Esophagus, 2008,21(3):236-240.
[12] Wang D, Qiu C, Zhang H, et al. Human microRNA oncogenes and tumor suppressors show significantly different biological patterns: from functions to targets[J]. PLoS One, 2010,5(9):855-867.
[13] Hou Y, Zhen J, Xu X, et al. miR-215 functions as a tumor suppressor and directly targets ZEB2 in human non-small cell lung cancer[J]. Oncol Lett, 2015,10(4):1985-1992.
[14] Fassan M, Volinia S, Palatini J, et al. MicroRNA expression profiling in the histological subtypes of barrett′s metaplasia[J]. Clin Transl Gastroenterol, 2013(4):e34.
[15] Wang B, Herman-Edelstein M, Koh P, et al. E-cadherin expression is regulated by miR-192/215 by a mechanism that is independent of the profibrotic effects of transforming growth factor-beta[J]. Diabetes, 2010,59(7):1794-1802.
[16] Chiang Y, Zhou X, Wang Z, et al. Expression levels of microRNA-192 and -215 in gastric carcinoma[J]. Pathol Oncol Res, 2012,18(3):585-591.
[17] Ueda T, Volinia S, Okumura H, et al. Relation between microRNA expression and progression and prognosis of gastric cancer: a microRNA expression analysis[J]. Lancet Oncol, 2010,11(2):136-146.
[18] Jin Z, Selaru FM, Cheng Y, et al. MicroRNA-192 and -215 are upregulated in human gastric cancer in vivo and suppress ALCAM expression in vitro[J]. Oncogene, 2011,30(13):1577-1585.
[19] 周志威,聂玉强,杜艳蕾,等.活化白细胞黏附分子在胃癌组织中的表达及其调控机制[J].广东医学,2013,34(18):2784-2788.
[20] Xu YJ, Fan Y. MiR-215/192 participates in gastric cancer progression[J]. Clin Transl Oncol, 2015,17(1):34-40.
[21] 李良平,龙思泽,高采平.胃癌患者血清microRNA-192和microRNA-215的表达及临床意义[J].中华临床医师杂志(电子版),2013,7(12):5223-5227.
[22] Chiang Y, Zhou X, Wang Z, et al. Expression levels of microRNA-192 and -215 in gastric carcinoma[J]. Pathol Oncol Res, 2012,18(3):585-591.
[23] 李良平,龙思泽,高采平.胃癌患者血清microRNA-192和microRNA-215的表达及临床意义[J].中华临床医师杂志(电子版),2013,7(12):5223-5227.
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.08.026
R735.2
B
1002-266X(2017)08-0080-03
2016-05-27)