母猪子宫内膜炎的危害、治疗与模型建立

2016-02-16隋国光肖红波

湖南畜牧兽医 2016年6期

关键词：膜炎发情猪场

隋国光，庞培，肖红波

（湖南农业大学动物医学院，湖南长沙410128）

母猪子宫内膜炎的危害、治疗与模型建立

隋国光，庞培，肖红波※

（湖南农业大学动物医学院，湖南长沙410128）

若母猪患子宫内膜炎则会引起母猪体温升高，食欲不佳，每胎成活率下降等疾病，因此会对养殖户造成极大的经济损失。临床上通常以出现以下几点为依据来判断是否患该病：基本不发情；即正常发情，但不能正常妊娠；能正常妊娠，但极易流产。此病有三种形式：急性子宫内膜炎；慢性子宫内膜炎；隐形子宫内膜炎。通过实地调查和临床实践，将给出几种治疗方法。与此同时，关于子宫内膜炎的模型建立也倍受研究人员关注，一个合适的模型对实验来说是事半功倍的选择，故也将列出几个常用模型以供参考。

子宫内膜炎；危害；诊断；母猪;子宫内膜炎模型

在现实生活中，猪场饲养员经常会注意到母猪不但很难发情，而且发情间隔又长，有的甚至假发情或屡配不孕。在妊娠后期，有的母猪容易出现食欲不振，消化不良，由此流产、死胎、木乃伊胎极多。等到分娩时，产程相当长，母猪体力消耗大，造成乳猪窒息。哺乳期母猪不喜食，精神萎靡，奶水不足，吃此母猪奶水的仔猪容易拉稀，易死亡[1]。以上都是子宫内膜炎的表现。同时引起子宫内膜炎的病原体一般是大肠杆菌、棒状杆菌、绿脓杆菌、葡萄球菌、链球菌等。有人曾报道过，该病在集约化，规模化猪场里发病率达到35％。由于客观条件的限制，抗生素和消炎药二者被广泛使用，病原微生物的耐药性也日渐变强，所以子宫内膜炎的发病率不断升高，因此淘汰的母猪率大幅升高[2]。所以，不可小觑子宫内膜炎的危害，诊断和治疗。

1致病因素

1.1内源性感染

一方面，一些疾病，比如蓝耳、滴虫、链球菌感染易导致子宫内膜炎；另一方面，曾患该病，未痊愈，子宫颈闭合，直到仔猪断奶，子宫内膜炎复发[3]。

1.2遗传因素

母猪通过胎盘传染给仔猪，仔猪将终身带毒，不容易发情。

1.3定位栏使用

活动范围受限，运动不足，免疫力和抵抗力差，身体素质差，极易感染。

1.4配种不严格

有些饲养员或输精员不注重消毒，配种前臀部清洗不彻底将细菌带入子宫内，插输精管力度过大损伤内膜；当自然配种时，母猪外阴和公猪生殖器清洗不到位，也会带进细菌感染子宫。

1.5产程过长

生产上以5小时为界，超过5小时则视为难产。因为生产时间过长，体力消耗巨大，体力不支，造成子宫颈开放时间过长，感染机会加大。

1.6助产不规范

一些饲养员因为夜间接产比较辛苦，忽略了消毒，极易将细菌带入。有时助产工具会划伤子宫，同样会造成感染。

1.7饲养环境脏乱差

母猪饲养环境脏乱差，特别是刚生产的母猪及仔猪粪便处理不及时，母猪又极度喜卧，细菌更易侵入随之感染[4]。

2常见类型

2.1急性子宫内膜炎

母猪在生产或流产后1天左右体温骤升至40.5～41.5℃，基本不食，不情愿走动和喂奶，懒惰，钟情于躺卧。经常出现排尿动作，弓背，努责并且从阴道口会流出腥臭味的灰褐色胶状样或红褐色的污秽物。

2.2慢性子宫内膜炎

几乎都由急性子宫内膜炎转变而来，全身症状不明显。体温偶尔会有升高，食欲减退，泌乳量降低。发情周期不正常，偶尔发情周期正常但是会出现屡配不孕，甚至有返情出现。冲洗此部位会有灰白色液体回流，与淘米水相似。发情时阴道分泌物增多，稍微浑浊且有脓性分泌物，可通过发情时阴道分泌物的性状、阴道检查、直肠检查从而做出判断。

患慢性子宫内膜炎的母猪分泌物量较多，呈现粘稠，浑浊，颜色偏白，其严重程度以采集阴道分泌物进行打分评价。评价分数标准如下，“0”分,子宫内容物清亮或较清凉,伴有白色絮状物。“1”分,子宫内容物有少量脓液。“2”分,子宫内容物有大量浓性黄色脓液。“3”分,子宫内容物脓性粘液呈现黄白色恶臭。

阴道检查时,可观察到子宫颈口不同程度肿胀和充血,当子宫颈口封闭不全时,可观察到子宫颈口排出不同性状的炎性分泌物,子宫排出物的颜色为棕、灰或红色，直肠检查可感觉到子宫角稍变粗,子宫壁增厚,弹性和收缩反应微弱。

2.3隐形子宫内膜炎

几乎没有全身症状，也不会看到有恶露流出。几乎不发情，偶尔碰到发情的也会出现配种不成功，即使配种成功了，也会流产。对其进行直肠检察时，明显感到子宫角增大。

3主要危害

3.1母猪淘汰率大幅升高

优秀猪场是差的猪场非正常淘汰率的三分之一。而饲养1头母猪成本又高，每淘汰一头母猪，猪场损失就多一些。因患此病的母猪使用年限也被缩短至1～2年，不到正常使用年限的一半。

3.2母猪年产胎数减少

发情周期不稳定且一般会发情期延长，导致非生产天数增多，从而影响了年产胎数。

3.3受孕率降低

慢性子宫内膜炎母猪由于返情率高，对受孕率影响特别大。有时隐形子宫内膜炎不被发现，易被错配，此时一般不会受孕。

3.4奶水差、仔猪瘦弱

患病母猪一般不喜食，精神不佳，奶水自然质量差，数量少，仔猪营养不足，加上仔猪有可能感染该病，故大多仔猪消瘦，易生病，存活率低。

4预防措施

4.1保持猪舍卫生

规模化猪场每天按照流程对产床及周围环境进行打扫，拖干净，每早清理掉未吃完饲料。根据当天天气情况去开水帘和风机，保持猪舍合理温度和湿度。家庭型猪场也该打扫和拖干净产床，并及时清理掉槽内饲料。规模化猪场还需让母猪适当运动以增强其免疫力。

4.2严格控制配种过程

在配种前，用加适量滴露的温水和海绵认真细致擦洗母猪臀部和阴部，输精管要柔和的插入以防划伤子宫。其次，尽量避免自然配种。

4.3分娩前消毒要及时

分娩前，在母猪排出粪便之后，立即用加了新洁尔灭的温水和干净的海绵擦洗臀部和阴户。

4.4助产适当及注射消炎药

当母猪产程达到5小时时，要考虑对其进行助产，助产工具宜圆润，助产手法宜温和不宜粗鲁，助产过后一定要及时注射青、链霉素，以防感染[5]。

5治疗措施

5.1冲洗子宫

若发现阴户有分泌物出现，则必须首先进行子宫冲洗。冲洗溶液可选择0.2％的新洁尔灭、0.1％的高锰酸钾。再用0.9％的生理盐水冲洗直到溶液排干净。冲洗过程中若出现子宫颈不张开的情况立即注射前列腺素使其张开[6]。

5.2药物治疗

青霉素400 IU、链霉素200 IU、0.9％生理盐水100 mL，1次/天，连续3～5天；先锋霉素5号4 g，地塞米松24 mg，5％葡萄糖生理盐水500 mL，静注；肌注条件下，使用中药，方用：甘草、白术、党参、陈皮、黄氏各10 g，当归12 g，益母草15 g，1天1剂，连服5天[7]。

6子宫内膜炎模型方法对比

随着科学技术的飞速发展，在动物医学的研究上发生了极大的进步。在实验室方面的成就也成果颇丰。既然实验室研究，那么避免不了用实验室动物做子宫内膜炎模型，根据国内外文献报道，对比了几种实验性造模方法，以供大家参考。

6.1产后大鼠子宫内膜炎模型[8，9]

6.1.1试验动物：分娩第1天SD大鼠，体重200～250g。

6.1.2试验细菌：109CUF/mL大肠埃希菌ATCC25922。

6.1.3试验主要步骤：（1）腹部切口，手术；（2）0.3％冰乙酸，0.1mL注射到左侧子宫；（3）0.1mL生理盐水注射到右侧子宫；（4）4天之后注射0.1mL菌液到双侧子宫角；（5）7日早上处死大鼠。

6.1.4试验效果：左侧子宫有红肿且宫腔内积聚灰白色脓液，不但子宫壁比右侧厚，而且内膜有出血现象；右侧子宫均无变化。

6.2大鼠子宫炎模型[10，11]

6.2.1试验动物：SD大鼠，体重200～250g。

6.2.2试验细菌：109CUF/mL大肠埃希菌ATCC25922。

6.2.2试验主要步骤：（1）全身麻醉常规消毒；（2）用事先做好的阴道灌注针直接菌液阴道灌注。

6.2.3试验效果：镜检下可以看到子宫内膜上皮有脱落，炎性细胞特别是中性粒细胞增多，炎性分泌物的腺体周围，间质严重出血，表浅微血管、静脉窦，螺旋动脉扩张较明显，内皮和平滑肌细胞变性严重、结构模糊、界限不清，且平滑肌细胞排列紊乱。

6.3小鼠子宫内膜炎模型[12]

6.3.1试验动物：昆明系雌性小鼠，体重30～35g。

6.3.2试验试剂：LPS（Sigma；Escherichia coli O127∶B8）；MPO测定试剂盒；NO检测试剂盒等。

6.3.3试验主要步骤：（1）用PBS来溶解LPS，调其浓度为5mg/mL的LPS溶液。（2）全身麻醉，倒提保定。（3）5mg/mL的LPS灌注液20 μL经自制小鼠子宫灌注器注入子宫。（4）24h检测子宫。

6.3.4试验效果：（1）24 h后，PMN浸润且腔内有大量PMN碎片。（2）48 h，灌注5 mg/m L的LPS小鼠子宫MPO含量显著升高。

以上三种方法是目前做子宫内膜炎最常用的，到底选择哪种需根据实际实验室条件去衡量，效果对比见表1。

表1 三种子宫内膜炎模型方法效果对比

7体会

引发子宫内膜炎的原因各种各样，感染途径也十分广阔。妊娠前和妊娠中的每一步都可能使其患病，所以要求饲养员有高度责任心和认真负责的态度对待每头母猪，减少其感染机会，减少损失。即使不幸有母猪感染那么也不要过分担心，即使采取以上措施，大部分母猪会痊愈，小部分痊愈不了的可以考虑淘汰。与此同时，由于环境在时刻变化时间在改变，引发该病的病原菌也可能相对有所变异，所以当我们在考虑用药时，需要变通，考虑哪几种药可以联合使用，效果可能会出奇的好。□

[1]刘宝利,王美玲.母猪子宫内膜炎的危害及防控策略[Jl.畜牧与饲料科学,2011,32(11):115-116.

[2]蒋红,黄维英,文鸿,等.猪子宫内膜炎的防治报告[Jl.湖南畜牧兽医,2011,(1):45-48..

[3]李德军.奶牛隐性和临床型子宫内膜炎病理机制的研究[D].华中农业大学,2010.

[4]Uobson H,Kibadu A Y,Noble K M,et al.Ultrasonography and hormone protiles of adrenocorticotrophichormone{ACTH)-induced persistent ovarian follicles(cysts)in cattle[J].J Reprod Fertil,2000, 120:405-410.

[5]李德军,郭定宗,裴小英.NO与子子宫内膜炎奶牛子子宫形态结构变化的关系[J].中国兽医学报，2010,(5):681-684.

[6]杜金梁,徐丽娜,马玉忠,等.家兔子宫内膜细胞炎症模型的建立[J].中国农学通报,2009,(4)：18-20.

[7]和翼,武瑞,李利,等.大鼠子宫内膜炎模型复制及其中西药复方乳剂治疗[Jl.中国实验动物学报,2008,16(3):214-216.

[8]肖艳娟,叶赞,林洁,等.建立实验性产后大鼠子宫内膜炎模型的探索[J].中医临床研究,2012,17:9-11.

[9]李伟诗,付开强,吕晓珮,等.LPS诱导小鼠子宫内膜炎模型的建立[Jl.中国兽医杂志,2015,(9):96-98.

[10]郝艳阳,王春江,赵宝,等.大鼠子宫内膜炎模型的建立及其动态病理学观察[J].西北农林科技大学学报(自科版),2010,(4)：1-6.

[11]赵红琼,简子健,姚刚,等.建立大鼠实验性子宫内膜炎模型的探讨[J].新疆农业大学学报,2008,(3):5-8.

[12]孔祥峰,胡元亮,郭振环,等.家兔子宫内膜炎模型的建立和临床病理学观察[J].中国实验动物学报,2006,(3):213-216.

S858.28

1006-4907（2016）06-0021-03

10.3969/j.issn.1006-4907.2016.06.009

2016-10-08