APP下载

脑缺血再灌注中一氧化氮对神经元凋亡的影响

2015-04-15边经纬李俊发罗艳琳

基础医学与临床 2015年3期
关键词:亚硝基脑缺血线粒体

边经纬,李俊发,罗艳琳*

(首都医科大学1.2011级基础医学专业;2.神经生物学系,北京100069)

对心[1]、肺[2]、肝[3]等器官缺血再灌注相关的研究显示,不同含量的一氧化氮(nitric oxide,NO)在细胞凋亡中作用不同。脑缺血再灌注中NO 作用也随含量变化表现出不同[4]。本文对近几年相关文献进行综述,以进一步明确NO 在脑缺血再灌注损伤中的作用。

1 概述

脑缺血再灌注损伤的机制较为复杂,参与因素众多,包括氧化应激[5]、钙超载[6]和炎性反应[7]等。及时恢复缺血部位血流,有可能挽救脑细胞,有助于脑功能恢复,但也可能引起严重的再灌注损伤[8]。

脑缺血再灌注过程中,损伤核心区以细胞坏死为主;周围区有多种细胞损伤形式,包括凋亡、自噬和程序性坏死。其中细胞凋亡现象较为明显[9]。细胞凋亡具有主动性与可逆性,这是减轻脑缺血再灌注后神经元损伤的关键。

2 NO对细胞凋亡的作用

诸多因素影响脑缺血再灌注引起的神经元凋亡,其中NO 既可作为内源性物质由机体本身生成,又可作为外源性物质由其供体向机体提供,故备受关注。

2.1 脑缺血再灌注过程中NO含量的变化

脑缺血再灌注过程中,NO含量随着缺血时间及再灌注时间的变化而变化。

脑缺血期间,随着缺血开始,海马内NO含量迅速下降,并在10 min 左右达到最低值[10]。缺血15 min NO含量逐步升高,缺血30 min时达到峰值,缺血90~120 min时NO含量明显下降[11]。

用脑缺血30 min的模型来研究再灌注发现,脑组织在再灌注30 min后NO含量再次升高,随后NO含量逐步上升,达到峰值后含量下降[12-13]。对于再灌注期间NO含量达到峰值的时间点,不同研究结果存在部分差异,有研究发现再灌注6 h时NO含量达到峰值[13];也有报道再灌注72 h时才达到峰值[12]。

综上所述,脑缺血过程中脑组织NO含量逐渐升高达到一定峰值后逐渐下降;再灌注后,NO含量再次升高达到峰值后含量下降,呈“双峰样”变化。

2.2 NO对细胞凋亡的双重作用

与单纯缺血90 min 再灌注24 h 大鼠相比,缺血再灌注后腹腔注射7,8-二羟黄酮(7,8-dihydroxyflavone,7,8-DHF)大鼠缺血组织中诱导型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)活性受到抑制,NO含量和神经元凋亡数目明显减少,推测NO含量减少在脑缺血再灌注过程中起保护作用[14]。同时,有报道认为NO含量增多是诱导神经元凋亡,加重脑损伤的机制之一[15]。可见,脑缺血再灌注过程中,NO含量增加,加重神经元损伤产生神经毒性,促进细胞凋亡,甚至导致神经元坏死;适当降低NO含量可以有效抑制细胞凋亡,对损伤脑组织起保护作用。

3 NO 影响细胞凋亡的相关信号通路

NO对细胞凋亡的影响与一些信号传导通路相关,可通过调控这些信号通路来影响细胞凋亡。

3.1 死亡受体介导的细胞凋亡信号通路

死亡受体通路是一种外源性途径,细胞内Fas信号调节被人们高度重视。其中,Fas的膜表达、聚集和内化是死亡诱导信号传导复合体(death-inducing signaling complex,DISC)和hiDISC(含高分子聚合体CD95hi)形成的关键,也是Fas 信号通路的核心。

研究发现,大鼠全脑缺血再灌注6 h时,NO含量达到峰值,胞质中Fas 减少达到最低水平,细胞膜上Fas表达增加达到峰值,表明Fas 从胞质移位到细胞膜;同时胞质中代表Fas 聚集的CD95hi明显增加且达到峰值,表明缺血再灌注过程诱导Fas 膜表达和聚集;进一步发现缺血再灌注6 h时海马CA1区hiDISC 和DISC的形成显著增加[16]。由此推测NO 可以通过死亡受体介导信号通路影响细胞凋亡。

3.2 线粒体介导的细胞凋亡信号通路

脑缺血再灌注损伤诱导的细胞凋亡过程中,线粒体的作用尤为重要[17]。

氧糖剥夺及复氧(oxygen-glucose deprivation followed by recovery,OGD/R)后原代神经元的线粒体膜电位和ATP 水平下降,线粒体复合物活性降低,说明OGD/R 可以使线粒体完整性受到破坏,功能受到抑制;进而发现,OGD/R 降低了线粒体内的凋亡诱导因子(apoptosis-inducing factor,AIF)和细胞色素C(cytochrome C,Cyt-C)含量,增加了细胞系内AIF 和胞质Cyt-C水平,说明AIF 发生核移位,Cyt-C从线粒体内释放;同时,核浓缩和核碎片现象明显;提示OGD/R 可以激活线粒体介导的信号通路,促进细胞凋亡。作者使用一种NO 供体预处理后发现,OGD/R 诱导线粒体介导的神经元凋亡受到明显抑制,推测该供体对缺血性神经元损伤的神经保护作用与NO 有关[18]。

可见,NO 可以影响线粒体功能和其膜的通透性,激活线粒体介导的信号通路,促进细胞凋亡。

3.3 内质网介导的信号通路

除上述研究外,在短暂性脑缺血过程中,脑组织内的NO 可以诱导内质网(endoplasmic reticulum,ER)钙泵失活,导致ER 腔内Ca2+浓度失衡,引起ER 功能障碍,从而触发内质网应激反应(endoplasmic reticulum stress,ERS)。一定程度的ERS 可增强ER 应激能力,促进ER 功能恢复;而ERS 持续存在或过强时将诱导ERS 相关性细胞凋亡,造成组织损伤[9]。

3.4 JNK信号通路

JNK信号通路是以c-Jun 氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)家族为中心的细胞信号传导通路,可被细胞因子、生长因子及缺血再灌注等多种因素激活[19]。

对大鼠全脑缺血15 min 再灌注3 d的模型研究时发现,海马CA1 组织内S-亚硝基化的JNK3 与磷酸化的JNK3 有明显升高,并伴有凋亡现象的增加;使用NOS 抑制剂可以降低JNK3 S-亚硝基化和磷酸化水平,推测缺血再灌注产生的内源性NO 可以使JNK3 发生S-亚硝基化和磷酸化,促进神经元凋亡。进一步研究发现NO 供体硝普钠可以抑制JNK3 发生S-亚硝基化和磷酸化,抑制细胞凋亡与坏死[20]。因此,外源性NO 可以抑制内源性NO 诱导JNK3 发生的S-亚硝基化来降低JNK3 活性,从而影响JNK信号通路起到保护作用。

4 NO的分子修饰

最新研究发现,NO 可以使相关蛋白发生S-亚硝基化,改变蛋白活性来调控上述信号通路,影响细胞凋亡。

大鼠全脑缺血后再灌注6 h时,NO含量达到峰值,Fas的S-亚硝基化量与其相一致;如果在缺血前使用神经型NOS 抑制剂,Fas的S-亚硝基化即受到明显抑制,推测nNOS 活化产生的NO 诱导了Fas的S-亚硝基化。由于Fas的膜表达,聚集和内化是DISC 和hiDISC 形成和凋亡诱导蛋白激活的关键,故推测Fas的S-亚硝基化影响了死亡受体介导的信号通路,从而影响细胞凋亡[16]。

对缺氧缺血的鼠脑海马区中S-亚硝基化的细胞凋亡信号调节激酶1(apoptosis signal-regulating kinase 1,ASK1)含量分析发现,缺血再灌注后ASK1的S-硝基化水平升高,若缺血前使用NOS 抑制剂可明显抑制再灌注后ASK1的S-亚硝基化,推测NO 诱导ASK1 发生S-亚硝基化,影响JNK信号通路[21]。

缺血再灌注还可以激活谷氨酸受体6(glutamate receptor 6,GluR6)介导的JNK信号通路,通过对比缺血再灌注鼠脑和使用NOS 抑制剂处理的鼠脑组织中GluR6 S-亚硝基化水平证明NO 可使GluR6 S-亚硝基化,推测GluR6 被NO 亚硝基化后活性发生改变,从而调节了JNK 通路,影响神经元的细胞凋亡[22];总之,NO 可以通过S-亚硝基化的分子修饰影响JNK信号通路。

5 展望

目前已经发现脑缺血再灌注中NOS 影响细胞凋亡过程。其中大量研究发现活化nNOS 产生的NO 可影响细胞凋亡;还发现iNOS 和eNOS 在细胞凋亡过程中的作用也至关重要,因此,3种NOS 对细胞凋亡影响的不同机制及关键信号靶点值得深入研究。

[1]Li H,Liu Z,Wang J,et al.Susceptibility to myocardial ischemia reperfusion injury at early stage of type 1 diabetes in rats[J].Cardiovasc Diabetol,2013,12:133-143.

[2]Sugimoto R,Okamoto T,Nakao A,et al.Nitrite reduces acute lung injury and improves survival in a rat lung transplantation model[J].Am J Transplant,2012,12:2938-2948.

[3]Palanisamy AP,Cheng G,Sutter AG,et al.Adenovirusmediated eNOS expression augments liver injury after ischemia/reperfusion in mice [J].PLoS One,2014,9:93304-93312.

[4]Awooda HA,Lutfi MF,Sharara GM,et al.Role of N-Nitro-L-Arginine-Methylester as anti-oxidant in transient cerebral ischemia and reperfusion in rats[J].Exp Transl Stroke Med,2013,5:1-6.

[5]Pei H,Cao D,Guo Z,et al.Bone morphogenetic protein-7 ameliorates cerebral ischemia and reperfusion injury via inhibiting oxidative stress and neuronal apoptosis[J].Int J Mol Sci,2013,14:23441-23453.

[6]He Q,Sun J,Wang Q,et al.Neuroprotective effects of ginsenoside Rg1 against oxygen-glucose deprivation in cultured hippocampal neurons[J].J Chin Med Assoc,2014,77:142-149

[7]王耀辉,李国辉,袁微.P38 抑制剂SB203580 对大鼠脑缺血再灌注后AQP4表达及脑水肿的影响[J].基础医学与临床,2014,34:381-385.

[8]Christoforidis GA,Slivka A,Mohammad Y,et al.Reperfusion rates following intra-arterial thrombolysis for acute ischemic stroke:the influence of the method for alteplase delivery[J].AJNR Am J Neuroradiol,2012,33:1292-1298

[9]Caldeira MV,Salazar IL,Curcio M,et al.Role of the ubiquitin-proteasome system in brain ischemia:friend or foe[J]?Prog Neurobiol,2014,112:50-69.

[10]Liu K,Li Q,Zhang L,et al.The dynamic detection of NO during stroke and reperfusion in vivo[J].Brain Inj,2009,23:450-458.

[11]韩群颖,顾振,王鹤鸣,等.大鼠局灶性脑缺血后一氧化氮合酶活性与细胞凋亡关系[J].南京医科大学学报,2002,22:135-137.

[12]杨彦林.大鼠脑缺血/再灌注损伤中一氧化氮和一氧化氮合酶的变化[J].中国应用生理学杂志,2008,24:337-338.

[13]王飞,冯慎远,王运良.脑缺血再灌流大鼠海马中一氧化氮与自由基的含量变化[J].河南实用神经疾病杂志,2004,7:1-2.

[14]Wang B,Wu N,Liang F,et al.7,8-dihydroxyflavone,a small-molecule tropomyosin-related kinase B (TrkB)agonist,attenuates cerebral ischemia and reperfusion injury in rats[J].J Mol Histol,2014,45:129-140.

[15]Yu K,Wu Y,Hu Y,et al.Prior exposure to enriched environment reduces nitric oxide synthase after transient MCAO in rats[J].Neurotoxicology,2013,39:146-152.

[16]Yin XH,Yan JZ,Hou XY,et al.Neuroprotection of Snitrosoglutathione against ischemic injury by down-regulating Fas S-nitrosylation and downstream signaling[J].Neurosci,2013,248:290-298.

[17]Siddiqui MA,Kumar V,Kashyap MP,et al.Short-term exposure of 4-hydroxynonenal induces mitochondria-mediated apoptosis in PC12 cells[J].Hum Exp Toxicol,2012,31:336-345.

[18]Zhao Q,Zhang C,Wang X,et al.(S)-ZJM-289,a nitric oxide-releasing derivative of 3-n-butylphthalide,protects against ischemic neuronal injury by attenuating mitochondrial dysfunction and associated cell death[J].Neurochem Int,2012,60:134-144.

[19]Sui X,Kong N,Ye L,et al.p38 and JNK MAPK pathways control the balance of apoptosis and autophagy in response to chemotherapeutic agents[J].Cancer Lett,2014,344:174-179.

[20]Pei DS,Song YJ,Yu HM,et al.Exogenous nitric oxide negatively regulates c-Jun N-terminal kinase activation via inhibiting endogenous NO-induced S-nitrosylation during cerebral ischemia and reperfusion in rat hippocampus[J].J Neurochem,2008,106:1952-1963.

[21]Liu DH,Yuan FG,Hu SQ,et al.Endogenous nitric oxide induces activation of apoptosis signal-regulating kinase 1 via S-nitrosylation in rat hippocampus during cerebral ischemia-reperfusion[J].Neurosci,2013,229:36-48.

[22]Yu HM,Xu J,Li C,et al.Coupling between neuronal nitric oxide synthase and glutamate receptor 6-mediated c-Jun N-terminal kinase signaling pathway via S-nitrosylation contributes to ischemia neuronal death[J].Neurosci,2008,155:1120-1132.

猜你喜欢

亚硝基脑缺血线粒体
内源性NO介导的Stargazin亚硝基化修饰在脑缺血再灌注后突触可塑性中的作用及机制
棘皮动物线粒体基因组研究进展
线粒体自噬与帕金森病的研究进展
胆绿素改善大鼠脑缺血再灌注损伤的作用机制
原花青素对脑缺血再灌注损伤后肠道功能的保护作用
细胞外组蛋白与脑缺血再灌注损伤关系的初探
L-精氨酸高产菌株的亚硝基胍诱变选育和种子培养基的优化研究
NF-κB介导线粒体依赖的神经细胞凋亡途径
乙烷基亚硝基脲诱变获得一例小眼畸形小鼠及其遗传实验
黄芪抗脑缺血再灌注损伤的作用机制