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土贝母中土贝母苷甲及土贝母总皂苷提取工艺研究*

2015-03-22王卫锋崔晓敏郭五保

陕西中医 2015年5期
关键词:总皂苷提取液皂苷

王卫锋 李 凡 崔晓敏 郭五保 李 芳

陕西省中医药研究院(西安710003)

土贝母中土贝母苷甲及土贝母总皂苷提取工艺研究*

王卫锋 李 凡 崔晓敏 郭五保 李 芳△

陕西省中医药研究院(西安710003)

目的:优选中药土贝母中土贝母苷甲和土贝母总皂苷的提取工艺。方法:以提取液中的土贝母苷甲和土贝母总皂苷为检测指标,采用正交试验的方法来评价并优选土贝母药材的提取工艺。结果:过20目筛的土贝母颗粒加7倍量70%乙醇,以3mL/min流速渗漉为最佳提取条件。结论:此工艺土贝母中的有效成分土贝母苷甲和土贝母总皂苷提取完全,可以作为土贝母中有效成分的提取工艺。

土贝母为葫芦科植物土贝母Bolbostemma panicultum(Maxim.)Franquer的干燥块茎。为《中国药典》2010年版一部收载的品种,具有散结,消肿,解毒的功效。主要用于乳痈、瘰疬、乳腺炎、颈淋巴结核、淋巴结炎、肥厚性鼻炎等[1]。土贝母中已经分离出皂苷、甾醇、脂肪酸等多种化学成分[2-3]。皂苷类为土贝母中的主要活性成分,含量较高。因此对土贝母中的土贝母苷甲和总皂苷类成分进行提取工艺研究。

1 仪器与试药 1.1 仪 器 UV265FW紫外分光光度计(日本岛津公司),BP211D型十万分之一分析天平(德国赛多利斯公司),Waters2690高效液相色谱仪,Waters996二极管阵列检测器,TGL-16G离心机(上海安亭科学仪器厂),H66025T超声清洗机(无锡超声电子设备厂),FW135型倾斜式高速万能粉碎机(天津市泰斯特仪器有限公司),Millennium32色谱工作站, RE-52A型旋转蒸发器(上海亚莱生化仪器厂)。

1.2 试 药 土贝母苷甲对照品(由中国药品生物制品鉴定所提供,供含量测定用,批号:111536-200304),甲醇为色谱纯,水为纯化水,其余试剂均为分析纯。

2 方法与结果 2.1 渗漏提取工艺 采用正交试验的方法[5],对提取工艺进行优化, 以渗漉提取工艺中乙醇浓度、溶剂加入量、渗漉流速、颗粒粒度为考察因素,以土贝母苷甲含量、土贝母总皂苷含量、干膏量为考察指标,设计3个水平,应用L9(34)正交表安排试验,其因素水平表见表1。

2.2 对照品溶液的制备 2.2.1 土贝母总皂苷检测对照品溶液的制备:取减压干燥至恒重的土贝母苷甲对照品26.13mg,精密称定,置25mL量瓶中,以甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,即得(每1mL中含土贝母苷甲1.0452mg)。

2.2.2 土贝母苷甲含量测定对照品溶液的配制:取减压干燥至恒重的土贝母苷甲对照品8.26mg,精密称定,置10mL量瓶中,以甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,即得(每1mL中含土贝母苷甲0.826mg)。

表1 土贝母提取因素水平表

2.2.3 供试品溶液的制备:称取土贝母药材100g,共九份,随机编成1~9号,按L9(34)正交表安排试验,提取液挥去乙醇,定容至一定体积。精密吸取一定量提取液,水浴蒸至无醇味,加水10mL,移置分液漏斗中,用水饱和的正丁醇提取4次(20mL、20mL、10mL、10mL),合并正丁醇液,蒸干,残渣加甲醇溶解,转移至5mL量瓶中,加甲醇稀释至刻度,摇匀,即得。

2.3 测定方法 2.3.1 总皂苷分光光度含量测定方法:精密吸取一定量供试品溶液于10mL具塞试管中,75℃水浴蒸干,向其中加入4%香草醛-冰醋酸0.2mL,再加高氯酸0.6mL,于65℃水浴显色25min,流水冷却至室温后加入4mL冰醋酸稀释,摇匀,以相应试剂为空白,放置15min,在469nm处测量吸收度,并计算含量。

2.3.2 土贝母苷甲含量测定方法:取一定量供试品溶液,离心后与标准品溶液分别注入液相色谱仪,流动相为甲醇-水(65∶35),流速 1mL/min,温度25℃,在214nm处测定峰面积,计算含量。

2.3.3 干膏的测定方法:精密量取上述各试验号的提取液,分别置于已恒重的蒸发皿中,水浴蒸干,残渣于105℃干燥3h,取出,置干燥器中放置30min,称重,计算干膏量。

2.4 结果及分析 正交实验结果见表2,方差分析见表3、表4、表5。

表2 土贝母提取正交设计表及结果

表3 贝母苷甲方差分析表

注:F0.05(2,2)=19.00;F0.01(2,2)=99.00

表4 土贝母总皂苷方差分析表

注:F0.05(2,2)=19.00;F0.01(2,2)=99.00

表5 土贝母浸膏方差分析表

注:F0.05(2,2)=19.00;F0.01(2,2)=99.00

正交试验结果分析:由直观分析(表)可知,各因素对土贝母苷甲提取实验结果影响的重要性为B>C>A>D,对土贝母总皂苷提取结果影响的重要性为A>C>B>D,对干膏收量结果影响的重要性为A>C>B>D,由方差分析(表)可知,因素A、B、C对苷甲的影响都有显著性意义,而因素A对总皂苷提取的影响有显著性差异,而因素A对干膏收量的影响有显著性差异,结合三因素对苷甲和总皂苷的提取应尽可能大,而收得的干膏量应尽可能小,因此本实验选取A2B2C2D1,即过20目筛土贝母粉末加7倍量70%乙醇,以3mL/min流速渗漉为最佳提取条件条件。

2.5 验证试验 为了考察正交试验筛选出的最佳提取工艺的重现性,特进行验证试验,称取药材100g,共3份,按最佳工艺进行实验,测定土贝母苷甲、总皂苷含量及干膏量,结果见表6。

表6 土贝母提取方法验证试验

验证试验结果与正交试验结果基本吻合,说明正交实验筛选出的提取工艺条件合理、可行、重现性好。

3 讨 论 实验过程中以土贝母苷甲和土贝母总皂苷为考察指标,分别比较冷浸法、温浸法、超声法、渗漉法对药材提取效果的影响,结果渗漉提取法对总皂苷和土贝母苷甲的提取效果优于其他方法,因此本实验采用渗漉法进行提取。

[1] 国家药典委员会.中华人民共和国药典[S].北京:中国医药科技出版社,2010:16.

[2] 金鹏飞,郑春辉.中药土贝母的研究进展[J].沈阳药科大学学报,2013,20(2):152-156.

[3] 孔凡华,朱大元,傅章才,等.土贝母化学成分的研究(Ⅲ)[J].化学学报,2008,46:772-778.

(收稿2014-07-16;修回2014-08-12)

*陕西省科技厅项目(2011K16-03-01)

土贝母/分析 @土贝母总皂苷 工艺

R286

A

10.3969/j.issn.1000-7369.2015.05.043

△通讯作者

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