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三种固定剂制作小肠潘氏细胞切片效果比较*

2015-03-22臧贵勇陈腾祥张祥令杨燕萍

贵州医科大学学报 2015年5期
关键词:潘氏教研室贵阳

臧贵勇, 陈腾祥, 张祥令, 杨燕萍

(1.贵州省黔南民族医学专科学校 解剖学教研室, 贵州 都匀 558000;2.贵阳医学院 生理学教研室, 贵州 贵阳 550004;3.贵阳医学院 组织与胚胎学教研室, 贵州 贵阳 550004)



·技术与方法·

三种固定剂制作小肠潘氏细胞切片效果比较*

臧贵勇1**, 陈腾祥2, 张祥令3, 杨燕萍3

(1.贵州省黔南民族医学专科学校 解剖学教研室, 贵州 都匀 558000;2.贵阳医学院 生理学教研室, 贵州 贵阳 550004;3.贵阳医学院 组织与胚胎学教研室, 贵州 贵阳 550004)

目的: 观察改良Helly氏固定液、Bouin液和Carnoy液制作小鼠空肠切片对潘氏细胞的显示效果。方法: 取小鼠空肠,采用改良Helly氏固定液、Bouin液和Carnoy液固定,对小肠组织HE染色,光学显微镜下观察染色效果。结果: 改良Helly氏固定液能清晰显示小肠的潘氏细胞及细胞核轮廓,染色简单,而Bouin液和Carnoy液制片未见潘氏细胞。结论: 改良Helly氏固定液制作切片能更清楚显示潘氏细胞及细胞核轮廓。

小肠;潘氏细胞;固定剂;HE染色

潘氏细胞(Paneth cell)位于小肠腺基底部,三五成群,细胞呈锥体形,顶部胞质充满粗大嗜酸性分泌颗粒,染成红色[1]。经电镜观察,细胞有细胞膜,胞质内含有大量粗面内质网,高尔基复合体较大,分泌颗粒内含有糖蛋白[2]。潘氏细胞是构成肠黏膜屏障的重要细胞成分,能促进食物消化,调控肠道菌群聚集及释放无机盐[3-4]。本实验观察改良Helly氏固定液、Bouin液和Carnoy液制作小鼠空肠切片对潘氏细胞的显示效果,报告如下。

1 材料与方法

1.1 材料

健康小鼠由贵阳医学院实验动物中心提供,30~40 g, 雌雄兼用。切片机、贴片机和显微镜均为Leica公司产品,苏木素、伊红、重铬酸钾、升汞、甲醛水溶液(40%)、铬酸等试剂均为国产分析纯。

1.2 方法

1.2.1 取材固定 小鼠饥饿24 h后拉断脊柱法处死取空肠,分别采用改良Helly液(2.5 g重铬酸钾+5 g升汞+5 mL 40%甲醛水溶液+ 1%铬酸+1 g硫酸钠+1 000 mL蒸馏水),Bouin液和Carnoy液固定18 h。

1.2.2 脱水透明 乙醇梯度脱水:70%乙醇和80%乙醇各2 h,90%乙醇和95%乙醇各1 h,100%乙醇液体和半乙醇半氯仿中各1 h,在透明剂氯仿中过夜直至包埋;脱水时,严格控制不同梯度乙醇的浓度,进入下一步时用滤纸吸干,使组织脱水更彻底。

1.2.3 浸蜡包埋 石蜡和氯仿按1∶1比例混合浸蜡40 min,纯蜡(1)20 min,纯蜡(2)20 min,包埋成蜡块,室温冷却待切。包埋时,石蜡要处于半溶状态,严格控制包埋机温度56~60 ℃,有利于标本浸蜡。

1.2.4 切片及染色 用徕卡轮转式切片机切片6 μm,用徕卡贴片机40 ℃展片,40 ℃温箱烤片4 d。小肠组织HE染色:石蜡切片常规化蜡,下行,苏木精染色,分色,兰化,伊红上色,显微镜下镜检,染色明显,95%乙醇分色,上行,冬青油和二甲苯透明,中性树胶封片[5]。

2 结果

镜下观察,采用Bouin液和Carnoy液固定未见潘氏细胞,而改良的Helly液,潘氏细胞又鲜又艳,形态结构清晰,胞质内充满粗大嗜酸性分泌颗粒,染成红色。见图1。

A、B分别采用Bouin液和Carnoy液固定(×400),C、D采用改良Helly氏液固定(C×400,D×1 000)

3 讨论

潘氏细胞制作是在动物饥饿时取材,这样肠腔干净,利于取材,肠腔不受损,能使潘氏颗粒集聚。组织切片制作时,固定剂是关键,Helly液固定剂对细胞固定较好,特别适用于细胞特殊颗粒固定[6]。本技术对Helly液进行改良,加入1%的铬酸,铬酸穿透力较慢,不会使组织收缩。 Bouin氏固定液、冰醋酸-福尔马林-酒精液(AFA)液、Carnoy液等固定液易破坏细胞,使细胞不易显示。组织脱水和包埋时,严格控制好时间,时间过短或过长,都不利于切片的制作;染色时,分色时间是关键[7];透明时,最好放入冬青油至切片透明,冬青油浸入速度较慢,可浸数小时,临时镜检也不易干。此法可制作大量的、细胞典型的潘氏细胞,供医学生使用。

[1] 邹仲之,李继承.组织学与胚胎学[M].人民卫生出版社, 2013: 149.

[2] 闫爱华, 任知春, 任秀花. 潘氏细胞固定和染色探讨[J]. 四川解剖学报, 2001(2):90.

[3] 陶凯忠, 唐庆娟, 郑萍.潘氏细胞研究进展 [J]. 现代生物医学进展, 2009(4):794-799.

[4] 杨玉荣, 焦喜兰, 梁宏德.潘氏细胞及防御素的研究进展 [J].中国细胞生物学学报, 2010(6):971-975.

[5] 郑燕璇,王晓鸿,苟新敏. 石蜡切片脱蜡方式比较[J]. 中国实用医学, 2009(2):211.

[6] 杜卓民.实用组织学技术[M].人民卫生出版社, 1998:30.

[7] 梁燕清.常规HE染色过程中分色方法的比较[J]. 解剖学研究, 2010(5):封三.

(2015-02-28收稿,2015-04-03修回)

中文编辑: 周 凌

贵州省科技厅联合基金项目(M2011-28)

时间:2015-05-21

http://www.cnki.net/kcms/detail/52.5012.R.20150521.1244.014.html

R329-33; R329.24

B

1000-2707(2015)05-0542-02

**通信作者 E-mail:gzctxin@qq.com

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