血凝抑制实验中常出现的误差及解决办法
2015-08-15李旭蓉
李旭蓉,李 珊
(张掖市动物疫病预防控制中心,甘肃 张掖734000)
近年来,为了加强动物疫情监测工作,及时掌握疫情动态和免疫效果,有效地防止疫情发生和传播。张掖市禽流感春秋两季和日常监测免疫抗体工作量也逐年增加,血凝和血凝抑制试验是目前实验室检测禽流感中最常用的方法,此方法在实验中虽然操作简单,判定结果方便,却很容易因为操用不规范,技术不正确而影响试验结果的准确性。笔者对影响试验结果准确性的因素进行了简单分析讨论,以供同行参考。
1 抗原的标定
禽流感血凝抑制试验中必须对抗原进行标定,这是非常重要的环节。通常所用的抗原为H5亚型(Re-4或Re-6株)抗原,同一批号的抗原同时标定两瓶以上,最好用110°V 型板进行标定,重复做几板,以防每板4排结果的准确性和一致性,以减少误差。HA 标定滴度过高或过低都会HI结果。过高,HI滴度偏低;过低,HI滴度偏高,甚至很高。配成4HAU 抗原后,为防止抗原配制不准确,可作抗原回归试验,若有2孔凝集,则视为抗原配制准确,如果抗原回归试验不成立,则需要调整4HAU 抗原的浓度,至抗原回归试验成立为止。
2 红细胞的配制
由于鸡的个体差异,红细胞对病毒的敏感性也不同从而影响HI效价,一般需要3 只以上非免疫公鸡提供的红细胞混合在一起,可以减少自凝现象的干扰。有抗体鸡提供的红细胞需要多洗涤几次,以减少血液中抗体对试验结果的影响。洗涤时要去除表面的白细胞膜,洗好的红细胞浓度应在0.5%~1%间最为合适,经过多次实践0.75%比较合适,浓度为1%时沉降的血点过大,浓度为0.5%时,沉降的血点太小,不易判断,而且沉降速度慢。过高或过低都会影响HI滴度的准确测定。有的鸡红血球沉降慢,静置30 min 仍不能沉降下来。因此,配制好的红细胞,一定要先观察血沉质量,不合格的不能使用。
3 稀释液(PBS)的配制
稀释液的pH 为7.0~7.2时红细胞沉淀最充分,图形也最清晰。稀释液的pH 在5.8以下,红细胞易自凝;pH 为7.8 以上凝集的红细胞易洗脱加快。pH7.2的稀释液要121 ℃灭菌15min后4 ℃保存备用,配制好稀释液时间不易过长,否则,会污染,出现试验不成立或跳孔等现象。如果用生理盐水代替PBS液,最好使用新开瓶的灭菌生理盐水,配制稀释液时要注意结晶水的问题。
4 时间和温度
时间温度对实验结果也有影响,要求室内温度在20~25℃进行实验,室内温度不适宜的应置于恒温箱内。因为温度低于4℃时红细胞有时会发生自凝现象,且反应速度慢,高于37℃时,凝集的红细胞易洗脱,红细胞沉降很快,导致试验不成立,抗原与抗体作用时间应在规定的时间及时观察,过短出现凝集不完全。过长出现洗脱现象,超过10 min,红细胞发生裂解,结果不再有意义。
5 血清稀释的混合程度
稀释血清时,如果混合不均匀,结果会出现差异,因此稀释时要来回吹打10次以上。在稀释前先要按下移液器再插入反应板的每一孔孔底,来回吹打时手不要完全按下放开,在一个小的范围内吹打,最后慢慢放开手吸取后插入第二孔液面以下,这样孔内和吸头内不易产生气泡,且稀释充分。在反复抽取过程中,移液器吸头不要离开液面,防止产生气泡和液体溅出孔面,造成移液体积不准确。影响检测结果的准确性。另外,连续加样时要用倒吸法。
6 V 型微量反应板
反应板的质量和清洁度对凝集反应有着不可忽视的影响,必须使用反应板透明度好及凹孔干净,孔内壁光滑透明,板面水平,不能弯曲、倾斜。试验中应采用90°V 型或者110°V 型微量反应板,如用不同角度V 型微量反应板混用和陈旧反应板,对实验结果的准确性也产生一定的影响。
7 HI的判定方法
试验时要做红细胞对照、阳性血清对照和阴性血清对照。一般来说,阳性血清对照的时间相对长些,在红血球完全沉降的前后5min内判定试验结果较好,判断结果时,将微量反应板倾斜45度,孔底沉定的红细胞流动性好,呈泪珠样流淌,边缘无凝集颗粒的为凝集抑制。
总之在进行禽流感血凝抑制试验时应综合考虑各方面因素,制定一个标准化操作方法以免对结果判断产生误差,只有把试验标准化才能正确评价疫苗免疫存在的意义。也只有在标准化评判过程中才能做出正确的结论。