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贵州美酒河流域白酒糟对黔北麻羊羔羊生长性能、氮代谢及血浆免疫指标的影响

2015-12-21田兴舟朱伦琴杨春红莘海亮赵文金吴文旋

动物营养学报 2015年9期
关键词:酒糟饲粮羔羊

袁 鑫 田兴舟 朱伦琴 杨春红 莘海亮 赵文金 吴文旋,4*

(1.贵州大学动物科学学院,贵阳550025;2.黔东南民族职业技术学院,凯里556000;3.习水富兴牧业有限公司,习水564600;4.贵州大学新农村发展研究院·中国西部发展能力研究中心,贵阳550025)

贵州省美酒河流域盛产利用当地独有的“红樱子”糯高粱经独特加工工艺酿造的酱香型白酒(茅台酒、习酒等),其副产物白酒糟来源稳定量大,营养学特点表现为水分含量高、粗纤维含量大,蛋白质含量高、氨基酸较平衡,是当地动物重要的饲料来源[1-2]。但由于对其加工处理手段不完善,酒糟往往偷运乱倒、露天堆积、随意填埋等现象随处可见,既浪费了资源,又对生态环境造成了污染。另外,据调查,目前牧场大多惯用白酒糟的方式为直接鲜喂,由于其水分较高、不易保存、容易发霉等特点,导致大部分养殖场均存在饲喂不同程度低劣发霉酒糟的情况,不仅没有做到资源的合理利用,还降低了动物生产性能,繁殖率较低,产生腹胀腹泻等疾病,不符合当今可持续发展的要求[3]。因此,合理利用酒糟是动物营养学需要解决的研究课题之一。

Xu等[4]研究表明,酒糟可有效作为荷斯坦犊牛饲粮中粗纤维的来源,不会对动物增重、营养物质表观消化率等产生不利影响。Avila-Stagno等[5]试验发现,在羔羊饲粮中添加10%的酒糟对动物干物质采食量(DMI)、平均日增重(ADG)没有影响,且有降低料重比(F/G)的趋势。Whitney等[6]研究显示,在羔羊饲粮中补饲一定水平的酒糟可显著提高羊只DMI、ADG,降低F/G,从而降低饲养成本,提高经济效益。

据此,本试验以贵州省美酒河流域盛产的白酒糟为试验材料,以适应该区域生境、贵州独有的黔北麻羊羔羊为试验动物,初步探讨白酒糟对其生长性能、氮代谢与血浆免疫指标的影响,确定白酒糟在黔北麻羊羔羊中的适宜水平,为开辟白酒糟作为饲料资源提供基础数据。

1 材料与方法

1.1 试验设计

采用单因子随机区组试验设计,将体况良好的黔北麻羊断奶羔羊32只[平均体重为11.74±1.91)kg]随机分为对照组和Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ组,每组8只。对照组饲喂基础饲粮,Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ组白酒糟添加水平分别为7%、14%、21%。羔羊基础饲粮参照我国肉用山羊饲养标准[7]结合当地饲料资源配制,其组成及营养水平[%,干物质(DM)基础]分别为:精料39、青贮玉米51、大麦秸2、高粱籽壳5、豆渣3;粗蛋白质(CP)13.82、粗脂肪(EE)6.21、中性洗涤纤维(NDF)75.38、酸性洗涤纤维(ADF)32.21、粗灰分7.08。试验持续40d,共分4个阶段,即1~10d(预试期)、11~20d(正试1期)、21~30d(正试2期)、31~40d(正试3期)。试验白酒糟常规营养水平见表1。

表1 试验白酒糟常规营养水平(风干基础)Table 1 Common nutrient levels of distillers’grains(air-dry basis) %

1.2 饲养管理

试验于2014年7—9月在贵州省某规模羊场进行,试验期间羔羊进行统一驱虫、消毒。羔羊分栏全舍饲,饲喂时间分别为每天09:00、18:00,自由采食,全天自由饮水,留有足够的运动空间。

1.3 检测指标

1.3.1 饲粮养分

自预试期开始每天采集饲粮样品,试验结束后混匀制成分析试样,参照《饲料分析及饲料质量检测技术》[8]测定 DM、CP、EE、NDF、ADF、粗灰分含量。

1.3.2 环境参数

将温湿度计悬挂于羊舍中部,至正试期开始每天分别在08:00、14:00、20:00记录温度和相对湿度,温湿指数参照Minka等[9]提出的公式进行。THI=0.8×AT+(RH/100)×(AT-14.4)+46.4。

式中:THI为温湿指数,AT为周围环境温度,RH为相对湿度。

1.3.3 生长性能

准确记录每天饲粮的饲喂量和剩余量,并在每个阶段最后1天称量晨饲前羔羊空腹体重,计算 DMI、平均净增重(ANG)、ADG、F/G。

DMI(g/d)=饲喂量-剩余量;

ANG(g)=末重-始重;

ADG(g/d)=(ANG/试验天数)×1 000;

F/G=DMI/ADG。

1.3.4 氮代谢

在试验的最后7d进行消化代谢试验,全收粪尿法收集粪样及尿样,待试验结束后测定粪氮及尿氮,计算氮代谢状况。

吸收氮(g/d)=食入氮-粪氮;

沉积氮(g/d)=食入氮-(粪氮+尿氮);

氮的消化率(%)=[(食入氮-粪氮)/食入氮]×100;

净蛋白质利用率(NPU)(%)=(沉积氮/食入氮)×100;

氮的生物学价值(NBV)(%)=(沉积氮/吸收氮)×100;

蛋白质效率比(PER)=(体增重/氮的食入量)×100。

1.3.5 血液免疫指标

在每个阶段最后1d晨饲前用一次性肝素钠抗凝管从颈静脉采血10mL,3 000r/min离心15min,分离上层血浆于1.5mL试管中转入-20℃冰箱保存。考马斯亮蓝法测定总蛋白(TP)含量;微量酶标仪法测定白蛋白(ALB)含量;差减法计算球蛋白(GLO)含量,即GLO=TP-ALB。检测试剂盒由南京建成生物工程研究所提供。

1.4 试验数据分析

试验数据利用SAS 9.4统计处理软件进行单因素方差分析,各组测定指标差异性多重比较用Duncan氏法进行,各组间差异性显著水平定为P<0.05。试验数据以平均值±标准差(mean±SD)表示。

2 结 果

2.1 环境参数

由表3可见,整个试验周期内,羊舍温度、相对湿度、温室指数最低值分别为18.77℃、55.00%、65.11,最高值则分别为30.97℃、89.00%、80.49,全期平均值分别为25.34 ℃、70.61%、74.08,说明试羊处在高温高湿的饲养环境中。

2.2 生长性能

由表4可见,4组羔羊的始重差异均不显著(P>0.05)。预试期DMI以Ⅲ组最低,除与Ⅰ组差异较小外(P>0.05),均显著低于对照组与Ⅱ组(P<0.05);当试羊逐渐适应白酒糟的添加水平后,至正试1期DMI以Ⅱ、Ⅲ组较高,与对照组相比差异显著(P<0.05);各组DMI在正试2期内差异较小,均未表现出显著性差异(P>0.05);正试3期,3个试验组间DMI差异不显著(P>0.05),但Ⅱ组高于对照组16.21%,差异显著(P<0.05)。从全期平均值来看,虽然4组间DMI差异均不显著(P>0.05),但3个试验组均高于对照组,以Ⅱ组最高。试验结束后4组间羔羊末重差异不显著(P>0.05);但Ⅱ组表现出了最佳的 ANG、ADG与F/G,其中ANG与ADG显著高于对照组与Ⅲ组(P<0.05),F/G以Ⅱ组最低,显著低于Ⅲ组21.73%(P<0.05),其余各组未表现出显著差异(P>0.05)。

表3 羔羊饲养环境参数Table 3 Feeding environmental parameters for experimental lambs

表4 白酒糟添加水平对羔羊生长性能的影响Table 4 Effects of supplemental level of distillers’grains on growth performance of lambs

2.3 氮代谢

由表5可见,4组羔羊食入氮与粪氮差异均未达显著水平(P>0.05)。尿氮以Ⅱ组最低,显著低于其余3组(P<0.05)。吸收氮以Ⅱ组最高,显著高于其余各组(P<0.05);Ⅰ、Ⅲ组也略高于对照组(P>0.05)。Ⅱ组也有最高的沉积氮,显著高于对照组25.53%、Ⅰ组16.11%、Ⅲ组29.41%(P<0.05)。4组羔羊间氮的消化率、PER均未达到差异显著水平(P>0.05),但均以Ⅱ组数值最优。对NPU,Ⅱ组显著高于其余各组(P<0.05);Ⅰ组处于次高水平,显著高于Ⅲ组(P<0.05)。对NBV,Ⅱ组>Ⅰ组>对照组>Ⅲ组,且差异互为显著(P<0.05)。综合可见,Ⅱ组有改善羔羊氮代谢的作用。

表5 白酒糟添加水平对羔羊氮代谢的影响Table 5 Effects of supplemental level of distillers’grains on nitrogen metabolism of lambs

2.4 血浆免疫指标

由表6可见,Ⅰ组血浆TP含量在10、20d均最优,均显著高于Ⅲ组(P<0.05);相应地,全期平均值也以Ⅰ组最高,且显著高于其他3组(P<0.05)。血浆ALB含量在10d时以Ⅱ组数值最高,显著高于Ⅰ、Ⅲ组(P<0.05);20d时3个试验组间并未表现差异显著(P>0.05),但均显著低于对照组(P<0.05);Ⅱ组全期平均值与Ⅰ、Ⅲ组间差异较小(P>0.05),显著高于对照组(P<0.05)。血浆 GLO含量在10、20d均以Ⅰ组数值最高,且均显著高于对照组;至40d时,对照组与Ⅰ、Ⅲ组间差异不显著(P>0.05),显著高于Ⅱ组(P<0.05);从全期平均值来看,对照组和Ⅱ、Ⅲ组间差异较小(P>0.05),均显著低于Ⅰ组(P<0.05)。白蛋白/球蛋白(A/G)在10、20d时以对照组最高,显著高于其余3组(P<0.05);但30、40d其数值最低,显著低于Ⅱ组(P<0.05);全期平均值以对照组和Ⅱ组较高,显著高于Ⅰ组(P<0.05)。

表6 白酒糟添加水平对羔羊血浆免疫指标的影响Table 6 Effect of supplemental level of distillers’grains on plasma immune indices of lambs

续表6

3 讨 论

3.1 白酒糟对羔羊生长性能的影响

酒糟营养丰富、来源广泛,可替代部分精料[10],是动物的良好饲料来源。但白酒糟粗纤维含量高、易引起中毒,必须控制在一定水平范围内。Castro-Pérez等[11]研究显示,用45%的酒糟及其可溶物替代基础饲粮中的玉米与豆粕,对羔羊DMI、ADG、F/G等有提高的趋势。Felix等[12]试验表明,在羔羊饲粮中补饲一定水平(476与531g/d)的干酒糟及其可溶物可显著提高机体ANG与ADG。Van Emon等[13]在生长公羊饲粮中补饲30%的干酒糟,有提高羊只DMI、ADG,降低F/G的作用。本试验结果表明,补饲14%白酒糟可提高羔羊DMI、ANG、ADG,降低F/G,达到节约饲料成本、提高经济效益的目的;但超过14%添加水平时,羔羊的DMI、增重速度有所下降。其原因可能是:1)白酒糟中尚残留有一定水平的乙醇及其酸败性物质,可降低适口性、影响瘤胃内环境微生物区系,从而降低羔羊的生长速率;2)羔羊瘤胃发育尚不完善,瘤胃微生物还不能充分利用白酒糟中混杂的稻壳等所含的粗纤维,影响营养物质的利用率。

3.2 白酒糟对羔羊氮代谢的影响

氮是构成机体的关键元素,因此动物对氮的利用率,决定了对蛋白质利用率,是动物营养非常重要的研究领域。本试验显示,添加7%、14%白酒糟可显著提高吸收氮、沉积氮、NPU、NBV;同时,随着白酒糟水平的提高,大多数氮代谢指标呈先上升后下降的趋势(与生长性能类似),说明白酒糟对羔羊养分消化率的影响存在着剂量效应,其原因可能为:1)试羊瘤胃中的微生物可利用酒糟中的氮源合成营养价值较高的微生物蛋白,提高了蛋白质的质和量,进而改善氮代谢利用率;2)营养物质水平可影响动物机体对其的消化与代谢,Ⅱ组较高水平的DMI给羔羊对氮的消化吸收提供了保障;3)14%白酒糟组羔羊生长速度的提高也为氮的有效利用提供了基础。这在前人的研究中也得到验证[14]。

3.3 白酒糟对羔羊血浆免疫指标的影响

ALB可作为血液中水溶性较低物质的运输载体,用于修补组织和提供能量;GLO则可为肝病的检测指标,能够反映机体的抵抗力;两者共同构成TP,对动物机体免疫功能起着重要作用,可间接反映动物机体对蛋白质的消化、吸收及代谢的情况[15]。本试验结果发现,4组血浆TP含量表现出显著差异,总体以7%与14%白酒糟组较高;A/G除Ⅰ组外,也都在正常范围(1.5~2.5),说明添加14%以内的白酒糟不仅不会对羔羊血浆免疫指标产生不利的影响,而且还有着一定的改善作用。王丽等[16]研究发现,饲粮白酒糟添加水平对4月龄羔羊血清生化指标的影响发现,各组间TP含量差异均不显著,但以10%添加水平组较优。

需要说明的是,贵州美酒河流域源产的白酒糟是黔北麻羊重要的传统饲料原料,不难推测二者存在长期的生物学适应性,因此深入探讨白酒糟对瘤胃发育、瘤胃微生物区系、肉质形状、繁殖性能等的效应也是今后研究的重点,可为科学合理开发利用白酒糟作为黔北麻羊非常规饲料提供技术积累。这些工作,有待于课题组下一步完成。

4 结 论

以贵州美酒河流域源产白酒糟为试验材料和黔北麻羊断奶羔羊为试验动物,白酒糟添加水平在21%范围内,结论如下:

①添加14%以内白酒糟可提高羔羊机体生长性能和氮的利用率。

②白酒糟不会对羔羊血浆免疫指标产生不利影响。

③ 综合来看,以14%添加水平效果最佳。

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