麻疯树种子寄藏真菌研究综述

吴跃开，欧国腾

(1.贵州省林业科学研究院，贵阳550005；2.贵州省罗甸县林业局，贵州罗甸550100)

麻疯树种子寄藏真菌研究综述

吴跃开1，欧国腾2

(1.贵州省林业科学研究院，贵阳550005；2.贵州省罗甸县林业局，贵州罗甸550100)

麻疯树是重要的生物质能源植物，其种子的采收及贮藏是生产中的一个重要环节，在这个过程中，种子携带的各种病菌(寄藏真菌)会带来一系列的危害后果。为此，在查阅大量文献资料的基础上，对麻疯树种子贮藏过程中容易携带的病菌种类及其潜在危害性、发生特点，检测方法及其防治措施进行了总结，为麻疯树生产提供必要的技术参考。

麻疯树；种子；寄藏真菌；种类；危害；发生特点；检测；防治

麻疯树(JatrophacurcasL.)为大戟科麻疯树属植物，其根、树皮、叶和种子均可入药；其种子的含油量约为50%，可加工出理想的生物柴油，种仁中的毒蛋白、种子油及其他种子提取物还可作为生物农药，因而麻疯树的种子具有十分重要的经济价值，极具开发潜力[1]。

然而，植物的种子在其生长发育以及采收贮藏的过程，难以避免与外源的多种真菌发生接触；这些真菌的存在方式可能是种子内生(种皮或种胚内)的，也可能是表生的，还有可能仅仅是与种子简单混合在一起的杂菌。对于麻疯树种子而言，其携带的真菌(寄藏真菌)会带来一系列的不利后果：1)导致种子变质、腐烂，不但直接影响出油率，还可能会降低种子加工产品(生物柴油)的质量；2)降低种子的生活力，导致发芽率及出苗率降低；3)成为麻疯树下一代生长期病害发生的重要初侵染源；4)引起植物病害远距离(甚至是国际间)传播，扩大新的病区。有鉴于此，本文在查阅大量文献资料的基础上，对麻疯树种子携带的常见真菌种类及其发生特点、检测方法、防治措施等方面进行了总结，为麻疯树种子的贮藏、播种育苗、田间病害防治等生产环节提供必要的技术参考。

1 麻疯树种子主要寄藏真菌种类

1.1 田间性真菌

1)镰孢菌(Fusariumspp.)。 镰孢菌是麻疯树种子最容易携带的常见真菌种类之一。在印尼，从麻疯树种子上普遍检测到镰孢菌类(Fusariumspp.)，其中包括重要的根腐病病原菌F.solani[2-3]；在印度，从麻疯树种子上检测到的镰孢菌种类有F.solani、F.semitectum、F.moniliforme,F.roseum[4-5]；在巴西，从不同地区采集的麻疯树种子上的也有较高的Fusarium检出率[6-12]。在埃及，麻疯树种子上的Fusarium spp.检出率也高达22.13%[13]。

2)炭疽菌(Colletotrichumspp.)。在印尼，麻疯树种子上也常检测到Colletotrichumsp.[3]。在印度，由各地收集到的不同种源的种子上检测到C.acutatum和C.graminicola[4]。在巴西，麻疯树种子(特别是未消毒的种子)上也常检测到Colletotrichumsp[6,9-11]，其中包括Colletotrichumcapsici[14]。

3)枝孢霉菌(Cladosporiumspp.)。从印尼西爪哇地区采集并贮藏了6个月的麻疯树种子上可检测到16种真菌种类, 其中包括Cladosporiumspp.[3]。在印度，由各地收集到的不同种源的种子上也常检测到Cladosporiumsp.[4]，其中包括C.cladosporioides[5]。在巴西，从米纳斯吉拉斯、南马托格罗索州、圣保罗州等地收集到的麻疯树种子上也分别具有较高的Cladosporium检出率[7,10]，其中包括C.cladosporioides，发生率为 4.5 to 85%, 在表面未消毒时发生量最高[11]。

4)可可毛色二孢菌(Lasiodiplodiatheobromae)。对从印度各地收集到的213个不同种源对其种子健康状态进行检测，发现许多重要的种传病菌种类，其中以L.theobromae发生频率最高，39%种源上都检测到[4]。

5)链格孢菌(Alternariaspp .)。对来自印度不同地区的麻疯树种子进行检测时，常检测到A.alternata[4-5,15]。在巴西，有许多报道也表明Alternariaspp.是麻疯树种子普遍携带的真菌种类之一，在某些情况下还具有相对较高的检出率而成为优势种类[6-10]，其中包括A.alternata[11]。在埃及，麻疯树种子上检测到的真菌种类中包括A.tenuis，检出率达11.03%[13]。

6)弯孢菌(Curvulariasp.)。在印度，从麻疯树种子上检测到的弯孢菌种类有C.lunata[5]和C.pallescens[15]。在巴西，来自不同地区的麻疯树种子上也常检测到Curvulariasp.[6,9,11]。

7)丝核菌(Rhizoctoniaspp. /Macrophominaspp.)。对来自巴西不同地方的麻疯树种子进行检测，发现Macrophomina及Rhizoctonia具有比较高的检出率，其中Rhizoctoniasolani是一个优势种类[8,11-10]。来自埃及Aloksour Governorat地区的麻疯树种子上，R.solani的检出率也较高，达11.87 %[13]。

8)盘多毛孢菌(Pestalotiasp.)。对印度各地收集到的213个不同种源麻疯树种子进行检测时，普遍发现Pestalotiasp.[4]。在巴西，麻疯树种子上也检测出Pestalotia sp.，但检出率相对较低[11]。

9)茎点霉(Phomasp.)。从巴西的南马托格罗索州收集到麻疯树种子样品上发现有Phomasp.，且其检出率高达92%[7]。对从印度各地收集到的不同种源的种子上，也发现Phomasp.[4]。

10)其它种类。除了上述病菌种类以外，麻疯树种子上还检测出以下一些病菌种类：Ascochytasp.、Bipolarissp.、Phomopsissp.、Helminthosporiumsp.[8,11]、Cercosporasp.以及Drechslerarostrata(=Setosphaeriarostrata)[4]，它们大多数均具有潜在的致病力，亦应引起重视。

1.2 仓储性真菌

1)曲霉菌(Aspergillusspp.)。 在印尼，从麻疯树种子上常检测到的真菌种类中包括Aspergillusspp.[3]，其中包含A.flavus[2]。在印度，从各地采集到的麻疯树种子中，检测到多种Aspergillusspp.，包括A.flavus、A.niger、A.glaucus、A.fumigatus、A.terreus，它们的检出率往往相对较高，属优势种类[4-5,15-16]。在巴西，由各地采集到的麻疯树种子上，无论是否进行了表面消毒，均能检测到Aspergillusspp.，而且通常具有最高的检出率，属最优势种类[6-9,11-12]。从埃及Aloksour Governorat采集到的麻疯树种子上检测到的真菌种类中包括有A.flavus(11.77%),A.niger(9.77%),A.paraziticus(2.05%),A.terreus(3.05%)[13]。

2)青霉菌(PeniciIliumspp.)。在印尼，从麻疯树种子上检测到的真菌种类中也常包括PeniciIliumspp.[2-3]。在印度，由不同地方采集的麻疯树种子上也常检测到PeniciIliumspp.，其中包括P.citrinum、P.rubrum、P.sublateritium[5,15-16]。在巴西，由各地采集到的麻疯树种子上，无论是否进行了表面消毒，检测到的真菌种类中均包括Penicilliumspp.，且属优势种[6-9,11-12]。从埃及AloksourGovernorat采集到的麻疯树种子上检测到的真菌种类中也包括具较高检出率的Penicilliumspp. (11.03%)[13]。

3) 金孢菌(Chrysosporiumsp.)。Hanafi在印尼也从麻疯树种子检测到多种真菌，其中以Chrysosporiumsp.为优势种，但认为该种为腐生性，仅从种皮上检测到，致病潜力不大[17]。

4) 根霉菌(Rhizopussp.)。在印度，由各地采集到的麻疯树种子上，常检测到Rhizopusspp.，其中包括有R.stolonifer和R.nigricans[5,15-16]。在巴西，由各地采集而来的麻疯树种子上也常检测到Rhizopussp.[6-9]。从埃及AloksourGovernorat采集到的麻疯树种子上检测到的真菌种类中亦包括Rhizopusspp. (8.73%)[13]。

5) 毛霉菌(Mucorsp.)。对采自印度Tamil Nadu地区的一些麻疯树种子上检测到的真菌种类包括Mucorsp.[16]。从埃及Aloksour Governorat采集到的麻疯树种子上检测到的真菌种类也包括有Mucorspp. (6.20%)[13]。

6)毛壳菌(Chaetomiumsp.)。在印度，由各地采集到不同种源的麻疯树种子中常检测到Chaetomiumsp.[4]，其中包括Chaetomiumglobosum[5]。在巴西，在消毒的麻疯树种子上也能检测到少量的Chaetomiumsp.[6,11]。

7) 其它仓储菌。对来自巴西的麻疯树种子的检测中还发现其它一些仓储性真菌种类包括Acremoniumsp.,Chaetomiumsp.,Periconiasp.,Epicoccumspp.,Nigrosporasp.,Trichotheciumsp.,Absidiasp.、Moniliasp.[4,6,11]。在印度，从来自Haryana地区的麻疯树种子上还检测出Trichodermaharzianum[15]，而来自印度北方邦瓦拉纳西地区的麻疯树种子上检测到Cephaliophorairregularis[5]。

2 麻疯树种子寄藏真菌的的危害

麻疯树种子上存在的多种田间性病菌种类，将成为麻疯树各种病害发生的重要初侵染源，同时也将引起这些植物病害的远距离传播。这些病菌中，有些是引起麻疯树幼苗猝倒病或立枯病的常规病原菌，如Fusariumsp.[18]、Rhizoctoniasolani[19]；有些可引起严重的麻疯树根部及根茎腐烂病，典型的例子有Fusariumsolani[20-22]、Fusariummoniliforme[23]、Rhizoctoniabataticola(=Macrophominaphaseolina)[24-25]、Lasiodiplodiatheobromae[26-27]等；有些则造成严重的叶部病害，如普遍引起麻疯树叶部炭疽病的两种主要病原菌为Colletotrichumcapsici[28-29]和C.gloeosporioides[30-33]，以及普遍引起麻疯树叶斑病的Pestalotiopsisspp.[30,34-35]、Alternariaalternata[36-37]、Curvularialunata[38]、Helminthosporiumtetramera[39]、Cercosporaapiis. lato[40-41]等；有些可引起麻疯树严重的枝干溃疡或腐烂病，如Lasiodiplodiatheobromae[33,42-43]、Fusariumspp.[44,45]；有些则会侵染花序及果实，造成花果病害，如A.alternata[46-47]、Colletotrichumgloeosporioides(Penz.) Penz. and Sacc.[48-49]。

仓储性病菌的存在则直接对种子造成一系列的危害，导致种子在仓库内发生霉烂，降低了种子的商品质量，同时由于种子生活力的降低，导致播种的发芽率及出苗率降低[50]。对于麻疯树种子而言，贮藏真菌的存在可能会导致种子所含油酯品质的下降而影响生物柴油的质量，而且，真菌本身及其产物如真菌毒素也会污染麻疯树种子的加工副产品而带来其它危害后果[16]。例如，寄藏于麻疯树种子上的两种霉菌种类——黄曲霉 (Aspergillusflavus)和寄生曲霉 (A.parasiticus)均已被发现能够产生大量的黄曲霉毒素[13]。

Singh等曾报道麻疯树种子由于真菌的感染会导致油产量及质量有所下降[51]；Worang等的研究也发现，随着贮藏时间的推移，麻疯树种子的脂质含量、生活力(viabilities)以及活力(vigors)均逐渐下降，同时游离脂肪酸和脂肪酶的活力逐渐提高[3]；Dharmaputra等报道麻疯树种子在贮藏期间会发生不可逆的退行性变化，导致种子不再适宜于榨油、播种或商业出口[52]；Carneiro也从麻疯树某批种子上检测到一些真菌并认为这些菌类的存在与这批种子的较低发芽率有关[12]。

3 麻疯树种子寄藏真菌的发生特点

许多研究表明，麻疯树种子寄藏真菌种类的组成及其变化是有一定规律的。如，Worang等从印度西爪蛙采集的并贮藏6个月后的麻疯树种子上检测到16种真菌种类；贮藏始期，检测到的真菌种类大多为田间性真菌类，如Colletotrichumsp.,Cladosporiumspp., 以及Fusariumspp.等，这些真菌的种群量随着贮藏时间的延长而降低；3个月后，它们逐渐被仓储性真菌种类所代替，如Aspergillusspp.和Penicilliumspp.[3]。Srivastava 等在贮藏一年内的来自印度北方邦瓦拉纳西(Varanasi)的麻疯树种子上检测到16种真菌，其中优势种为Alternatiaalternate,Aspergillusflavus,A.fumigatus,A.niger,FusariumroseumandPenicilliumrubrum;同时发现初始时分离出的一些田间性霉菌包括Cladosporiumcladosporioides,Fusariummoniliforme及F.roseum的种群量在贮藏过程中逐渐降低，最终被仓贮性霉菌类所替代[5]。其它研究也得出类似的结论[13,15]。

有研究表明，在深冷贮藏(cryogenic storage)30天以后，仍能大量检测出Aspergillussp.、Cladosporiumsp. 以及Fusariumsp.，这表明麻疯树种子即使在深冷温度的条件下进行贮藏，也未能消除或抑制其携带的许多真菌种类[53]。

4 麻疯树种子寄藏真菌的检测

种子寄藏真菌的类别可分为四类：一是表皮附生真菌(surface mycofloras)，分离培养时要求种子不作任何处理；二是表皮寄生真菌(surface invaders)，分离培养时种子要用自来水冲洗并用无菌水清干净； 三是表皮内生真菌(internal fungi)，培养时种子表面要彻底灭菌处理(升汞水灭菌后用氯化钠溶液清干净)；四是种核生真菌，培养时要将灭过菌的种皮去除[16]。

种子寄藏真菌的培养观测主要有两种方法，即琼脂培养基平板法(Agar plate technique)和 吸水纸培养法(blotter test method)。有人运用这两种方法对麻疯树种子寄藏真菌进行检测，发现前者检测到的真菌种类更多，特别是Chaetomiumglobosum,Cladosporiumcladosporioides,Curvularialunata和Fusariummoniliforme等真菌种类的检出率显著较高[5]。在检测麻疯树种子寄藏真菌时，可采用加50%蔗糖的高渗察氏琼脂培养基(CDA)平板来培养，而在分离及继代培养时，则可使用加3%蔗糖的CDA；同时，为了防止细菌及酵母菌的污染，在培养基中加入一定量的抗生素(链霉素和青霉素)[16]。

5 麻疯树种子寄藏真菌的防控策略

麻疯树种子寄藏真菌的防控要分别从贮藏前、贮藏期、贮藏后3个时间段进行考量并制定相应的策略。

贮藏前防治：1)保证种子来自成熟的果实。Silva 等的研究发现开花65天后、果实变褐(或褐色并带有一些黄斑)时，种子的质量最高，因为此期采收的种子具有最高的发芽率及活力，同时种子干物质的含量也最高[54]。2)保证种子来自健康无病的果实。这是因为为害果实的病菌能够间接地对贮藏期的种子活力造成实质上的为害。如引起麻疯树果实白霉病的Cylindrocladiumjatrophae和引起果实炭疽病的Colletotrichumgloeosporioides在自然条件下虽然未见感染种子，但利用感染果实中的种子播种时，发现其萌发率明显较健康果实获得的种子低(甚至不及其一半)，其原因可能是果实感病后，生理及营养效率水平受到影响，导致其中种子的健康质量有所下降[55]。3)贮藏前可考虑对种子进行消毒处理。例如，用0.1 或 0.2% (w/v) HgCl2对种子进行表面消毒处理3分钟，可以显著抑制Alternariaalternate、Fusariumsp. 和Epicoccumpurpurascens等杂菌[56]；用1% Na(OCl)2进行表面消毒，可减少Aspergillusspp.、Chaetomiumspp.、Cladosporiumspp.、Rhizopusspp. 、Cephalosporiumspp. 等杂菌的滋生[57]。4)和其它植物种子一样，麻疯树种子在入库前，要保证种子干燥、纯净而无杂质。

贮藏期防治：1)控制贮藏的环境条件。保持种子生活力及活力的最佳途径是将其保存于干燥、低温的环境中[3]。其原因在于真菌一般都要求高温高湿的条件，因而低温、干燥等条件可抑制其发生发展的速度，使种子在加工或播种前不致于遭受病菌的侵染与破坏。2)包装材料选择。要防止种子的(物理及生理上的)质量及其纯净度(无杂质或病菌污染)受到影响，要求贮藏时采用的包装材料具有足够的拉伸强度、耐破强度以及抗撕裂强度，这种材料的典型代表为聚乙烯[3]。

贮藏后防治：这里主要指种子出库用于播种时的处理措施。李荣峰等研究不同化学消毒处理对麻疯树种子萌发的影响，发现以0.2 g/L 高锰酸钾消毒处理后的种子发芽率最高，而如果综合考虑发芽速度及染菌率，则以1%硫酸铜消毒的效果最佳[58]。李忠光和龚明的研究结果则表明CuSO4消毒不仅效果好, 而且还可以提高种子的发芽率、发芽指数和脂肪酶活性，其它消毒剂H2O2、NaCl和HgCl2则不同程度地削弱了种子的发芽率、发芽指数、脂肪酶活性和幼苗的生长[59]。除了化学药剂，一些有益微生物也可用来处理种子，如Actinomycetossp. 和Trichodermasp.的一些菌株可以抑制麻疯树种子上的一些种传真菌，包括Fusariumsp. 和Cylindrocladiumsp.[60-61]。实践中，可施用生物有机肥料以达到这一目的，因生物有机肥含有大量的有益微生物，它们能对植物种子的许多寄藏真菌产生很好的抑制作用。

6 结论与讨论

传统上，麻疯树被认为具有很强的杀菌特性，特别是其种子中含有一些重要的杀菌物质，包括β-1,3葡聚糖酶[62-63]、麻疯树毒蛋白(curcin)[64]等。Srivastava等通过试验表明麻疯树种子油对Penicilliumglabrum及Aspergillusniger等真菌具有显著的抗菌作用[65]；Thangavelu 等也报道麻疯树种子提取物能够抑制香蕉炭疽病菌(Colletotrichummusae)的菌丝生长[66]。

然而，麻疯树的杀菌特性并不是绝对的，众多的研究资料表明麻疯树种子本身常携带有众多的真菌种类，包括田间性真菌及仓储性真菌两大类。这些寄藏真菌的存在会给麻疯树种子带来一系列的危害后果，或导致种子不适宜榨油、出口，或造成种子质量及活力降低而影响播种发芽率，或成为田间病害的初侵染源、造成下一代苗木及成树的多种病害。随着时间的推移以及真菌适应性的不断增强，麻疯树种子上所携带的真菌种类组成也将更加复杂，造成的危害也将逐渐显现。有鉴于此，我们要对麻疯树种子寄藏真菌予以足够的重视，切实加强其检测及防控处理工作。

[1]邓志军,程红焱,宋松泉. 麻疯树种子的研究进展[J]. 云南植物研究,2005,27(6):605-612.

[2]Hanafi B. Hama dan Penyakit Benih Dan Pembibitan Tanaman Jarak Pagar (JatrophacurcasL.) Di Kebun Bibit Indonesian Center for Biodiversity and Biotechnology (ICBB) Bogor[D]. Skripsi Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Pertanian pada Fakultas Pertanian, lnstitut Pertanian Bogor. 2006.

[3]Worang RL, Dharamputra R, Syarief R. et al. The quality of physic nut (Jatrophacurcas) seeds packed in plastic material during storage[J]. Biotropia, 2008, 15:25-36.

[4]Anitha K, Chakrabarty SK, Sunil N, et al. Fungi recorded onJatrophacurcasL. seed collected in India[J]. Indian Journal of Plant Protection,2005.33(2):303-304.

[5]Srivastava S, Sinha A and Srivastava CP. Screening of seed-borne mycoflora ofJatrophacurcasL.[J]. Research Journal of Seed Science, 2011, 4(2):94-105.

[6]Melo MFV, Santos HO, Silva-Mann R, et al. Fungos associados a sementes de pinhção manso (JatrophacurcasL.) [C]. In: II Congresso da Rede Brasileira de Tecnologia de Biodiesel, 2007, Brasília- DF.

[7]Almeida AM, Bertani RMA, Funai CH, et al. Ocorrência de fungos associados a sementes de pinhão manso [J]. Tropical Plant Pathology, 2008,33 (Suplemento), S 279.

[8]Neves WS, Parreira DF, Ferreira PA, et al. Avaliação Fitossanitária de Sementes de Pinhão-Manso Provenientes dos Vales do Jequitinhonha e Mucuri. Revista Trópica - Ciências Agrárias e Biológicas,2009, 3(2):17-23.

[9]Sá DAC, Santos GR, Furtado GQ, et al. 2009. Identificação de fungos Externa e Internamente a Sementes de Pinhão-Manso [C]. I Congresso Brasileiro de Pesquisas de Pinhão Manso Brasília-DF, Novembro, 2009.

[10]Vanzolini S, Meorin EBK, Silva RAD, et al. Qualidade Sanitária e Germinação de Sementes de Pinhão-Manso[J]. Revista Brasileira de Sementes, 2010,32(4): 9 -14.

[11]Kobayasti L, Adoriam AI, Neto VBDP, et al. Incidência de Fungos em Sementes de Pinhão-Manso[J]. Pesq. Agropec. Trop., Goiania, 2011, 41(3): 385-390.

[12]Carneiro RCS. Qualidae Física, Fisiológica e Sanitária de Sementes de Pinhão-manso (JatrophacurcasL.) Procedentes de Diferentes Localidades[D]. Disserta??o apresentada à Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia. 2011.74pp.

[13]Sahab AF, Aly SE, Nawar LS, et al. Fungal occurrence in physic nut (Jatrophacurcas) seeds during storage and possibility aflatoxin production byAspergillusflavsandAspergillusparaziticusisolates[J]. Journal of American Science, 2011,7(5):511-516.

[14]Machado AR & Pereira OL. 2012. Major Diseases of the Biofuel Plant, Physic Nut[C]. In: Biodiesel - Feedstocks, Production and Applications, edited by Zhen Fang. Publisher: InTech, Published: December 03, 2012. pp.59-75.

[15]Tiwari P, Kannojia P, and Pandey A. Jatropha Seed Borne Fungi in the Haryana[J]. International Journal of Advanced Biological Research, 2012,2(1):83-85.

[16]Jayaraman P, NesaPriya S, Parameshwari S, et al. Occurrence of storage fungi in jatropha (JatrophacurcasL.) seeds[J]. African Journal of Microbiology Research, 2011, 5(5): 475-480.

[17]Hanafi B. Hama dan Penyakit Benih Dan Pembibitan Tanaman Jarak Pagar (JatrophacurcasL.) Di Kebun Bibit Indonesian Center for Biodiversity and Biotechnology (ICBB) Bogor[D]. Skripsi Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Pertanian pada Fakultas Pertanian, lnstitut Pertanian Bogor. 2006.

[18]Heller J. Untersuchungen über genotypische Eigenschaften und Vermehrungsund Anbauverfahren bei der Purgiernuβ (JatrophacurcasL.). Verlag Dr. Kovac, Hamburg. 1992.

[19]Júnior JRV，Fernandes CF，Rocha RB，et al. 2009. Ocorrência da mela (Thanatephoruscucumeris) em mudas de pinhão manso (JatrophacurcasL.). Comunicado Técnico 340. Embrapa, Porto Velho, RO. 4pp.

[20]吴跃开，欧国腾，朱秀娥,等.麻疯树根腐病的病原鉴定[J]. 安徽农业科学，2011, 39(28):17305-17307.

[21]吴跃开,罗在柒,朱秀娥,等.麻疯树腐皮镰孢根腐菌的寄主专化性初步研究[J]. 广东农业科学, 2011, 2011(18)：49-51.

[22]吴跃开,欧国腾. 麻疯树根腐病病原菌有性阶段的调查及鉴定[J]. 中国农学通报, 2011, 27(24):297-301.

[23]Sharma S, Kaushik JC, Kaushik N.Fusariummoniliformecausing root rot of jatropha[J]. Indian Phytopathology. 2001, 54(2):275.

[24]Sharma S & Kumar K. Root rot ofJatrophacurcasincitedbyRhizoctoniabataticolain India [J]. Indian Forester, 2009. 135: 433-434.

[25]Yulianti T & Supriyono. Charcoal Rot of Physic Nut (JatrophacurcasL.)[C]. Prosiding Lokakarya Nasional - III Inovasi Teknologi Jarak Pagar Untuk Mendukung Program Desa Mandiri Energi. Balai Penelitian Tanaman Tembakau dan Serat. 2007. p.302-307.

[26]Latha P, Prakasam V, Kamalakannan A, et al.First report ofLasiodiplodiatheobromae(Pat.) Griffon & Maubl causing root rot and collar rot disease of physic nut (JatrophacurcasL.) in India [J]. Australasian Plant Disease Notes, 2009, 4:19-20.

[27]Pereira OL, Dutra DC and Dias LAS.Lasiodiplodiatheobromaeis the causal agent of a damaging root and collar rot disease on the biofuel plantJatrophacurcasin Brazil[J]. Australasian Plant Disease Notes, 2009, 4:120-123.

[28]Kenis M. (Compiler). JATROPHABILITY: Impacts of tropical land use conversion to Jatropha and oil palm on rural livelihoods and ecosystem services in India and Mexico - (ERA-ARD). Final report for SDC. 2013.

[29]Torres-Calzada C, Tapia-Tussell Rl, Nexticapan-Garcez Al, et al. First report ofColletotrichumcapsicicausing anthracnose in Jatropha curcas in Yucatan, Mexico [J].New Disease Reports,2011, 23:6.

[30]Tippeshi LC. Survey, characterization and management of diseases ofJatrophacurcasL.[J]. M.Sc.Thesis, Univ.Agric. Sci., Dharwad (India). 2007.

[31]Tippeshi LC, Chavhan, Patil VMP, et al. Documentary and disease calendar for diseases ofJatrophacurcasin northern dry zone and northern transition zone of Karnataka[J]. Environment and Ecology, 2011,29 (3A): 1407-1410.

[32]Rathod P & Suryanarayana V. Influence of anthracnose on growth ofJatrophacurcasL. - a biofuel yielding perennial species[J]. Journal of Plant Disease Sciences, 2011, 6(2): 185-187.

[33]Paramathma M. 7th R&D Report on Tree Borne Oilseeds(TBOs): 2011-12[M]. National Oilseeds and Vegetable Oils Development Board, Ministry of Agriculture, Govt. of India. Plot No. 86, Sector-18, Institutional Area, Gurgaon-122 015 (Haryana) .2012.

[34]Phillips SA. new record ofPestalotiopsisversicoloron the leaves ofJatrophacurcas[J]. Indian Phytopathology,1975,28(4): 546.

[35]Xiao ZhJ, Li XX, Duan S, et al. The identification on pathogen of barbadosnut leaf blight[J]. Mycosystema, 2010, 29(6): 874-878.

[36]Hudge BV, Datar VV. Study of incidence and severity of leaf spot disease inJatrophacurcasL. [J]. International Journal of Agricultural Sciences，2010,6(1):355-356.

[37]Shukla R & Jamaluddin. Two new leaf spot diseases ofJatrophacurcasL from central India[J]. J. Mycol. Plant Pathol., 2010, 40:479-480.

[38]Cisneros-López E, González-Quintero J, Moreno-Medina VR, et al. First report ofCurvularialunataonJatrophacurcasin Mexico[J]. Plant Disease , 2012, 96(2): 288.

[39]Singh ID. New Leaf spot diseases of two medicinal plants[J]. Madras Agricultural Journal, 1983, 70 (7): 490.

[40]Dianese JC, Dianese AC, Souza ESC. et al. New record ofCercosporaapiis. lato onPipernigrumandJatrophacurcasin the Cerrado[C]. Abstract from the Joint Meeting of the MSA and International Symposium on Fungal Endophytes of Grasses(ISFEG),June 28-July 1, 2010.

[41]Dianese AC, Dianese JC, Júnior JDGS. New Records for the Brazilian Cerrado of Leaf Pathogens onJatrophaCurcas[J]. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, No. 293- Embrapa Cerrados，2010, 13 pp.

[42]Freire FCO & Mosca JL. Patógenos associados a doenças de plantas ornamentais no Estado do Ceará[Diseases of flowers and ornamental plants in Ceará State, Brazil[J]. Revista Brasileira de Hortiultura Ornamental, 2009, 15(1): 83-89.

[43]Sulaiman R; Thanarajoo SS, Kadir J, et al. First Report ofLasiodiplodiatheobromaeCausing Stem Canker ofJatrophacurcasin Malaysia[J]. Plant Disease,2012, 96(5): 767 .

[44]Zarafi AB and Abdulkadir ID. Identification and host range of causal agent of dieback disease onJatrophacurcas[J]. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 2012, 45(9):1096-1100.

[45]Zarafi AB and Abdulkadir ID. The Incidence and Severity of Jatropha Dieback Disease in Zaria, Nigeria[J]. Agricultural Jounal, 2013,8 (2):83-88.

[46]Kumar R, Srivastava S, Sinha A, et al. First Report ofAlternariaalternateCausing Fruit Rot Disease ofJatrophacurcasfrom India[J]. J. Mycol. Plant Pathol., 2012, 42(2):265-266.

[47]Espinoza-Verduzco MDLA, Santos-Cervantes ME, Fernandez-Herrera E. et al. First report ofAlternariaalternata(Fr.) Keissler causing inflorescence blight inJatrophacurcasin Sinaloa, Mexico[J]. Can. J. Plant Pathol., 2012, 34(3):455-458.

[48]Kwon JH, Choi O, Kim J, et al. First Report of Anthracnose Disease onJatrophacurcasCaused byColletotrichumgloeosporioidesin Korea[J]. Journal of Phytopathology, 2012,160:255-257.

[49]Cahatian PO & Tangonan NG. Pests and diseases of jatropha and their management[M]. University of Southern Mindanao, Kabacan, Cotabato, Philippines, 2009, 67pp.

[50]Christensen CM and Kaufmann HH. Grain storage - The role of fungi in quality loss[M]. University of Minnesota Press. Minneapolis. 1969. 153 pp.

[51]Singh N, Harsh NSK and Bhargava A. Biodeterioration ofJatrophacurcasseeds[J]. Ann. For. 1996,4(1):52-54.

[52]Dharamputra OS, Worang RL, Syarief R. et al. The quality of physic nut (Jatrophacurcas) seeds affected by water activity and duration of storage [J]. Microbiology, 2009, 3: 139-145.

[53] Goldfarb M, Duarte MEM, Mata MERMC., et al. Incidência de fungos e qualidade fisiológica de sementes de pinhão manso (JatrophacurcasL.) após o armazenamento criogênico[J]. Biotemas, 2010,23 (1): 19-26.

[54]Silva LJ,Dias CFS,?Dias LAS,?et al. Physiological quality ofJatrophacurcasL. seeds harvested at different development stages[J]. Seed Science and Technology, 2011,39(3): 572-580.

[55]Rathod P & Suryanarayana V. Studies on seed borne nature of anthracnose andCylindrocladiumwhite mold inJatrophacurcasL.[J]. Karnataka J. Agric. Sci., 2010, 23 (5) : 809-810.

[56]Ramakrishna N, Lacey J, and Smith JE. Effect of surface sterilization, fumigation and gamma irradiation on the microflora and germination of barley seeds[J]. Int. J. Food. Microbiol., 1991,13:47-54.

[57]Niaz I & Dawar S. Detection of seed borne mycoflora in maize (ZeamaysL.)[J]. Pak. J. Bot., 2009, 41:443-451.

[58]李荣峰,蓝业琳,曾小飚,等. 不同消毒方法及铝浸种对麻疯树种子萌发的影响[J].种子,2013,32(2):5-8.

[59]李忠光,龚明. 不同化学消毒剂对小桐子种子萌发和幼苗生长的影响[J]. 种子,2011, 30(2):4-7,12.

[60]Azevedo DMQ, Nobre SAM, Batista GN, et al. Seleção in vitro deActinomycetospara o biocontrole de patógenos em sementes de pinhão manso (JatrophacurcasL.) [C]. IX Fórum de Ensino/X Seminário de Pesquisa e Pós Graduação. 23 a 25 de setembro de 2009.

[61]Batista GN, Nobre SAM, Azevedo DMQ, et al. Seleção in vitro deTrichodermasp. para controle de patógenos presentes em sementes de pinhão manso (JatrophacurcasL.)[C]. IX Fórum de Ensino/X Seminário de Pesquisa e Pós Graduação. 23 a 25 de setembro de 2009.

[62]Wei Q, Liao Y, Chen Y, et al. Isolation, characterisation and antifungal activity of beta-1,3-glucanase from seeds ofJatrophacurcas[J]. South African Journal of Botany, 2005,71(1):95-99.

[63]周锦霞,魏琴,周黎军,等. 麻疯树种子β-1,3葡聚糖酶的优化提取及其部分性质分析[J].西南农业学报，2005,18(3):328-333.

[64]魏琴,廖敏,周黎军,等.麻疯树毒蛋白抗真菌性活性研究[J].中国油料作物学报,2004, 26(3):71-75.

[65]Srivastava S, Kumar R and Sinha A. Antifungal Activity ofJatrophacurcasOil Against Some Seed-borne Fungi[J]. Plant Pathology Journal, 2012,11(4):120-123.

[66]Thangavelu R; Sundararaju P, and Sathiamoorthy S. Management of anthracnose disease of banana caused byColletotrichummusaeusing plant extracts[J]. J. Hort. Sci. Biotechnol., 2004, 79:664-668.

An Overview on the Seed-borne Fungi ofJatrophacurcas

Wu Yuekai1,Ou Guoteng2

(1.Guizhou Academy of Forestry, Guiyang 550005；2.Forestry Bureau of Luodian County, Luodian, Guizhou 550100)

seed harvest and its storage is an important link ofJatrophaproduction process, during which the existence of seed-borne fungi will result in negative effects. On this background, a literature review was conducted to summarize the seed-borne fungi ofJatrophain aspects of the species composition, potential damage, occurrence characteristics, detection, and control countermeasures, in order to offer technical information for theJatrophaproduction.

JatrophacurcasL.；Seed； Seed-borne fungi；Species；Damage；Occurrence characteristics；Detection；Control

2014-12-11

贵州省年度攻关项目(黔科合NY(2009)3065)

吴跃开(1972-)，男，侗族，硕士，副研究员，从事植物保护及有益生物开发利用研究，E-mail: wuyaokai@163.com。

S41-31

A

DOI.:10.13268/j.cnki.fbsic.2015.03.038