APP下载

免疫细胞在急性肾损伤中的作用研究进展

2016-04-05廖进于泓

山东医药 2016年47期
关键词:调节性活化淋巴细胞

廖进,于泓

(遵义医学院附属医院,贵州 遵义563000)

免疫细胞在急性肾损伤中的作用研究进展

廖进1,于泓2

(遵义医学院附属医院,贵州 遵义563000)

免疫反应与急性肾损伤的发生发展息息相关,虽然作用机制未完全明确,但初步的研究发现,多种免疫细胞参与了急性肾损伤相关免疫炎症反应,包括中性粒细胞、树突状细胞(DC)、巨噬细胞、自然杀伤细胞(NK)、T淋巴细胞、调节性T细胞及NKT细胞等,DC、T淋巴细胞、调节性T细胞在其中起的作用最为重要。DC既是抗原提呈细胞(APC),也是重要的免疫细胞,未成熟DC进入肾组织后可通过分泌细胞损伤因子直接损伤肾脏,而成熟DC可通过表达共刺激分子等,激活T细胞反应而损伤肾脏;T淋巴细胞表面的共刺激分子与APC表面的配体结合,可加重或减轻急性肾损伤;调节性T细胞是具有免疫抑制功能的细胞,通过抑制T细胞的活化、增殖而对急性肾损伤起保护作用。

免疫细胞;急性肾损伤;树突状细胞;T细胞;调节性T细胞

免疫反应(包括天然免疫反应和获得性免疫反应)在急性肾损伤(AKI)的发病机制中发挥了重要作用。AKI发生后多种免疫细胞被激活,包括中性粒细胞、树突状细胞(DC)、巨噬细胞、自然杀伤细胞(NK)、T淋巴细胞、调节性T细胞及NKT细胞等。近年来研究发现,DC、T淋巴细胞、调节性T细胞在其中起重要作用。现将免疫细胞在急性肾损伤中的作用综述如下。

1 DC

DC是一组具有特异形态、结构和功能的抗原提呈细胞,同时也是重要的免疫细胞,按来源可以分为髓样DC和淋巴样DC,肾脏DC(KDC)属于髓样DC(MDC),由骨髓中的巨噬细胞和DC前体细胞分化而来,主要分布于肾小管间质,既参与肾内炎症反应,又与肾脏损伤修复有关。细菌感染(特别是革兰阴性菌)和缺血缺氧均是AKI发生的重要危险因素。脂多糖(LPS)是存在于革兰氏阴性菌外膜外层一种重要的内毒素,可导致强烈的免疫炎症反应。动物实验发现[1],小鼠静脉注射LPS,4 h后KDC开始从肾脏间质向肾脏淋巴结迁移,48 h时在肾淋巴结中达峰值,而且KDC也可向肾脏髓质迁移。Dong报道等[2],给予小鼠LPS静脉注射后,KDC迁移至肾脏髓质,促进抗原特异性T细胞增殖,加强免疫炎症反应。Mancino等[3]的研究显示,适度低氧可抑制DC的分化和成熟标记(CD80、CD83、CD86、MHCⅡ等)的表达,进而抑制DC对T细胞的刺激能力;而长时间低氧可促进DC成熟并诱导T细胞反应。KDC在不同成熟状态可通过不同的方式参与免疫炎症反应。未成熟状态下,DC表现出高吞噬能力,相对低表达MHCⅡ和共刺激分子,刺激T细胞增殖能力弱,在炎症状态下经黏附分子及趋化因子的调节进入肾脏炎症组织,合成分泌细胞损伤因子作用于肾脏固有细胞,导致肾脏的免疫炎症损伤。而成熟DC上调表达共刺激分子和黏附分子,诱导初始T细胞反应,启动并调节细胞毒T淋巴细胞(CTL)反应而参与肾脏免疫炎症反应[4]。DC-SIGN是DC表面C型凝集素的膜蛋白,基本不表达于正常肾组织,而在肾炎早期即以肾小管上皮细胞为主于肾小管间质中表达上调。DC-SIGN阳性DC在肾炎早期以肾间质为主分布聚集,均与肾小管间质病变程度呈正相关。DC-SIGN的干预可抑制DC成熟及其刺激T细胞的能力,也能抑制DC诱导的T细胞增殖,故DC-SIGN及其介导的DC可能通过启动肾小管间质局部炎症及免疫反应,参与肾脏炎性防御及免疫损伤[5~7]。研究发现黏附分子介导DC迁移聚集,参与了缺血再灌注急性肾损伤的病理损伤过程[8]。Dong等[9]报道在缺血再灌注损伤后KDC分泌肿瘤坏死因子等细胞因子,在损伤前清除DC可减轻肿瘤坏死因子的表达。有研究提示缺血再灌注损伤前去除DC可减轻肾损伤及功能障碍,对肾脏起保护作用[10]。

2 T淋巴细胞

T淋巴细胞是目前急性肾损伤研究的热点,在急性肾损伤早期T细胞即可进入肾组织参与免疫炎症反应。Ysebaert等[11]研究缺血再灌注损伤,发现缺血后1 h肾组织内可有T细胞浸润。T淋巴细胞活化需要两个信号的参与,第一信号是T细胞表面的TCR-CD3 复合物与抗原提呈细胞(APC)上的抗原肽-MHC复合物的特异性结合;第二信号是T 细胞上的共刺激分子与APC 表面的配体结合的共同作用,它决定着T细胞是分化、增殖为效应细胞,还是进入无反应状态,提示通过控制共刺激信号可增强或终止T细胞活化,从而控制免疫炎症反应。共刺激分子对包括CD40/CD40L、B7∶CD28/CTLA-4、ICOS/B7RP-1等,目前主要的、研究较多的共刺激分子对是B7: CD28/CTLA-4。陈恕求等[12]研究T细胞在小鼠肾缺血再灌注损伤中的作用,结果提示T淋巴细胞是缺血再灌注损伤导致急性肾损伤的重要病理生理学因素。Rabb等[13]研究缺血再灌注肾损伤,发现缺血48 h后,CD4+/CD8+T淋巴细胞基因敲除小鼠与未敲除基因小鼠相比,肾功能有明显改善,中性粒细胞浸润减少。研究报道,霉酚酸酯,一种选择性淋巴细胞抗增殖剂,可减轻肾移植所致的缺血再灌注损伤[14]。FTY720,一种新型免疫抑制剂,可通过改变淋巴细胞对趋化因子归巢信号的反应,减少炎症部位中淋巴细胞的数量而减轻肾缺血再灌注损伤[15]。

CTLA-4也称为CD152,与CD28同为CD28家族成员,CTLA-4和CD28均为I型跨膜糖蛋白,属于免疫球蛋白超家族,两者结构相似,在DNA序列上同源性达70%。CTLA-4只表达于活化的T细胞表面,且表达量为CD28的2%~3%,是主要的负性共刺激分子,即抑制T细胞的活化,以此减轻免疫炎症反应,从而减少急性肾损伤。CTLA-4可能根据表达水平的不同通过两种机制抑制T淋巴细胞,一是释放抑制信号,二是拮抗CD28与B7的结合[16]。CD28表达于静止或激活的T细胞,是主要的正性共刺激分子,即刺激T细胞活化、增殖为效应T细胞,从而增强免疫炎症反应,进而加重急性肾损伤。两者均可与B7家族成员结合, B7家族成员中最早发现的是B7-1和B7-2,B7-1也称为CD80,B7-2也称为CD86,均属于免疫球蛋白超家族。两者均以单体形式表达于APC表面,在未受抗原刺激的APC中几乎不表达,但经活化后两者的表达明显上调。B7与T细胞上的CD28和CTLA-4互为配受体,CTLA-4与B7的结合力高于CD28达20倍以上,CD28与B7-1的亲和力高于B7-2,而CTLA-4与B7-1的亲和力高于CD28,因此CTLA-4优先与B7-1结合。在Th1参与的免疫反应中,B7-1起关键作用,因CTLA-4与B7-1亲和力强,故其较CD28竞争力强,当APC细胞表面表达较低水平的B7分子时,CTLA-4可先与B7分子结合抑制T细胞的活化。研究发现,用CTLA-4单抗阻断CTLA-4与B7的结合,可使T细胞增殖、活化能力显著增强[17]。还有研究报道,用CTLA-4Ig阻断T细胞CD28-B7共刺激通路可抑制T细胞的浸润和活化,对缺血再灌注肾损伤发挥保护作用[18]。Odobasie等[19]用抗CD80抗体及抗CD86抗体同时治疗抗肾小球基底膜肾炎小鼠,发现可减轻肾小球CD4+T细胞和巨噬细胞的聚集,减少新月体形成和蛋白尿,而单独使用二者之一则没有此作用。

3 调节性T细胞

调节性T细胞(Tregs)是T细胞中一类具有免疫抑制功能的细胞,在AKI中起抗炎作用,减轻肾脏的损伤程度,促进肾脏的修复。Tregs同时表达CD4和CD25表面抗原,分为两类,一类是天然产生的自然调节性T细胞(nTreg),另一类是诱导产生的适应性调节性T细胞(iTreg)。nTreg来源于胸腺,在胸腺内通过阴性选择发育成熟,占外周血CD4+T细胞的10%~20%,可通过分泌IL-10、TGF-β及细胞与细胞间的接触发挥作用。iTreg是由抗原刺激诱导外周CD25+T细胞而产生,可能通过抑制IL-2的表达产生免疫抑制微环境而发挥作用的。Tregs表面有一些较特异的分子,如CTLA-4、Foxp3、CD127、CD103、CD25等。许多实验证实Tregs参与自身免疫性疾病、炎症性疾病、肿瘤、过敏性疾病以及器官移植抗排斥反应等。研究发现,在顺铂诱导的AKI、阿霉素诱导的肾损伤及抗肾小球基底膜肾炎等中Tregs通过抗炎作用减轻了肾损伤并促进其修复[20~22]。Tregs的抗炎作用机制可能通过分泌IL-10、TGF-β等直接抑制T细胞活化;也可通过APC间接抑制T细胞激活;还可通过Tregs表达的CTLA-4与APC表面的CD80或CD86结合抑制T细胞活化、增殖。Kinsey等[23]发现将野生型小鼠和Foxp3基因敲除小鼠的淋巴结转移至T细胞和B细胞缺陷小鼠体内,前者使其产生FoxP3阳性Tregs并减轻缺血再灌注导致的肾损伤,结果表明Tregs调节肾脏损伤是通过抑制IL-10介导的先天免疫系统。Mahajan等[24]发现在阿霉素诱导的肾损伤中,抗TGF-β抗体可去除Tregs对肾脏的保护作用,提示TGF-β在Tregs的保护作用中发挥了重要作用。Lai等[25]发现小鼠缺血再灌注肾损伤后,应用鞘氨醇激酶抑制剂可使Tregs增加并迁移至损伤处而保护肾脏,这是通过CTLA-4下调DC表面的共刺激分子而实现的,若阻断CTLA-4则作用消失。Monteiro等[26]在缺血再灌注损伤前除去小鼠体内Tregs,与野生型小鼠相比,在72 h时尿素氮水平和肾脏评分有明显差异,提示去除Tregs可加重肾脏损伤。Gandolfo等[27]使用缺血性急性肾损伤的鼠模型,发现在3 d和10 d后有Treg进入肾脏,而缺血性损伤使用抗CD25抗体1天后Treg开始耗竭,增加了肾小管损伤,在3 d和10 d时分别通过增强浸润性T淋巴细胞因子的产生和TCRβ+CD4+T细胞产生肿瘤坏死因子-α而减少肾小管增殖,当初始损伤后1 d输注CD4+CD25+Treg,3 d时TCRβ+CD4+T细胞INF-γ分泌降低。

急性肾损伤是临床治疗的难题,血液透析治疗主要是从循环中清除溶质以改善预后,但此法是等待肾脏的自身修复,治疗时间长、费用高、效果欠佳。免疫细胞在急性肾损伤中作用的发现给我们提供了新的思路,目前有许多研究致力于开发以免疫细胞为靶点治疗AKI的药物,虽然暂无药物应用于临床,但这将是治疗AKI的希望所在。

[1] Roake JA, Rao AS, Morris PJ, at al. Dendritic cell loss from nonlymphiod tissues after systemic administration of lipopolysaccharide,tumor necrosis factor,and in-terleukin 1[J]. J Exp Med, 1995,181(6):2237-2247.

[2] Dong X, Swaminathan S, Bachman LA, et al. Antigen presentation by dendritic cells in renal lymph nodes is linked to systemic and local injury to the kidney[J]. KidneyInt, 2005,68(3):1096-1108.

[3] Mancino A, Schioppa T, Larghi P, et al. Divergent effects of hypoxia on dendritic cell function[J]. Blood, 2008,112(9):3723-3734.

[4] 陈楠.树突状细胞:肾脏疾病干预调节的新靶标[J].中华肾脏病杂志,2006(10):587-588.

[5] 周同,张玉梅,李晓,等.树突状细胞C型凝集素DC-SIGN在人肾炎组织和肾小管上皮细胞表达[J].细胞生物学杂志,2006,28:752-756.

[6] 周同,孙桂芝,张玉梅,等.抗P-选择素凝集素-EGF功能域单抗对人树突状细胞成熟及功能抑制作用分析[J].细胞生物学杂志,2006,28:201-205.

[7] Geijtenbeek TB, Kwon DS, Torensma R, et al. DC-SIGN, a dendritic cell-specific HIV-1-binding protein that enhances trans-infection of T cells[J]. Cell, 2000,100(5):587-597.

[8] 周同,孙桂芝,张玉梅,等.抗黏附治疗对大鼠急性肾损伤中 树突状细胞迁移聚集的影响[J].中国微循环,2003(5):273-276.

[9] Dong X, Swaminathan S, Bachman LA, et al. Resident dendritic cells are the predo- minant TNF-secreting cell in early renal ischemia-reperfusion injury.Kidney Int, 2007,71(7):619-628.

[10] Li L, Okusa MD. Macrophages,dendritic cells, and kidney ischemiareperfusion injury[J]. Semin Nephrol, 2010,30(3):268-277.

[11] Ysebaert DK, De Greef KE, De Beuf A, et al. T cells as mediators in renal ischemia/reperfusion injury[J]. Kidney Int, 2004,66(2):491-496.

[12] 陈恕求,陈明,张古田,等.T淋巴细胞在小鼠肾缺血再灌注损伤中的作用[J].中国实验动物学报,2007(1):21-24.

[13] Rabb H, Daniels FO, Donnell M, et al. Pathophysiological role of T lymphocytes in renal ischemia-reperfusion injury in mice[J]. Am J Physiol Renal Physiol, 2000,279(3):525-531.

[14] Ysebaert DK, Greef KE, Vercauteren SR, et al. Effect of immunosuppression on damage,leukocyte infiltration,and regeneration after severe warm ischemia/reper-fusion renal injury[J]. Kidney Int, 2003,64(3):864-873.

[15] Suleiman M,Cury PM,Pestana JO,et al.FTY720 prevents renal T-cell infiltrationAfter ischemia/reperfusion injury[J].Transplant Proc,2005,37(1):373-374.

[16] Kroczek R,Hamelmann E.T-cell costimulatory molecules:optimal targets for theTreatment of allergic airway disease with monoclonal antibodies[J].J Allergy ClinImmunol,2005,116(4):906-909.

[17] Linsley PS. Distinct roles for CD28 and cytotoxic T lymphocyte- associated molecule- 4 receptors during T cell activation[ J] . J Exp Med, 1995, 182: 289- 292.

[18] Takada M, Chandraker A, Nadeau KC,et al. The role of the B7 costimulatory path-Way in experimental cold ischemia/reperfusion injury[J]. J Clin Invest, 1997,100(5):1199-1203.

[19] Odobasie D, Kitching AR, Semple TJ, et al. Glomernlar expression of CD8O and CD86 is required for leukocyte accumulation and injury in crescentic glomernlonephr-itis[J]. J Am Soc Nephrol, 2005,16(7):2012-2022.

[20] Lee H, Nho D, Chung HS, et al. CD4+CD25+regulatory T cells attenuate cisplatin-induced nephrotoxicity in mice[J]. Kidney Int, 2010,78(11):1100-1109.

[21] Mahajan D, Wang Y, Qin X, et al. CD4+CD25+regulatory T cells protect against injury in an innate murine model of chronic kidney disease[J]. J Am Soc Nephrol, 2006,17(10):2731-2741.

[22] Wolf D, Hochegger K, Wolf AM, et al. CD4+CD25+regulatory T cells inhibit experimental anti-glomerular basement membrane glomerulonephritis in mice[J]. J Am Soc Nephrol, 2005,16(5):1360-1370.

[23] Kinsey GR, Sharma R, Huang L, et al. Regulatory T cells suppress innate immunity in kidney ischemia-reperfusion injury[J].J Am Soc Nephrol, 2009, 20(8): 1744-1753.

[24] Mahajan D, Wang Y, Qin X,et al. CD4+CD25+regulatory T cells protect against injury in an innate murine model of chronic kidney disease[J]. J Am Soc Nephrol,2006,17(10):2731-2741.

[25] Lai LW, Yong KC, Lien YH. Pharmacologic recruitment of regulatory T cells as a therapy for ischemic acute kidney injury[J]. Kidney Int, 2012,81(10):983-992.

[26] Monteiro RM, Camara NO, Rodriggues MM, et al. A role for regulatory T cells in renalacute kidney injury[J]. Transpl Immunol, 2009,21(1):50-55.

[27] Gandolfo MT, Jang HR, Bagnasco SM, et al. Foap3+ regulatory T cells participate In repair of ischemic acute kidney injury[J]. Kidney Int, 2009,76(7):717-729.

贵州省科技厅社发攻关项目(20113043)。

于泓(E-mail: 472623484@qq.com)

10.3969/j.issn.1002-266X.2016.47.033

R692.5

A

1002-266X(2016)47-0104-03

2016-08-23)

猜你喜欢

调节性活化淋巴细胞
无Sn-Pd活化法制备PANI/Cu导电织物
遗传性T淋巴细胞免疫缺陷在百草枯所致肺纤维化中的作用
生姜对亚硝胺合成及体内代谢活化的抑制作用
小学生活化写作教学思考
调节性T细胞在急性白血病中的作用
人及小鼠胰腺癌组织介导调节性T细胞聚集的趋化因子通路
部分调节性内斜视远期疗效分析
探讨CD4+CD25+Foxp3+调节性T淋巴细胞在HCV早期感染的作用
乳腺癌原发灶T淋巴细胞浸润与预后的关系
有机酸对五种人工合成磷酸盐活化作用及活化途径的研究