APP下载

Cajal间质细胞自噬与STC关系的研究进展

2016-04-05关永俊郑阳王长友张国志曹文斌单雨静胥平湘

山东医药 2016年40期
关键词:胃肠道结肠传输

关永俊,郑阳,王长友,张国志,曹文斌,单雨静,胥平湘

(华北理工大学附属医院,河北唐山063000)



Cajal间质细胞自噬与STC关系的研究进展

关永俊,郑阳,王长友,张国志,曹文斌,单雨静,胥平湘

(华北理工大学附属医院,河北唐山063000)

慢传输型便秘(STC)的发病机制目前尚未完全明确。胃肠道的运动取决于胃肠道的肌电活动。慢波是胃肠道肌电活动的起步电位,决定胃肠道平滑肌收缩的节律,是胃动力的基础。Cajal间质细胞(ICC)是胃肠道慢波活动的起搏细胞,可控制胃肠道的运动功能,其异常变化与STC发病有关。自噬是细胞程序性死亡的方式之一,适当自噬对营养缺乏状态下的细胞具有保护作用,过度自噬会诱导细胞发生Ⅱ型程序性细胞死亡,引起自噬性凋亡。ICC过度自噬可导致胃肠道肌电活动异常,可能是STC发生的关键因素之一。

慢传输型便秘;Cajal间质细胞;细胞自噬

慢传输型便秘(STC)是由于各种原因造成的结肠运动功能迟缓、传输粪便功能下降而致的顽固性便秘;临床主要表现为排便次数减少,粪便量少且干,并伴有腹胀、腹痛。STC的发病机制尚未明确,临床上缺乏有效的治疗措施。多数患者需长期依赖各种泻剂排便,部分患者最终需手术切除传输迟缓的结肠[1]。胃肠道的运动取决于胃肠道的肌电活动。慢波是胃肠道肌电活动的起步电位,决定胃肠道平滑肌收缩的节律,是胃动力的基础。Cajal间质细胞(ICC)为西班牙神经解剖学专家Cajal首次在胃肠道中发现的,该细胞呈网络状分布于神经细胞和胃肠道平滑肌之间[2]。众多研究证实,ICC是具有独立功能的间质细胞,能产生慢波并传导电活动,是胃肠道慢波活动的起搏和调节细胞[3,4]。自噬是细胞程序性死亡的方式之一,适当自噬对营养缺乏状态下的细胞具有保护作用,过度自噬会诱导细胞

发生Ⅱ型程序性细胞死亡,引起自噬性凋亡;过度自噬可导致胃肠道肌电活动异常。有研究认为,ICC过度自噬可能是STC发病的重要原因。本文结合文献就ICC自噬与STC关系的研究进展综述如下。

1 ICC特征及调节胃肠道动力的机制

1.1 ICC的形态学及组织学特征 在光镜下ICC呈纺锤形或卫星形,细胞核较大,呈卵圆形或椭圆形,核周有少量细胞质,从核区胞体发出2~5条长突起。电镜下ICC存在大量的线粒体、内质网和中间丝,无粗肌丝;ICC之间及ICC与平滑肌之间没有空隙,依靠缝隙连接紧密结合,具有发达的光面内质网,粗面内质网比较稀疏,高尔基体发育良好;有膜内陷空泡,基膜不完整[4,5]。嗜银染色、亚甲基蓝染色、碘化锌-锇酸染色标记的ICC均缺乏特异性。Rich等[6]用酪氨酸激酶受体(c-kit)蛋白特异抗体阻断新生小鼠kit受体功能时发现,小鼠肠腔扩张、肠壁ICC数量减少,提示kit蛋白对ICC的生长、发育具有一定调节作用。此后有研究证实,胃肠道肥大细胞和ICC均可表达c-kit, 但肥大细胞在亚甲基蓝染色后呈紫红色,这是ICC与肥大细胞的不同之处[7]。

1.2 ICC调节胃肠道动力的机制 ICC一般分为四类:①黏膜下ICC(IC-SM):主要位于黏膜下环形肌层表面,可作为产生慢波电位的起搏细胞;②肌间ICC(IC-MP):主要位于环形肌与纵行肌之间,可作为产生慢波电位的起搏细胞;③肌内ICC(IC-IM):主要位于环形肌与纵行肌之内,其功能是参与神经信号的传输;④深层肌丛ICC(IC-DMP):主要位于环形肌丛内,其功能与IC-SM、IC-MP相似,亦可作为产生慢波电位的起搏细胞[7,8]。

胃肠道的蠕动依靠慢波的形成。Stuart等[9]通过对猫的小肠研究发现,慢波并不起源于神经,很可能源自纵肌层内。进一步研究发现,纵肌层内除纵肌之外,还有大量的ICC。由此推断ICC亦可产生慢波。Smith等[10]研究发现,猫和狗结肠的慢波首先在黏膜下出现,之后在环形肌出现;将环形肌下黏膜组织及少量肌细胞同时剥离,黏膜组织上的肌细胞仍有正常慢波存在,而剩余的环形肌慢波消失。因此推测,环形肌黏膜面是结肠慢波起源的部位,并与该部位存在大量的ICC有关。

c-kit属于原癌基因,与小肠ICC的发育有关,能够维持ICC的生存和发育,决定ICC发育的谱系和形态以及出生后表型的维持。Torihashi等[11]向新生小鼠体内注射c-kit单克隆抗体ACK2直接中和c-kit,发现ICC生长发育受损,并引起肠道平滑肌异常收缩。Bellier等[12]研究发现,随着小鼠肠道ICC数量增加,肠壁的慢波频率增加,收缩速度也增快。Huizinga等[13]在分离的ICC中记录到节律性电活动,进一步证实ICC是肠道慢波产生的部位。因此认为,ICC是胃肠道运动的起搏细胞,依靠其产生的慢波来控制胃肠道的运动;而ICC的发育与c-kit有关,调控c-kit亦可控制胃肠道的运动。

ICC产生慢波的机制目前尚不明确,可能与ICC膜离子电流密切相关。其产生慢波的机制目前主要有两种学说,即钙激活氯通道学说、非选择性阳离子通道学说。Tokutomi等[14]研究发现,肠道起搏电流的形成与Cl-选择性通道有关,且其起搏电流能被氯通道阻滞剂抑制。有研究还发现,豚鼠胃窦部产生的慢波与环形肌钙激活的氯电流有关。有研究在胃肠道间质瘤中发现了参与慢波形成的特异性标志蛋白,即钙激活氯通道蛋白,这为慢波产生的机制与氯通道有关提供了有力支持。对ICC采用钙通道阻滞剂后,其电活动并未发生改变,表明ICC能够产生Ca2+调节和电压依赖的非选择性钙离子电流。Perrino[15]研究发现,ICC的电活动随细胞外Ca2+的减少而减弱,但ICC的电活动对钙通道抑制剂并不敏感,而ICC的起搏电流频率与电流活动周期完全吻合,证实ICC的电活动与Ca2+密切相关。Zhu等[16]研究证实,K+通道不仅参与小肠ICC膜电位形成,同时在小肠ICC起搏活动中占有重要地位。总之,起搏电流受多种通道和离子的影响,但主要参与ICC起搏和传导功能的离子通道至今尚未明确。

2 ICC自噬与STC的关系

自噬是细胞程序性死亡的方式之一,也是细胞的一种自我保护机制。其本质是来源于内质网、高尔基体或内体脂质双层区的杯状分割膜,分割膜结构逐渐延长,吞噬包裹受损的细胞器及部分细胞质并形成自噬体;Atg1~10、Atg16、Atg18等多种自噬相关基因亦参与自噬体的形成[17]。自噬体与溶酶体膜结合并形成自噬性溶酶体,其包裹的物质可通过溶酶体蛋白酶降解。自噬一方面可清除无功能的细胞器以及无用的生物大分子等,另一方面可产生一些副产物,如氨基酸、脂肪酸、核糖酸等小分子物质,然后通过溶酶体膜通透性和转运蛋白运送到胞质中,进入三羧酸循环,产生小分子和ATP,重新被细胞利用,为细胞的生长发育提供支持。国内外众多研究发现,STC患者结肠ICC明显减少。Lyford等[18]研究发现,STC患者全结肠ICC体积明显减小,但结肠癌患者全结肠ICC体积和形态无异常改变;STC患者结肠ICC体积较正常结肠组织ICC体积明显缩小,同时伴有结肠环形肌层神经元的减少;此外,ICC细胞不能相互连接成网状结构,或者ICC突起且连接杂乱。ICC的这种明显改变可能与STC患者的结直肠功能紊乱密切相关。Tong等[19]对15例STC患儿研究发现,5例患儿结肠ICC的数量及胞突减少。谭至柔等[20]研究亦发现,STC患者结肠中ICC明显减少。以上研究说明,STC的发病与ICC形态异常及数量减少有关。

近年研究发现,ICC自噬可能与STC发病有关[21]。有研究证实,适当的自噬对营养缺乏状态下的细胞具有保护作用,并能促进细胞的存活;过度的自噬会产生大量的自噬体,超过溶酶体蛋白酶的降解能力,会诱导细胞发生Ⅱ型程序性细胞死亡,引起自噬性凋亡[22]。位于纵行肌和环形肌之间的Cajal间质细胞可产生慢波,引起胃肠道平滑肌自动节律性运动。ICC产生慢波与细胞内Ca2+的变化密切相关,细胞内Ca2+升高的主要原因是细胞外Ca2+内流和钙库释放。当钙库内Ca2+耗竭时,控制钙库的钙通道被激活,大量细胞外Ca2+内流,导致细胞内Ca2+超载,诱发自噬性凋亡。细胞内Ca2+超载可诱发自噬,是细胞自噬的启动因素之一[23~26]。因此,ICC过度自噬可能是STC发生的关键因素之一。

目前认为,STC的发病机制与ICC功能异常、水通道蛋白异常表达、肠神经病变、胃肠激素分泌异常及精神心理障碍等有关,其中与ICC功能异常的关系最为密切。故明确ICC功能异常的原因,研发以ICC自噬为靶点的药物,对STC的治疗具有重要意义。

[1] 王振华,丁良,梁婧,等.Cajal间质细胞在慢性传输型便秘中的临床研究进展[J].湖南中医杂志,2015,31(31):164-165.

[2] 钱静蓉,黄蔚.硫化氢对肝硬化门脉高压症大鼠胃窦Cajal间质细胞超微结构的影响[J].中南药学,2015,13(6):609-612.

[3] Wang XY, Chen JH, Li K, et al. Discrepancies between c-Kit positive and positive ICC-SMP in the W/Wv and wild-type mouse colon; relationships with motor patterns and calcium transients[J]. Neurogastroenterol Motil, 2014,26(9):1298-1310.

[4] 陆春霞,余芝,徐斌,等.针刺治疗慢传输型便秘的研究进展[J].中国老年学杂志,2016,36(1):208-210.

[5] 宁海恩,凌江江.酶解法分离与同源血清培养SD大鼠Cajal间质细胞的实验研究[J].广西中医药大学学报,2016,19(1):8-12.

[6] Rich A, Miller SM, Gibbons SJ, et al. Local presentation of Steel factor increases expression of c-kit immunoreactive interstitial cells of Cajal in culture[J]. Am J Physicol Gastrointest Liver Physiol, 2003,284(2):G313-G320.

[7] Edwards FR, Hirst GD. An electrical analysis of slow wave propagation in the guinea-pig gastric antrun[J]. J Physiol, 2006,571(Pt 1):179-189.

[8] Vannucchi MG. Receptors in interstitial cells of Cajal: identification and possible physiological roles[J]. Microsc Res Tech, 1999,47(5):325-335.

[9] Stuart S, Conner T, Ahmed A, et al. The smaller bowel: imaging the small bowel in paediatric Crohn′s disease[J]. Postgrad Med J, 2011,87(1026):288-297.

[10] Smith TK, Park KJ, Hennig GW, et al. Colonic migrating motor complexes, high amplitude propagating contractions, neural reflexes and the importance of neuronal and mucosal serotonin[J]. J Neuroqastroenterol Motil, 2014,20(4):423-446.

[11] Torihashi S, Ward SM, Nishikawa S, et al. c-kit-dependent development of interstitial cells and electrical activity in the murine gastrointestinal tract[J]. Cell Tissue Res, 1995,280(1):97-111.

[12] Bellier S, Da Silva NR, Aubin-Houzelstein G, et al. Accelerated intestinal transit in inbred mice with an increased number of interstitial cells of Cajal[J]. Am J Physjol Gastrointest Liver Physiol, 2005,288(1):G15l-G158.

[13] Huizinga JD, Thuneberg L, Kluppel M, et al. W/kit gene required for interstitial cells of Cajal and for intestinal pacemaker activity[J]. Nature, 1995,373(6512):347-349.

[14] Tokutomi N, Maeda H, Tokutomi Y, et al. Rhythmic Cl-current and physiological roles of the intestinal c-kit-positive cells[J]. Pfluaers Arch, 1995,431(2):169-177.

[15] Perrino BA. Regulation of gastrointestinal motility by Ca2+/calmodulin-stimulated protein kinase Ⅱ[J]. Arch Biochem Biophys, 2011,510(2):174-181.

[16] Zhu Y, Golden CM, Ye J, et al. ERG K+currents regulate pacemaker activity in ICC[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2003,285(6):G1249-G1258.

[17] Simonsen A, Tooze SA. Coordination of membrane events during autophagy by multiple class Ⅲ PI3-kinase complexes[J]. J Cell Biol, 2009,186(6):773-782.

[18] Lyford GL, He CL, Softer E, et al. Pan-colonic decrease in interstitial cells of Cajal in patients with slow transit constipation[J]. Gut, 2002,51(4):496-501.

[19] Tong WD, Liu BH, Zhang LY, et al. Decreased interstitial cells of Cajal in the sigmoid colon of patients with slow transit constipation[J]. Int J Colorectal Dis, 2004,19(5):467-476.

[20] 谭至柔,谭丽,黄雪,等.慢传输型便秘大鼠结肠内Cajal间质细胞的变化[J].实用医学杂志,2011,27(18):125-1134.

[21] 纪西云,凌江红.Cajal间质细胞、细胞自噬与胃肠动力障碍[J].广西医科大学学报,2013,30(3):485-487.

[22] 李芳,李绍冰,姚丽霞,等.大鼠钙化血管平滑肌细胞IP3RI表达的变化[J].广东医学,2011,32(22):2937-2939.

[23] 王赞,石玉秀.应激的细胞反应上调细胞自噬的机制[J].解剖科学进展,2015,21(4):439-442.

[24] Pierdominici M, Vomero M, Barbati C, et al. Role of autophagy in immunity and autoimmunity, with a special focus on systemic lupus erythematosus[J]. FASEB J, 2012,26(4):1400-1412.

[25] 戴彦成,张亚莉,唐志鹏.ICC自噬调控——溃疡性结肠炎肠动力紊乱治疗的新靶点[J].胃肠病学,2015,20(6):377-379.

[26] 李睿明,易燕锋,张蓓,等.基于Cajal间质细胞异常的胃肠道动力障碍动物模型研究进展评述[J].现代中西医结合杂志,2008,17(16):2576-2577.

河北省医学科学研究课题计划项目(20150088)。

王长友(E-mail: fhbj-2004@163.com)

10.3969/j.issn.1002-266X.2016.40.036

R574.4

A

1002-266X(2016)40-0104-03

2015-11-22)

猜你喜欢

胃肠道结肠传输
体外仿生胃肠道模型的开发与应用
微小RNA在先天性巨结肠中的研究进展
混合型随机微分方程的传输不等式
胃肠道间质瘤的CT诊断价值
牵引8K超高清传输时代 FIBBR Pure38K
提壶揭盖法论治热结肠腑所致咳嗽
关于无线电力传输的探究
支持长距离4K HDR传输 AudioQuest Pearl、 Forest、 Cinnamon HDMI线
经肛门结肠拖出术治疗先天性巨结肠护理体会
“泻剂结肠”的研究进展