随机质心映射优化法研究核桃青皮中蒽醌类色素的提取工艺
2015-12-22丁芸刘玉梅新疆大学化学化工学院新疆乌鲁木齐830046
丁芸,刘玉梅(新疆大学化学化工学院,新疆乌鲁木齐830046)
核桃青皮又名青龙衣,为胡桃科植物核桃楸(Jugland mandshurica Maxim)和核桃(Juglans regial)的未成熟果皮,主要分布在东北的南部、华北、西北、华中及华东地区[1]。我国每年核桃采收季节均有大量的核桃青皮产生,除少量药用或作为燃料使用外基本被废弃,若能对其加以利用,不仅可使核桃青皮变废为宝,还能减少环境污染[2]。已有研究表明,核桃青皮中主要有效成分是醌类、多酚类、多糖、二芳基庚烷类[3],此外还含有甾体、萜类、脂肪酸、多种矿物质元素、维生素等成分[4]。蒽醌类化合物广泛存在于多种植物中,自古以来就是一类重要的天然染料,也是核桃青皮中的主要色素成分[5-6]。
随机质心映射优化程序(randomcentroid optimization,RCO)是一种全局性的优化程序,是由加拿大英属哥伦比亚大学食品科学系教授Dr.Nkai于1981年设计的[7]。该方法与常用的正交设计法(orthogonal experimental design,OED)和响应面法(response surface methodology,RSM)相比,能以最少的试验次数,得到良好的试验结果,尤其适用于影响因素较多的情况[8-9]。该程序每次循环包括3个步骤:随机搜索(random search)、质心选择(centroid search),及映射优化(mapping optimization)。笔者采用随机质心映射优化法研究核桃青皮中蒽醌类色素提取工艺,考察了提取温度、提取时间、超声时间、料液比、粉碎粒度和乙醇浓度6个影响因素,旨在为核桃青皮进一步利用提供理论参考。
1 材料与方法
1.1 材料 原料:新疆当地核桃青皮,烘干后备用。主要试剂:1,8-二羟基蒽醌标准品(质量分数96% ~98%),Sigma-Aldrich公司;乙醇、甲醇、醋酸镁,均为分析纯。主要仪器:电子天平,德国赛多利斯,型号:BS210S,精度0.1 mg,称重范围0~210 g;超声波清洗器,型号KQ5200B,昆山市超声仪器有限公司;离心机,型号Anke.TGL-16G,上海安亭科学仪器厂;UV-5300PC型紫外/可见分光光度计,上海元析仪器有限公司。
1.2 方法
1.2.1 标准曲线的绘制。精确称取1,8-二羟基蒽醌标准品10 mg,加入几滴乙醚,振荡使其溶解,用甲醇定容至50 ml,取5 ml稀释至25 ml容量瓶,配成0.04 mg/ml蒽醌标准溶液。分别移取 1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 ml标液置于 10 ml容量瓶中,加0.5%醋酸镁-甲醇溶液至刻度,以0.5%醋酸镁-甲醇溶液为空白对照,在200~800 nm波长范围内进行全波长扫描,确定最大吸收波长。以蒽醌质量浓度c(mg/ml)为横坐标,吸光度值A为纵坐标绘制标准曲线。
1.2.2 待测液的制备。称取适量粉碎后的核桃青皮,选择提取温度、提取时间、超声时间、料液比、粉碎粒度和乙醇浓度6个影响因素,按表1中给出的各因素的上下限范围,输入随机质心映射优化程序进行随机设计,分别在给出的对应参数条件下进行提取。提取完成后,抽滤,将提取液定容至50 ml,测定各自的含量,试验结果以提取液中蒽醌含量来评价。
1.2.3 蒽醌含量的测定。吸取1 ml待测样品液测吸光度,由标准曲线得出待测样品液中的蒽醌浓度,再按以下公式计算出提取液中蒽醌的含量。
X=cVN/m
式中,X为含量(mg/g),c为质量浓度(mg/ml),V为总体积(ml),N为稀释倍数,m为称取核桃青皮的质量。
表1 待优化因子的上下限范围
1.3 数据处理 每组试验的测定次数均为3次,试验数据采用Microsoft Excel来处理,结果以平均值±标准偏差(means±standard deviation)来表示。
2 结果与分析
2.1 最大吸收波长的选择及标准曲线的制备 由图1a可知,标准溶液在波长510 nm处有一特定吸收峰,因此选择510 nm波长作为测定波长。以样品的吸光值为纵坐标、蒽醌浓度为横坐标,制备标准曲线见图1b,标准曲线的回归方程为 A=45.592 9c+0.020 9,R2=0.999 6,表明浓度在 4 ~24 μg/ml范围内,有良好的线性关系。
2.2 随机质心条件的设计 表2为依据RCO程序设计出 的随机试验点,进行第1轮循环的试验条件及测定结果。
表2 第1轮随机试验方案及试验结果
对第1轮的试验结果采用RCO软件进行优化条件映射,图2中箭头所指为每个因素的最佳映射条件值,由图2可以看出,蒽醌类色素第1轮的较好条件为:萃取温度为76℃,萃取时间为87 min,超声时间为15 min,料液比为0.08 g/ml,粉碎粒度为20目,乙醇浓度为53%。
由图2可以看出,箭头所指方向并不是很明确,映射结果较分散,需要进一步验证。因此,又在第1轮试验的基础上,在RCO程序中输入第2轮试验中各个因子的上下限范围,所得第2轮的试验的因子水平及结果见表3和图3。图3显示,蒽醌类色素第2轮的优化条件为:萃取温度50℃,萃取时间103 min,超声时间23 min,料液比 0.09 g/ml,粉碎粒度80目,乙醇浓度为51%。
表3 第2轮随机试验方案及试验结果
表4 第3轮随机试验方案及试验结果
经过上述2轮试验优化后,各试验因素的参数上下线范围已明显减小,且第2轮试验所得提取液的蒽醌含量也已有了明显的提高,但各因素的最佳试验点尚不明确,因此,又通过第3轮进行了进一步的优化。试验结果见表4、图4。表4数据表明,经过此轮优化,影响蒽醌类色素提取率的各因素最优提取工艺条件已基本明确:分别为萃取温度为64℃,萃取时间为114 min,超声时间为24 min,料液比为0.09 g/ml,粉碎粒度为20目,乙醇浓度为60%,此最优组合即为表4中的第30号试验。从图4中也能非常直观地看到优化的试验结果,此时,蒽醌类的提取率可达(4.84 ±0.14)mg/g。
3 结论
研究通过3轮的随机质心映射优化试验对影响核桃青皮中蒽醌类色素提取率的6个主要因素进行了优化,结果表明,最佳提取条件为提取温度64℃,提取时间114 min,超声时间24 min,料液比0.09 g/ml,粉碎粒度20目,乙醇浓度60%,在此工艺条件下,蒽醌的提取率可达(4.84±0.14)mg/g。该方法与响应面法和正交设计相比,在影响因素较多时可以在更少的试验次数内得到最佳的试验方案。
[1]郗荣庭,张毅萍.中国果树志:核桃卷[M].北京:中国林业科学出版社,1996:28-83.
[2]潘富赟,张培正.核桃青皮的综合利用及开发前景[J].中国食物与营养,2010(12):21-24.
[3]李海洋,韩军岐,李志西.核桃青皮有效化学成分提取分离研究综述[J].现代园艺,2012(15):9 -11.
[4]王红萍,尹江艳.核桃青皮的有效成分及综合利用[J].安徽农业科学,2013,41(24):10129 -10131,10133.
[5]单国华.萘醌类天然染料的研究现状与开发设计[D].乌鲁木齐:新疆大学,2007:4-13.
[6]仲军梅,徐健新,刘玉梅.核桃青皮中蒽醌类色素提取及稳定性[J].精细化工,2014,31(4):458-462.
[7]NAKAI S.Comparison of optimization techniques for application to food product and process development[J].Journal of food science,1982,47(1):144 -176.
[8]NAKAI S,DOU J,LO K V,et al.Optimization of site-directed mutagenesis.1.New random-centroid optimization program for Windows useful in research and development[J].Journal of agricultural and food chemistry,1998,46(4):1642 -1654.
[9]蒋莉,祁英,刘玉梅.随机质心映射优化法对新疆雪菊中黄酮和多酚提取工艺的研究[J].食品工业科技,2014,35(17):258 -261.