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絮凝、吸附和超滤预处理谷氨酰胺发酵液研究

2015-04-13张伟钟丽梅刘峰

安徽农学通报 2015年6期
关键词:超滤吸附谷氨酰胺

张伟 钟丽梅 刘峰

摘 要:为进一步纯化和精制谷氨酰胺,采用絮凝、离心、活性炭吸附和超滤等方法对发酵液进行了预处理。实验优化了絮凝的最佳条件,研究了活性炭对色素的吸附能力,尝试了3种超滤膜的去蛋白和脱色效果。结果表明,壳聚糖浓度为250mg/L,壳聚糖和海藻酸钠浓度比为1∶3,pH控制在5左右,温度在25℃左右,搅拌强度为80r/min,絮凝时间为15min,絮凝效果最好,菌体去除率超过97%。用GH-15活性炭对絮凝后的发酵液脱色,脱色率达75%。使用截留分子量为6 000的超滤膜,脱色率进一步提高了43.82%,蛋白去除率为75.33%。

关键词:谷氨酰胺;壳聚糖;絮凝;吸附;超滤

中图分类号 TS20 文献标识码 A 文章编号 1007-7731(2015)06-19-04

Pretreatment on Glutamine Fermentation Broth by Flocculation,Adsorption and Ultrafiltration

Zhang Wei et al.

(College of Life Science,Fujian Normal University,Fuzhou 350108, China)

Abstract:In order to purify L-glutamine further,flocculation,centrifugalization,adsorption and ultrafiltration were used to pretreat fermentation broth.In this study,the flocculation condition has been optimized,the adsorption capacity of activated carbon (GH-15) for pigments was researched and the effect on removing proteins and decolourization of ultrafiltration was studied.This study showed the optimal condition of flocculation was as follows: chitosan 250mg/L,sodium alginate 750mg/L,pH 5,temperature 25℃,stirring intensity 80r/min,response time 15min,the removal rate of bacterial body exceeded 97%.The decolourization ratio was up to 75% with GH-15.The decolourization ratio incresed by 43.82% and the removal rate of proteins was 75.33% using the UF membrane with molecular weight cut off 6000.

Key words:L-glutamine;Chitosan;Flocculation;Adsorption;Ultrafiltration

L-谷氨酰胺是L-谷氨酸r-基酰胺化的一种氨基酸,是构成蛋白质的基本氨基酸之一,在机体内含量丰富,对于生物体的代谢具有极其重要的作用,同时也是一种极具开发前途的新药[1-3]。现阶段,谷氨酰胺的生产主要采用发酵法[4],但由于发酵法产生的发酵液成分复杂,含有大量的菌体、蛋白质、色素等其它物质,这些杂质对于谷氨酰胺的提取与精制带来了很大困难,最终影响到谷氨酰胺的收率与质量。因此,在提取纯化之前,必须对发酵液进行预处理,目前去除菌体、蛋白质和色素等杂质的方法主要有絮凝、离心、吸附、微滤,超滤等,这些方法单独使用效果不佳,必须结合使用才能达到理想的效果。

壳聚糖是一种新型的高分子絮凝剂。海藻酸钠是一种天然多糖,具有很好的浓缩溶液、形成凝胶和成膜的能力,与絮凝剂壳聚糖结合使用,具有很好的助凝能力[5]。壳聚糖呈阳离子型,通过“桥架”作用和压缩胶体双电层结构而絮凝,对于带负电荷的菌体、蛋白具有很好的絮凝效果。对于蛋白、色素和多糖等大分子物质,超滤有很好地去除效果[6]。在超滤前,先进行絮凝、离心和吸附,大部分悬浮物被去除,在一定程度上减轻了超滤膜的污染问题。本文采用絮凝、离心、活性炭吸附和超滤等方法对谷氨酰胺发酵液进行了预处理,为谷氨酰胺生产提供一定的理论依据。

1 材料与方法

1.1 试剂和设备 谷氨酰胺发酵液(本实验室提供);壳聚糖;海藻酸钠;GH-15活性炭,其它试剂均为AR。Ultrospec 2100 pro(Amersham Biosciences);ZNCL-B(予华仪器有限责任公司);SORVALL RC6+ Centrifuge(Thermo Scientific);SBA-40D型生物传感自动分析仪(山东省科学院生物研究所);PHS-3B型酸度计(上海精密科学仪器有限公司);QuixStand台式膜过滤分离系统。

1.2 实验方法

1.2.1 絮凝实验 取100mL谷氨酰胺发酵液于200mL烧杯中,调节其pH。开启温度搅拌器,设定好温度和转速后,将盛有发酵液的烧杯放在其上,待温度达到设定温度后,将壳聚糖和海藻酸钠慢慢加入其中,在400r/min搅拌速度下使发酵液和絮凝剂助凝剂充分接触,2min后设定絮凝搅拌速率。

1.2.2 菌体去除率测定 以原发酵液菌含量为100%,纯水为0,原发酵液通过稀释,可以制备一系列菌含量不同的溶液,通过这些溶液和其对应的OD600值,可以制备两者之间的标准曲线。

1.2.3 沉淀和活性炭吸附实验[7] 待絮凝结束后,在8 000r/min下离心沉淀,取上清液进行活性炭吸附。吸附条件为:炭量60g,柱高30cm,柱直径2.5cm,流速93mL/h,进样液体积650mL。在390nm处测定吸光度,脱色率DR(%)=(A0-A)/A0×100,式中:A0为脱色前吸光度,A为脱色后吸光度。

1.2.4 超滤实验 发酵液经絮凝、离心沉淀和活性炭吸附后,进行超滤,超滤流程如图1所示。

1.2.5 谷氨酰胺检测 采用酸解-酶膜联用法[8]。

1.2.6 蛋白含量测定 考马斯亮蓝法。

2 结果与分析

2.1 絮凝最佳优化条件实验

2.1.1 壳聚糖浓度对絮凝效果的影响 由图2可知,当壳聚糖浓度为250mg/L时,絮凝清液OD600值降到1左右,对应的菌体除去率达到90%。当壳聚糖浓度小于250mg/L时,絮凝剂用量不足,许多菌体还未与絮凝剂絮凝而留在溶液中。当壳聚糖浓度大于250mg/L时,絮凝剂加入过量,菌体形成带絮颗粒,其不能形成网状状态,使得絮凝颗粒小,因此絮凝效果差。

2.1.2 壳聚糖和海藻酸钠的比例对絮凝效果的影响 为了增强絮凝效果,选择海藻酸钠作为助凝剂。由图3可知,壳聚糖和海藻酸钠浓度之比为1∶3时,絮凝效果最好,菌体去除率接近96%,比壳聚糖单独使用提高6%,助絮凝效果良好。[98.00

2.1.3 pH值对絮凝效果的影响 有研究表明:在pH较低时,壳聚糖和蛋白结合体系更加稳定,对外抵抗能力增强,造成这种现象的原因是低的pH有利于增强其氢键和静电力[9]。由图4可知,pH较低时,絮凝效果较好,pH在3~7,菌体去除率超过80%,其中pH值为5左右效果最佳,菌体去除率超过95%。pH值在3~5时,加入壳聚糖,壳聚糖和菌体表面作用蛋白、发酵液中少数游离蛋白结合,通过絮凝作用,菌体和少数游离蛋白沉淀下来。

2.1.4 温度对絮凝效果的影响 由图5可知,当温度在25℃左右时,絮凝效果最佳,菌体去除率超过95%。当温度较低时,由于絮凝剂与菌体结合蛋白作用频率低,絮凝反应慢,效果较差;当温度较高时,虽然絮凝剂与菌体结合蛋白作用频率增高,但絮凝体细小,沉降效果差,因此菌体去除率较低。

图5 温度对絮凝效果的影响

2.1.5 搅拌时间对絮凝效果的影响 由图6可知,絮凝时间以15min左右为宜。反应时间太短,许多菌体还未絮凝,菌体去除率较低;反应时间太长,由于搅拌,已经形成的絮凝团在剪切力的作用下遭到破坏,絮凝效果也较差。

2.1.6 搅拌强度对絮凝效果的影响 由图7可知,当搅拌强度在80r/min左右时,絮凝效果最佳,发酵液OD600接近0.5,菌体去除率达到95%左右。当搅拌强度较低时,有碍于絮凝剂与菌体结合蛋白的接触,不利于絮凝;当搅拌强度较大时,机械剪切力增强,不利于大的絮凝团的形成,而且不利于絮凝团的沉降。

2.1.7 絮凝对谷氨酰胺收率的影响以及絮凝的去蛋白效果 在絮凝反应前后,分别对发酵液的谷氨酰胺含量进行了检测,检测结果见表1。由表1可以看出,絮凝对谷氨酰胺的影响甚小,发酵液经絮凝后,谷氨酰胺的收率可达到97%左右;同时,絮凝去蛋白效果不明显,壳聚糖作为絮凝剂处理谷氨酰胺发酵液时,不能起到去蛋白的作用。

2.2 活性炭脱色实验 絮凝离心后取上清液进行脱色,脱色效果和活性炭对谷氨酰胺收率的影响见表2。由表2可知,GH-15活性炭脱色效果明显,脱色率超过75%,且对谷氨酰胺的收率影响小。

2.3 超滤实验 选择3种中空纤维滤柱(A、B、C),其截留分子量分别为30 000、10 000和6 000。在超滤前后,分别对发酵液的OD390值和蛋白质浓度进行检测,结果见表3。由表3可知,发酵液经超滤后,脱色和去蛋白效果明显,蛋白质去除率达60%~80%,脱色率进一步提高,经过活性炭吸附和超滤后,总的脱色率达85%;A、B、C相比较,C膜由于孔径小,脱色率和去蛋白率比A膜和B膜高,但增幅效果不明显,因此,在实际应用中,最好使用截留分子量稍大的滤膜。

3 结论

(1)壳聚糖用作谷氨酰胺发酵液菌体去除絮凝剂,絮凝效果较好,而且壳聚糖絮凝时几乎不影响谷氨酰胺的收率。

(2)絮凝的最佳条件:壳聚糖浓度为250mg/L,壳聚糖和海藻酸钠浓度为1∶3,pH控制在5左右,温度在25℃左右,搅拌强度为80r/min,絮凝时间以15min为宜。

(3)GH-15活性炭对谷氨酰胺发酵脱色明显,脱色率达到75%,对谷氨酰胺几乎不造成损失。

(4)超滤去蛋白效果明显,去蛋白率达到60%~80%,而且对于脱色有一定的增益作用。

参考文献

[1]Calder P C.More good news about glutamine[J].Nutrition,2000,16(1):71-73.

[2]Boza J J,Turini M,Mo?nnoz D,et al.Effect of glutamine supplementation of the diet on tissue protein synthesis rate of glucocorticoid-treated rats[J].Nutrition,2001,17(1):35-40.

[3]陆维玮,沈亚领.谷氨酰胺的研究及开发进展[J].中国生化药物杂志,1998,19(3):161-163.

[4]杨梅,张伟国.L-谷氨酰胺高产菌株的选育和发酵条件优化[J].无锡轻工大学学报,2004,23(2):82-85.

[5]谷佳玉.壳聚糖絮凝剂的研究进展与应用[J].山东化工,2013,42(8):64-67.

[6]Gao Q,Duan Q,Wang D,et al.Separation and purification of γ-aminobutyric acid from fermentation broth by flocculation and chromatographic methodologies[J].Journal of agricultural and food chemistry,2013,61(8):1914-1919.

[7]邹学满.关于活性炭吸附氨基酸的研究[J].氨基酸杂志,1985,2:21-25.

[8]刘俊波,李思平,冯雨,等.L-谷氨酰胺测定方法的改进[J].科技致富向导,2011(27):194-194.

[9]张超,郭晓飞,李武,等.pH 值对大豆分离蛋白/壳聚糖复合材料性能的影响[J].中国粮油学报,2013,28(10):21-25.

(责编:张宏民)

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