HPLC法测定三种制剂中水杨酸的含量
2014-12-03徐风华王欢欢解放军总医院药品保障中心北京100853
白 林,蔡 乐,徐风华,王欢欢(解放军总医院药品保障中心,北京 100853)
水杨酸软膏、水杨酸硫软膏、复方硫软膏收载于《中国人民解放军医疗机构制剂规范》[1],三种制剂处方中均含有水杨酸,其共同的特点是抗真菌、止痒,常用于皮肤癣症、真菌感染及皮炎湿疹等。以上制剂应用多年,是临床疗效显著的医院制剂,在原质量标准中,复方硫软膏中的水杨酸无含量测定项;水杨酸软膏、水杨酸硫软膏中水杨酸的含量测定方法为酸碱滴定法,由于软膏基质为酸性,对水杨酸含量测定的结果有影响,导致结果易偏高。本实验建立一种HPLC法,用于三种制剂中水杨酸的含量测定,以期为有效控制制剂质量提供参考。
1 仪器与试药
Agilent 1200型高效液相色谱仪(包括1200系列四元泵、在线脱气机、自动进样器、柱温箱、VWD检测器和化学工作站,美国Agilent公司);UV-2550型紫外分光光度计(日本岛津公司)。
水杨酸对照品(中国食品药品检定研究院,批号100106-201104);甲醇为色谱纯、磷酸二氢钠为分析纯。水杨酸软膏(本院自制,规格:20 g,批号20130415、20130416、20130417);水杨酸硫软膏(本院自制,规格:20 g,批号20130415、20130416、20130417);复方硫软膏(本院自制,规格:20 g,批号20130420、20130421、20130422)。
2 方法与结果
2.1 色谱条件
Diamonsil C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),流动相:甲醇- 0.1 mol·L-1磷酸二氢钠(30∶70);检测波长:231 nm;柱温:35 ℃;流速:1.0 mL·min-1;进样量:10 μL。
2.2 溶液的制备
(1)对照品溶液:取水杨酸对照品约0.030 8 g,精密称定,置100 mL量瓶中,加无水乙醇溶解并稀释至刻度,摇匀,即得对照品储备液(含水杨酸308 μg·mL-1);精密量取上述储备液5 mL,置25 mL量瓶中,加流动相稀释至刻度,摇匀,即得对照品溶液(水杨酸61.6 μg·mL-1)。
(2)供试品溶液:分别取水杨酸软膏、水杨酸硫软膏、复方硫软膏(含水杨酸均为3%)约0.5 g,精密称定,置50 mL量瓶中,加无水乙醇约30 mL,置于水浴加热振摇使溶化,放冷至室温,用无水乙醇稀释至刻度,摇匀,冰浴1 h后,精密量取上清液5 mL,置25 mL量瓶中,用流动相稀释至刻度,摇匀,经0.22 μm微孔滤膜过滤,取续滤液作为供试品溶液。
(3)阴性对照溶液:按处方比例取除水杨酸以外的其余成分,按三种制剂的制备工艺制成阴性样品,按供试品溶液制备方法制成阴性对照溶液。
2.3 系统适用性实验
取对照品溶液、供试品溶液、阴性对照溶液各10 μL,注入液相色谱仪,按“2.1”项下色谱条件测定,水杨酸的保留时间约为8 min,分离度大于2.0,理论塔板数以水杨酸峰计算大于5000。详见图1。
2.4 线性关系考察
分别精密量取对照品储备液并以流动相为溶剂稀释,得系列标准溶液,含水杨酸分别为12.32、30.80、61.60、92.40、123.20 μg·mL-1,分别取10 μL注入液相色谱仪,记录色谱图。以峰面积值为纵坐标(Y),进样量(μg·mL-1)为横坐标(X)绘制标准曲线,得回归方程:Y = 27.073 8 X – 3.250 6,r = 1.000 0。实验表明水杨酸在12.32 ~ 123.20 μg·mL-1范围内与峰面积呈良好的线性关系。
2.5 精密度实验
精密吸取对照品溶液10 μL,按“2.1”项下色谱条件测定,连续重复进样6次,记录峰面积值,水杨酸RSD为0.48%,表明仪器的精密度良好。
2.6 重复性实验
分别取水杨酸软膏(批号20130415)、水杨酸硫软膏(批号20130415)、复方硫软膏(批号20130420)适量,按供试品溶液制备方法分别制备6份供试品溶液,分别进样10 μL,水杨酸在水杨酸软膏、水杨酸硫软膏、复方硫软膏的含量及RSD(n = 6)分别为99.82%、0.34%;101.64%、0.87%;98.74%、0.41%。表明本方法重复性良好。
图1 水杨酸HPLC色谱图A – 对照品,B – 水杨酸软膏供试品,C – 水杨酸硫软膏供试品,D –复方硫软膏供试品,E – 水杨酸软膏阴性对照,F – 水杨酸硫软膏阴性对照,G – 复方硫软膏阴性对照;1 – 水杨酸Fig 1 HPLC chromatograms of the salicylic acidA – reference substance, B – salicylic acid ointment sample, C –salicylic acid and sulfur ointment sample, D – compound sulfur sublimate ointment sample, E – negative reference for salicylic acid ointment, F – negative reference for salicylic acid and sulfur ointment,G – negative reference for compound sulfur sublimate ointment; 1 –salicylic acid
2.7 稳定性实验
取上述三种制剂,按供试品溶液制备方法配制供试液,分别在0、1、3、6、9 h进样10 μL,水杨酸软膏(批号20130415)、水杨酸硫软膏(批号20130415)、复方硫软膏(批号20130420)中水杨酸的峰面积平均值、RSD分别为1 624.6、0.62%;1 633.8、0.56%;1 651.6、0.39%。
2.8 回收率实验
取水杨酸分别精密称定,按处方比例分别加入其余成分,按三种制剂的制备工艺制成样品,按供试品溶液制备方法制成样品溶液。依照“2.1”项下色谱条件测定,记录色谱图及峰面积,计算回收率。结果见表1 ~ 3。
2.9 样品含量测定
三批水杨酸软膏(批号20130415、20130416、20130417)水杨酸的标示量分别为99.82%、101.38%、100.67%。三批水杨酸硫软膏(批号20130415、20130416、20130417)水杨酸的标示量分别为101.64%、102.67%、98.45%。三批复方硫软膏(批号20130420、20130421、20130422)水杨酸的标示量分别为98.74%、97.58%、101.09%。
表1 水杨酸软膏回收率实验测定结果Tab 1 Recovery test of salicylic acid ointment
表2 水杨酸硫软膏回收率实验测定结果Tab 2 Recovery test of salicylic acid and sulfur ointment
表3 复方硫软膏回收率实验测定结果Tab 3 Recovery test of compound sulfur sublimate ointment
3 讨论
3.1 水杨酸含量测定方法的选择
水杨酸的含量测定方法主要有中和法[2-3]、紫外分光光度法[4-5]等。由于软膏基质为酸性,因此中和法测定软膏中水杨酸对于结果的影响为含量偏高。由于软膏基质中羊毛脂有紫外吸收,用紫外分光光度法直接测定水杨酸的含量,影响结果的准确性。参考文献[6-8]以高效液相色谱法测定复方制剂中的水杨酸,以甲醇-水(40∶60)、甲醇-冰醋酸(45∶55)、甲醇-0.1 mol·L-1磷酸二氢钠(52∶48)、(30∶70)分别作为流动相进行比较,甲醇- 0.1 mol·L-1磷酸二氢钠(30∶70)为流动相,柱温35 ℃[9],检测波长为231 nm,峰形较好,杂质峰无干扰,灵敏度高。
3.2 样品中水杨酸提取方法的选择
提取软膏中的水杨酸,以甲醇、乙醇分别作为溶剂,水杨酸在乙醇中溶解性好,提取完全,溶剂对人体和环境的污染少。常温时软膏黏度较大,取样后转移至容量瓶中难度较大。经实验发现80 ℃的乙醇可将基质软化,提高基质流动性,样品转移完全。使用乙醇提取后,冰浴1 h使辅料沉淀,滤过后加入流动相稀释,混匀后再用0.22 μm微孔滤膜滤过后进样,以减小供试品对色谱柱的损害。
3.3 取样量的计算
以上三种制剂中水杨酸的含量按3%计算,取样量均为0.5 g。在《中国人民解放军医疗机构制剂规范》[1]中三种制剂有不同的规格,如水杨酸软膏尚有高于和低于此规格的情况,可根据不同的规格进行折算取样量。
结果表明,本方法操作简便,准确性高,重复性好,用同一种方法可解决上述三种制剂中水杨酸的含量测定问题。