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采油污水对斑马鱼POD酶的影响

2015-11-24徐长君刘超群

浙江农业科学 2015年2期
关键词:过氧化物斑马鱼大庆

张 薇,徐长君,吴 杨,刘超群

(大庆师范学院黑龙江大庆 163712)

采油污水对斑马鱼POD酶的影响

张 薇,徐长君*,吴 杨,刘超群

(大庆师范学院黑龙江大庆 163712)

为了研究采油污水对水生动物的毒性效应,以斑马鱼为实验材料,将采油污水分别稀释为1.5%,1.9%,3.0%的浓度梯度,利用提取酶液技术和比色法,检测经采油污水处理的斑马鱼头部、肌肉、内脏的过氧化物酶(POD)酶活性,进而确定不同浓度的采油污水对斑马鱼POD酶活性的影响。结果显示,头部对照组POD酶活性为0.64 U·mg_1,1/4致死浓度组POD酶活性为0.8 U·mg_1,半致死浓度组POD酶活性为1.76 U· mg_1,全致死浓度组POD酶活性为2.4 U·mg_1;肌肉对照组和内脏对照组情形与此相似。结论是随着采油污水浓度的增加,细胞内的过氧化物酶增多,斑马鱼体内POD酶活性变大说明采油污水已对斑马鱼产生了毒性影响。为此必须严密关注采油污水的处理工作,以防造成环境污染。

采油污水;斑马鱼;POD酶;急性毒性;吸光值

过氧化物酶体含有丰富的酶类,主要是过氧化物酶,过氧化氢酶和氧化酶。过氧化物酶体普遍存在于真核生物的各类细胞中,在肝细胞和肾细胞中数量尤其多。过氧化物酶是以过氧化氢为电子受体催化底物氧化的酶[1],主要存在于细胞的过氧化物酶体中,以铁卟啉为辅基,可催化过氧化氢、氧化酚类和胺类化合物,具有消除过氧化氢和酚类、胺类毒性的双重作用。过氧化物酶体的标志酶是过氧化氢酶,它的作用主要是将过氧化氢(H2O2)水解。对细胞起保护作用。

采油污水是伴随石油开采过程中产生的废水。其水质具有以下几方面特点:含油量远高于各种回用所要求的水质标准;富含有机物;含有大量离子,其中既有成垢离子,又有腐蚀性的离子。采油污水外排时进入水体后的危害是多方面的:如在水上形成油膜,能阻碍水体复氧作用,油类粘附在鱼鳃上,可使鱼窒息;粘附在藻类、浮游生物上,可使它们死亡;抑制水鸟产卵和孵化,严重时使鸟类大量死亡;还能使水产品质量降低。

水环境是大部分污染物的最终汇集场所,也是水生动物赖以生存的环境,研究典型环境污染物对鱼类的毒性效应[2_4]不仅可以较早发现污染物的危害并评价环境的质量,而且可以预测其对陆生动物甚至人类可能产生的后果,这对于保护水环境和水生资源、保障人类健康、建设和谐矿区均具有重要的现实意义[5]。

1 材料与方法

1.1 实验用鱼的选取

实验用鱼为斑马鱼,购于大庆让胡路区博奥国际花鸟鱼市场。在同一实验中要求试验鱼,必须同属、同种、同龄、尽量相同大小。鱼的平均体长2 cm为合适。同组鱼中最大体长不超过最小体长的1.5倍。选择体色光泽、鱼鳍完整舒展、行动活泼、逆水性强、大小无太大悬殊、无任何疾病的鱼作为试验鱼。任何畸形鱼、外观上反常态的鱼都不得用作试验鱼。鱼类行为是鱼类对外界环境和体内环境变化的外在反应,包括游泳、摄食、生殖、呼吸以及避敌、攻击、求偶时改变体色等[6]。

1.2 实验用采油污水的配制

采油污水来自于大庆师范学院微生物驱油研究室所赠送。取适量采油污水,将其用8层纱布进行过滤,滤掉杂质及异物,并假设经过滤后的污水浓度为单位1,向其中加去离子水稀释,得到浓度分别为0.1,0.4,0.7,1.0,1.3,1.6等6个浓度梯度[7_8](每个浓度设置1个平行组)。

1.2.1 试剂

0.05 mol·L_1pH值7.8磷酸缓冲液。取0.1 mol·L_1pH值7.8的磷酸钠缓冲液50 mL,移入100 m L容量瓶中用蒸馏水定容至刻度,充分混匀。4℃冰箱中保存备用。石英砂。0.05 mol·L_1愈创木酚(C7H8O2别名2-甲氧基酚,邻甲氧基酚,甲基儿茶酚)溶液。2%双氧水溶液。蒸馏水。

1.2.2 采油污水对斑马鱼的致死和半致死浓度

用1 000 mL烧杯分别盛装上述浓度的采油污水。另取2个1 000 m L烧杯,盛装静置1周的自来水作为对照组。试验溶液调节至相应温度后,从驯养鱼群中随机取斑马鱼并迅速放入各试验容器中,每个容器放入8条。以96 h为一个试验周期,在24,48,72和96 h时记录实验鱼的死亡数,确定斑马鱼的致死浓度和半致死浓度范围[9],如果没有任何肉眼可见的运动,如鳃的扇动、碰触尾柄、鱼鳍后无反应等,即可判断该鱼已死亡。

根据致死浓度和半致死浓度范围,再将此浓度分成6个浓度梯度,进一步缩小浓度范围,最终确定斑马鱼的1/4致死浓度、半致死浓度和致死浓度。

1.2.3 酶液提取

分别取0.4 g材料(头部、肌肉、尾部)于预冷的研钵中,加入8 m L预冷的0.05 mol·L_1磷酸缓冲液(pH值7.8)(先加2 m L,在冰浴下研磨成匀浆后,将匀浆转入10 m L离心管,再用6 m L冲洗),10 000 r·m in_1离心15 min,取上清液[10]定容至10 m L后于4℃保存。上清液用于过氧化物酶(POD)活性的测定。

1.2.4 愈创木酚法测定POD活性

设置3组待测浓度分别为致死浓度、半致死浓度和1/4致死浓度,再设置一个对照组,按表1加入各溶液。将上述各试管立即放入预先调好37℃的水浴锅中保温5 min以上(酶促反应),向对照管中加入0.1 m L酶液,混匀,在λ470 nm处调零,再向测定管中加入0.1 m L酶液,并且立即计时,混匀后进行比色测定,3 min时立即读取吸光度[11]。

各反应体系中试剂用量:对照组0.05 mol· L_1pH值5.5(7.8)磷酸缓冲液2.9 m L,2%双氧水溶液0 m L,0.05 mol·L_1愈创木酚溶液1.0 m L,蒸馏水3.0 m L;1/4致死组0.05 mol·L_1pH值5.5(7.8)磷酸缓冲液2.9 m L,2%双氧水溶液1.0 m L,0.05 mol·L_1愈创木酚溶液1.0 m L,蒸馏水2.0 m L;1/2致死组0.05 mol·L_1pH值5.5(7.8)磷酸缓冲液2.9 m L,2%双氧水溶液1.0 mL,0.05 mol·L_1愈创木酚溶液1.0 m L,蒸馏水2.0 mL;全致死组0.05 mol·L_1pH值5.5(7.8)磷酸缓冲液2.9 m L,2%双氧水溶液1.0 m L,0.05 mol·L_1愈创木酚溶液1.0 m L,蒸馏水2.0 m L。

1.3 统计分析

以每分钟吸光度变化值表示酶活性大小,即以ΔD470·g_1(鲜重)·min_1表示。也可以用每分钟内D470变化0.01为1个过氧化物酶活性单位(U)表示。酶活性/(U·mg_1)=ΔD470×酶提取液总量/(样品鲜重×测定时酶液用量)。

2 结果与讨论

2.1 吸光度和POD酶活力

不同浓度采油污水处理后斑马鱼组织提取液的吸光度值见表1。

通过表1可见,采油污水在同一浓度下,随着处理时间由1 m in到2 min再到3 min,无论是头部、肌肉、还是内脏的吸光值都在增加。

表1 处理后斑马鱼体内的吸光值

2.2 POD酶活力

POD酶活力检测值见表2。

表2 处理后斑马鱼体内POD酶活力

通过表2可见,随着采油污水浓度的增大,头部、肌肉、内脏的吸光值也在增加。随着采油污水浓度的升高,POD酶活性明显增强。

上述实验结果显示,在相同的处理时间和环境条件下,随着实验组设置的采油污水浓度的逐步增加,存在于细胞的过氧化物酶体中的过氧化物酶就增多,斑马鱼体内(头部、肌肉、内脏)POD酶活性就会随之变大。这说明采油污水的毒性已对斑马鱼的生理产生影响。而且采油污水浓度的增大对斑马鱼的影响也随之增大,最终使斑马鱼死亡。

3 小结

随着采油污水浓度的升高,斑马鱼的POD酶活性也随之增强,说明采油污水对斑马鱼的危害情况随其浓度的增加而逐渐增大。可根据实验结果初步判断采油污水的毒性大小。过氧化物酶体普遍存在于真核生物的各类细胞中,但在肝细胞和肾细胞中数量特别多,所以,相对于头部和肌肉,内脏的POD酶的活性更大。

水是人类赖以生存的宝贵资源。大庆油田是我国目前最大的油田,也是世界上为数不多的特大型砂岩油田之一。在采油的过程中会产生大量的采油污水,油田采油污水成分较复杂,含有的苯和萘等有毒物质[12],严重影响水生生物及植被,这将直接威胁到人类的身体健康。

生物监测[13]是利用生物组分、个体、群体或群落对环境污染或变化所产生的反应来阐明污染状况,从生物学角度为环境质量的监测和评价提供依据[14]。

大庆是绿色油化之都,天然百湖之城。伴随着原油储量的日渐减少,大庆肩负着由石油城向经济城、环保城以及向国际化大都市转变的重任。良好的环境是大庆实现产业转型的基础。利用先进的采油技术,提高石油采收率的同时,改善采油污水的处理方法,开发生物处理技术,减少有害污水的排放,妥善处理好采油污水,避免采油污水等对环境造成破坏,保持优良的环境,实现可持续发展的伟大战略构想,为大庆建设百年油田贡献力量。

[1] 宋志慧,王庆伟,杨鲁娜,等.三苯基锡和五氯酚对斑马鱼急性毒性作用和过氧化物酶活性的影响[J].安徽农业科学,2011,39(20):12201_12204.

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(责任编辑:卢福庄)

X 835

A

0528-9017(2015)02-0285-03

10.16178/j.issn.0528-9017.20150244

2014-09-24

黑龙江省大学生创新创业项目(201310235021)

张 薇(1992_),女,黑龙江双鸭山人,大庆师范学院生物科学系2011级学生。

徐长君。E-mail:1253122075@qq.com。

文献著录格式:张薇,徐长君,吴杨,等.采油污水对斑马鱼POD酶的影响[J].浙江农业科学,2015,56(2):285_287.

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