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口蹄疫新型疫苗研究进展

2016-12-15滕家蕊

福建畜牧兽医 2016年6期
关键词:腺病毒口蹄疫载体

滕家蕊

福建省连江县畜牧兽医站350500

口蹄疫新型疫苗研究进展

滕家蕊

福建省连江县畜牧兽医站350500

口蹄疫是一种急性、热性、传染性强、致病率高的动物性疫病,对偶蹄动物威胁极大,每年都给畜牧业带来严重的经济损失。随着分子技术的发展,新型口蹄疫研究不断深入,文中就目前几种新型口蹄疫疫苗进行阐述。

口蹄疫新型疫苗研究进展

口蹄疫(Food-and-Mouth Disease,FMD)是由口蹄疫病毒(Food-and-Mouth Disease Virus,FMDV)引起的偶蹄动物共患的一种急性、高度传染性疫病,呈世界分布,患病牲畜在口、舌、唇、鼻、蹄、乳房等部位会产生水泡,溃烂并形成烂斑[1]。该疫病感染途径多,传播速度快、对畜牧业发展有极大阻碍,被世界卫生组织列为A类疾病,我国对口蹄疫防治措施主要是强制免疫与扑杀相结合。口蹄疫病毒(Foodand-Mouth Disease Virus,FMDV)属小RNA病毒科,口蹄疫病毒属,共分为O、A、C、AsiaⅠ、SAT1、SAT2和SAT3 7个血清型,各血清型之间又有许多亚型,各型之间无交叉保护性,所以口蹄疫的诊断和防控难度很大,我国口蹄疫仍然呈现地方性流行[2]。口蹄疫疫苗免疫是控制该病主要措施。本文对几种新型口蹄疫疫苗进行综述。

1 合成肽疫苗

FMDV衣壳结构信息被确定以后,研究者明确了构成衣壳蛋白之一的VP1明显暴露在衣壳表面[3],研究者根据基于VP1开始研发蛋白疫苗。利用DNA重组技术,Kleid等在大肠杆菌中表达的VP1,在牛和猪中起到了保护作用[4]。另一些研究发现在VP1的羧基末端区的可变G-H环上的片段与B细胞表位一致[5],Bitlle化学合成了这些区域的肽,与载体蛋白偶联,能够在牛体内诱导产生高水平抗体,在豚鼠攻毒实验中具有保护作用[6]。Taboga等在138头牛上进行合成肽疫苗的效果检测,以不同剂量的肽和程序进行接种,结果表明各组虽然可以产生免疫反应,但攻毒实验的保护率不高[7]。Rodriguez等的实验也有类似结果[8]。肽疫苗虽然可以诱导免疫反应,但不能产生有力的保护作用。原因可能是肽疫苗只代表了FMDV部分抗原位点,而且是病毒衣壳的连续区域,然而病毒上的一些抗原位点并不连续,同时FMDV的准种性质也可能导致肽疫苗失效。

2 空衣壳疫苗

病毒空衣壳具有完整的免疫显性位点,降低FMDV准种抗原变异的可能选择,是代替多肽疫苗的新型免疫原。空衣壳由被感染的细胞自然产生,是不含核酸分子的病毒粒子,不具有传染性,但含有和病毒粒子一样的免疫原性[9]。研究者构建了包含衣壳和3C蛋白酶编码区的质粒,其基因产物被认为是衣壳结构蛋白VP0、VP3、VP1过程中所必须的[10]。

早期,研究者使用大肠杆菌等表达的FMDV空衣壳免疫动物,由于最终的抗原表达水平不高,导致结果比不理想。为了提高空衣壳的表达水平,研究者利用活病毒作为载体。目前认为人腺病毒载体和痘病毒载体能高效表达外源基因。利用携带FMDV衣壳序列的重组复制缺陷型人类腺病毒5型(Ad5)来运送免疫原是一种很好的方法。人类腺病毒在人和动物中致病性较低,而且Ad5性腺病毒基因组缺失了复制必须区基因,使其在使用过程中安全性更高。Ad5型腺病毒可以容纳5~8 kb的外源DNA,在特定的包装细胞中复制,注射到动物体内后,自身不能复制,同时能一次性表达外源蛋白,能够诱导比较全面的细胞免疫和体液免疫应答。腺病毒还具有宿主方位广的优点,在猪和牛的多种组织细胞中都能吸附。Mayr等构建了A12型FMDV衣壳蛋白和3C蛋白酶的复制缺陷型病毒载体Ad5-FMDV,在猪中产生特意性中和抗体,5/6的猪在攻毒实验中获得保护,

没有获得保护的猪相对比对照组症状也较轻[11],这些实验都进一步表明,有活性的3C蛋白在疫苗的保护中起到重要作用。随后Moraes等构建重组腺病毒,成功表达A24型FMDV空衣壳粒子,用高剂量免疫猪,诱导产生抗体,在攻毒实验中所有猪均获得免疫[12]。在另外一个类似的试验中,Pacheco等利用Ad5-A24重组腺病毒在牛体内的试验表面,牛接种大剂量的Ad5-A24在7 d后通过舌皮接种攻毒,疫苗组相比于对照组只有一牛出现轻微病症,其余牛都收到很好保护[13]。卢曾君等构建了表达O型FMDV空衣壳的复制缺陷型重组腺病毒Ad-P12x3C,分别在豚鼠和猪的攻毒实验中均获得较好的结果。这些试验表明,重组腺病毒载体疫苗能够在动物体内表达FMDV的空衣壳结构,产生较好的免疫效果。

近年来,一些研究者利用不同的系统,在包含或缺失3C蛋白编码区的情况下表达FMDV的衣壳。Ma等利用重组伪狂犬病毒活载体接种猪,诱导产生了FMDV特异性中和抗体,产生了一定的保护[14]。李志勇等利用一种蚕杆状病毒表达系统,从蚕蛹中分离得到重组病毒衣壳,免疫牛产生中和抗体,28 d后用同源病毒攻击,4/5的牛受到保护[15]。Porta C等将3C蛋白酶的活性减弱,通过改变衣壳上的氨基酸结构,构建更加稳定的衣壳结构,通过杆状病毒得到表达,重组衣壳免疫后34周内使牛获得很好的强毒保护[16]。马文戈等对FMDV的3C蛋白酶进行位点突变,使用P1-2A-9m3C基因重组构建的山羊痘病毒,表达病毒空衣壳,在免疫小鼠的实验中有较高的中和抗体,但在免疫绵羊的实验中并不理想[17]。虽然近几年的研究表明,空衣壳疫苗和传统的灭活疫苗相比没有显著的优势,但由于其没有病毒核酸,使用后动物的不良反应小,安全性高,被认为是改进传统疫苗的候选者。

3 可饲疫苗

可饲疫苗是利用转基因技术将免疫原性基因导入植株中,获得能够表达抗原蛋白的植株。FMDV的可饲疫苗。Wigdomri等将带有FMDV的结构蛋白VP1的转基因苜蓿,经过口服免疫或非经肠道免疫小鼠,产生了相似的病毒特异性免疫反应,并且小鼠在攻毒实验中获得保护[18]。Pan等构建表达FMDV蛋白的pBin438-P12A3C载体,获得能够表达P12A蛋白和3C蛋白酶的转基因番茄,利用番茄叶提取物在豚鼠中产生免疫反应,在攻毒实验中,豚鼠受到有效保护[19]。目前在可饲疫苗的研究中,玉米、水稻、豇豆、马铃薯等植物中都有进行转基因植物的研究。可饲疫苗是当前疫苗研究的热点之一,但如何提高蛋白表达量是急需解决的问题。

4 展望

随着畜牧业的快速发展,集约化、规模化养殖也让口蹄疫疫情控制难度加大,目前许多国家口蹄疫控制依赖于传统疫苗通过强制免疫、建立无病区、对发现疫情进行强制扑杀等手段控制口蹄疫,最大限度减少损失。随着分子技术的不断发展,新型口蹄疫疫苗研究取得长足的进步,虽然目前还处在试验阶段,但研制安全、高效、无毒副作用的新型疫苗是未来研究的方向。

[1]袁文泽,苏永生.1990-2001年世界口蹄疫流行情况及其防制对策[J].中国动物检疫,2002,19(2):43-44.

[2]Zhang L,Zhang J,Chen H T,et al.Research in advance for FMD novel vaccines[J].Virol J,2011,8(1):268.

[3]Rowlands D J,Sangar D V,Brown F.Relationship of the antigenic structure of foot-and-mouth disease virus to the process of infection[J].J Gen Virol,1971,13(1):85-93.

[4]Kleid D G,Yansura D,Small B,et al.Cloned viral protein vaccine for foot-and-mouth disease:responses in cattle and swine[J].Science,1981,214(4525):1125-1129.

[5]Acharya R,Fry E,Stuart D,et al.The three-dimensional structure of foot-and-mouth disease virus at 2.9A resolution[J].Nature,1989,337(6209):709-716.

[6]Bittle J L,Houghten R A,Alexander H,et al.Protection against foot-and-mouth disease by immunization with a chemically synthesized peptide predicted from the viral nucleotide sequence[J].Nature,1982,298(5869):30-33.

[7]Taboga O,Tami C,Carrillo E,et al.A large-scale evaluation of peptide vaccines against foot-and-mouth disease:lack of solid protection in cattle and isolation of escape mutants[J].J Virol,1997,71(4):2606-2614.

[8]Rodriguez L L,Barrera J,Kramer E,et al.A synthetic peptide containing the consensus sequence of the G-H loop region of foot-and-mouth disease virus type-O VP1 and a promiscuous T-helper epitope induces peptide-specific antibodies but fails to protect cattle against viral challenge[J]. Vaccine,2003,21(25/26):3751-3756.

[9]Rweyemamu M M,Terry G,Pay T W,et al.Stability and immunogenicity of empty particles of foot-and-mouth disease virus[J].Arch Virol,1979,59(1/2):69-79.

[10]Vakharia V N,Devaney M A,Moore D M,et al.Proteolytic processing of foot-and-mouth disease virus polyproteins expressed in a cell-free system from clone-derived transcripts[J].J Virol,1987,61(10):3199-3207.

[11]Mayr G A,O'Donnell V,Chinsangaram J,et al.Immune responses and protection against foot-and-mouth disease virus(FMDV)challenge in swine vaccinated with adenovirus-FMDV constructs[J].Vaccine,2001,19:2152-2162.

[12]Moraes M P,Mayr G A,Mason P W,et al.Early protection against homologous challenge after a single dose of replication-defective human adenovirus type 5 expressing capsid proteins of foot-and-mouth disease virus(FMDV)strain A24[J].Vaccine,2002,20(11/12):1631-1639.

[13]Pacheco J M,Brum M C S,Moraes M,et al.Rapid protection of cattle from direct challenge with foot-and-mouth disease virus(FMDV)by a single inoculation with an adenovirus-vectored FMDV subunit vaccine[J].Virology, 2005,337(2):205-209.

[14]Ma M X,Jin N Y,Shen G S,et al.Immune responses of swine inoculated with a recombinant fowlpox virus coexpressing P12A and 3C of FMDV and swine IL-18[J]. Vet Immunol Immunopathol,2008,121(1/2):1-7.

[15]Li Z Y,Yi Y Z,Yin X P,et al.Expression of foot-andmouth disease virus capsid proteins in silkworm-baculovirus expression system and its utilization as a subunit vaccine[J].PLoS One,2008,3(5):e2273.

[16]Porta C,Xu X,Loureiro S,et al.Efficient production of foot-and-mouth disease virus empty capsids in insect cells following down regulation of 3C protease activity[J].Journal of virological methods,2013,187(2):406-412.

[17]Ma W G,Wei J,Wei Y R,et al.Immunogenicity of the capsid precursor and a nine-amino-acid site-directed mutant of the 3C protease of foot-and-mouth disease virus coexpressed by a recombinant goatpox virus[J]. Archives of virology,2014,159(7):1715-1722.

[18]Wigdorovitz A,Carrillo C,Dus Santos M J,et al.Induction of a protective antibody response to foot and mouth disease virus in mice following oral or parenteral immunization with alfalfat ransgenic plants expressing the viral structural protein VP1[J].Virology,1999,255(2):347-353.

[19]Pan L,Zhang Y G,Wang Y L,et al.Protective immune response of guinea pigs against challenge with foot and mouth disease virus by immunization with foliar extracts from transgenic tomato plants ex-pressing the FMDV structural protein VP1[J].WeiShengWu XueBao,2006,46 (5):796-801.

Recent advances of new type foot-and-mouth disease vaccines

Teng Jiarui
(Animal husbandry and veterinary station of Lianjiang,Fujian 350500)

Food-and-mouth disease is a devastating disease of livestock that have great threat of cloven-hoofed animals,cause significant economic losses each year.With the development of molecular techniques which new type foot-and-mouth disease vaccines has become a hot area of research.This essay is summarizing the several kinds of new type foot and mouth disease vaccine.

Foot-and-mouth disease New-type vaccines Recent advances

A

1003-4331(2016)06-0034-03

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