桑黄菌丝多糖的提取及多糖成分分析

许谦

摘要：以桑黄（Phellinus igniarius）菌丝体为材料，探索热水提取法提取桑黄菌丝体多糖的工艺，并分析桑黄多糖的主要组成成分。试验在100 ℃的恒温下，以多糖提取率为考察目标，分别对提取料液比（m/V，g：mL）和提取时间进行考察，利用硅胶薄层分析的方法，对桑黄多糖的成分做初步测定。热水提取的最优工艺为在水提温度为100 ℃条件下，料液比1∶45、浸提时间3.5 h，此时桑黄粗多糖提取率为3.99%；桑黄菌丝体多糖的单糖组成初步确定有D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖。

关键词：桑黄（Phellinus igniarius）；热水提取法；多糖；正交试验

中图分类号：S646.9；TQ464.1 文献标识码：A 文章编号：0439-8114（2014）18-4405-03

桑黄（Phellinus igniarius）是一种珍贵的药用真菌，主要寄生在桑树、杨树等树干上。目前，关于桑黄的文献报道主要集中在多糖提取、抗癌机理及分子结构研究等。现代医学研究表明，一些桑黄子实体的提取物具有明显的抗癌作用，对小鼠肉瘤S180的抑制率为96.7%，对小鼠艾氏癌的抑制率为87%[1]。药理学研究表明，三萜、多糖和黄酮类物质是其活性成分，其中以多糖为主[2，3]，在实际多糖产出中，菌丝体粗多糖含量是子实体的22.48倍[4]。有体外细胞试验表明，蛋白多糖与粗多糖对肿瘤细胞EC109和SiHa的抑制率没有明显差异[5]。

目前，常用的桑黄多糖的提取方法有热水提取法[6]和超声波辅助提取法[7]，这两种方法时间长，但操作简单。欧阳小丽等[8]研究了微波法提取茶薪菇菌丝体多糖的最佳工艺，无论在节能、高效还是在试验操作方面，微波法都是最适的工艺，但是微波法有其局限性，即不适于大批量的工业生产。本试验采用常用的热水提取法提取桑黄菌丝多糖，优化最佳提取工艺，从而提高桑黄菌丝多糖得率，以期对工业发酵生产起到一定的指导作用。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

材料：桑黄菌丝体；D-葡萄糖，D-木糖，D-半乳糖，L-阿拉伯糖，L-鼠李糖，D-乳糖；硅胶G薄层板。

Sevage试剂：三氯甲烷∶正丁醇=4∶1。

展开剂：正丁醇∶甲醇∶氯仿∶冰醋酸∶水=12.5∶4.5∶5.0∶1.5∶1.5。

葡萄糖标准溶液：精密称取105 ℃下干燥恒重的分析纯葡萄糖0.058 2 g，置于小烧杯中，加去离子水溶解并转移至1 000 mL 容量瓶中，摇匀，配制成浓度为0.058 2 mg/mL葡萄糖标准溶液。

蒽酮-硫酸试剂：精密称取蒽酮200 mg于100 mL容量瓶中，用80%浓硫酸缓慢定容至刻度，边加边搅拌，摇匀，直至蒽酮完全溶解，此时溶液呈黄色透明状。将得到的蒽酮-硫酸试剂放于棕色瓶中置于阴凉处密封保存（当日配制使用）。

显色剂：二苯胺1 g，苯胺1 mL，85%磷酸5 mL混合溶解于50 mL丙酮溶液中。

仪器：恒温水浴锅；离心机；真空干燥箱；层析缸。

1.2 试验方法

1.2.1 桑黄菌丝体干粉的制备 取适量（6 g）桑黄菌丝体，用去离子水洗净，置50 ℃烘箱中干燥12 h，取出后充分研磨成粉，然后用100目筛过滤，备用。

1.2.2 试验设计 以多糖提取率为考察目标，在100 ℃的恒温下，分别对提取料液比（m/V，g：mL，下同）和时间进行考察，每个条件下取桑黄菌丝体干粉0.2 g，按照2个因素3个水平共有9种设计方案进行桑黄菌丝体多糖的提取，按相应的提取料液比加入去离子水，于相应温度下提取相应的时间；提取液经3 500 r/min离心15 min，取上清液进行粗多糖的制备。

1.2.3 醇沉法得粗多糖[9] 采用乙醇等有机试剂作沉淀剂，通过降低多糖溶液的介电常数和溶解度，使多糖从溶液中沉淀出来。精确量取一定体积的多糖溶液，与3倍体积的95%的乙醇混匀，4 ℃下沉淀过夜，3 500 r/min离心15 min，收集沉淀，干燥得桑黄粗多糖。

1.2.4 sevage法脱蛋白 取桑黄粗多糖溶于热水（10 mL）中，按多糖溶液体积加入0.2倍sevage试剂 ，混合后剧烈震荡30 min，静置1 h，3 500 r/min离心20 min，取上清液后再加入0.2倍sevage试剂，重复此操作2次，至有机层无沉淀为止。收集上清液，从上清液中取1 mL用于多糖含量测定，剩余上清液用4倍体积无水乙醇4 ℃沉淀多糖，次日3 500 r/min离心15 min，收集沉淀，并依次用丙酮、无水乙醇、乙醚洗涤，常规干燥得脱蛋白多糖，用于多糖成分的分析。

1.2.5 蒽酮-硫酸法测定多糖含量[10]

1）多糖得率测定。多糖得率=多糖质量/桑黄菌丝体干粉质量×100%

2）标准曲线的制作及粗多糖吸光度的测定。准确移取浓度为0.058 2 mg/mL 葡萄糖标准溶液0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9 mL置于具塞试管中，以去离子补足至1 mL，加入蒽酮-硫酸试剂4 mL，加塞，立即摇匀。迅速浸于冰水浴中冷却，各管加完后置于100 ℃水浴中显色10 min，管口加塞，以防水分蒸发。取出，冰浴速冷至室温，以去离子水为空白，于620 nm波长处测吸光度。以标准葡萄糖含量（mg/mL）为纵坐标，以吸光度（A）为横坐标，绘制标准曲线。

取“1.2.4”中上清液1 mL稀释8倍，再从中精确量取1 mL于试管中，加入蒽酮试剂4 mL，立即摇匀。迅速冷却后于100 ℃水浴中显色10 min。取出，冰浴速冷至室温，于620 nm波长处测定其吸光度。代入回归方程求出多糖溶液中多糖含量。

1.2.6 桑黄菌丝体多糖成分分析 运用薄层色谱法分析多糖组成成分[11]。

1）精确称取脱蛋白多糖10 mg，10 mg样品中加入5 mL 1 mol/L硫酸，密封试管100 ℃下水解4 h，水解液冷却后加入足量碳酸钡中和，4 500 r/min下离心10 min后收集上清液，沉淀以5 mL 50%乙醇洗涤后再离心，合并上清液。上清液于40 ℃下真空干燥，残渣溶于1 mL去离子水中备用。

同样，精确称定D-葡萄糖3 mg、D-木糖3 mg、 D-半乳糖3 mg、L-阿拉伯糖3 mg、L-鼠李糖3 mg、D-乳糖3 mg各溶于2 mL去离子水中制成对照糖溶液。

2）薄层色谱层析。①硅胶G薄层板。试验前取一块硅胶G板于110 ℃烘箱中活化1 h，取出后即可使用，亦可贮于干燥器中备用。薄层表面要求平整，厚薄均匀。②点样。选取制备好的薄板一块，在距1.5 cm底边的直线上选7个点，各点间距2 cm，用调至1 μL的移液枪于各点处分别点上不同的糖样品，样点直径尽量不超过2 mm，前次样点干后才能再次复点，重复3次。③展开。以体积比12.5∶4.5∶5.0∶1.5∶1.5的正丁醇∶甲醇∶氯仿∶冰醋酸∶水为展开剂倒入直径为15 cm的培养皿，将培养皿放入层析缸，待薄层板上样品点自然干燥后，将薄板置于盛有层析溶剂的层折缸中的培养皿中，自下向上展层，当展层溶剂到达离薄板顶端约3 cm 处时取出薄板，前沿作一记号，用吹风机将其吹干。④显色。待薄板吹干后，均匀地喷上一层苯胺-二苯胺溶液显色剂，于85 ℃下显色至斑点清晰，则各糖分别显出各自的颜色。

2 结果与分析

2.1 标准曲线的绘制

以吸光度为横坐标，葡萄糖含量为纵坐标，绘制标准曲线，结果见图1。由图1可以看出，在葡萄糖含量为0.000～0.100 mg/mL 的范围内，葡萄糖含量与吸光度线性关系良好。经线性回归标准曲线方程为Y=0.106 0A+0.000 2，R2=0.999。

2.2 各种方案试验结果

2因素3水平共有9中试验方案，9种试验方案结果见表2。从表2可以看出，在水提温度为100 ℃的条件下，料液比1∶45，提取时间3.5 h，此时多糖提取率为3.99%，而在料液比为1∶55，提取时间为4.0 h的提取率最小为0.61%。

2.3 薄层色谱结果

选择展开剂体积比为12.5∶4.5∶5.0∶1.5∶1.5的正丁醇∶甲醇∶氯仿∶冰醋酸∶水薄层图谱见图2。由图2可以得出，点样线到溶剂前沿的距离为11.5 cm，且已知公式Rf=点样线到斑点中心的距离/点样线到溶剂前沿的距离，则各糖对应的Rf值如下表3。综合考虑可得出桑黄粗多糖的单糖组成接近为D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖。因薄层色谱影响因素较多，如展开剂、显色剂的选择，显色时，显色剂量的控制等，所以单糖种类确定、精确的单糖组成和含量需进一步运用其他技术进行分析，如气相色谱等。

3 小结与讨论

药用真菌近年来越来越被人们所重视，如桑黄具有极高的药用价值，其中以多糖为主。由于其具有多种功效，因此对多糖的研究已成为医药食品界的热门领域。

由于蒽酮-硫酸法几乎可以测定溶液中所有碳水化合物的含量，所以用该法测出的碳水化合物含量，实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物的总量[11-13]。因此，蒽酮-硫酸法测定结果略高于苯酚-硫酸法，所测结果更为合理准确。

本试验考察了料液比、提取时间2个因素分别对多糖提取率的影响，结合其他考察因素得出最佳的提取条件为：在水提温度为100 ℃的前提下，料液比1∶45，提取时间3.5 h，多糖提取率最高可达3.99%。这个桑黄多糖提取率高于游庆红等[6]的桑黄多糖提取率1.133%、尹秀莲等[13]的桑黄多糖提取率1.46%及秦俊哲等[11]的桑黄子实体多糖提取率3.43%。这个试验用一种比较简单的方法获得了较高的多糖提取率，对于桑黄多糖的工业化提取具有重要的指导意义。

运用薄层色谱法初步确定桑黄菌丝体多糖的单糖组成为D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖，这与秦俊哲等[11]测定的桑黄子实体多糖的单糖组成为鼠李糖、阿拉伯糖、葡萄糖、甘露糖和半乳糖，日本桑黄子实体多糖的单糖组成为鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、葡萄糖、甘露糖和半乳糖具有较大差别，产生不同的原因有品种的原因，也可能因为菌丝体与子实体原材料不同所造成。

参考文献：

[1] IKEKAWA T， NAKANISHI M， VEHARA N， et al. Antitumor action of some basidiomycetes， especially Phellinus linteus[J]. Gann， 1986，59（9）：155-157.

[2] 吕英华，王建芳，李玉平，等.药用真菌桑黄的研究进展[J].蚕业科学，2009，35（1）：204-210.

[3] SASAKI T，FULII K，SUGURA M，et al. Antitumor polysaccharides from some polyporaceae. Ganderma applanatum（Pers.） Pat and Phellinus linteus Teng[J]. Chem Pharm Bull， 1971， 19（10）：821-826.

[4] 王英辉，许泓瑜，敖宗华，等.桑黄发酵菌粉与桑黄子实体成分分析比较[J].食品与发酵工业，2008，34（2）：126-129.

[5] 梁大勇，黄 芳，赵 晨，等.桑黄粗多糖除蛋白及抗肿瘤活性[J].生物加工过程，2012，10（3）：56-60.

[6] 游庆红，尹秀莲.响应面法优化桑黄多糖提取工艺研究[J].中国酿造，2010（5）：67-69.

[7] 逯家辉，董 媛，张益波，等.响应面法优化桑黄菌丝体多糖超声波提取工艺的研究[J].林产化学与工业，2009，29（2）：63-68.

[8] 欧阳小丽，张晓昱，王宏勋，等.茶薪菇菌丝体多糖提取方法的研究[J].中国食用菌，2004，23（5）：35-37.

[9] KIM G Y，PARK H S，NAM B H.Purification and characterization of acidic proteo-heteroglycan from the fruiting body of Phellinus linteus （Berk. & M.A. Curtis） Teng[J].Bioresource Technology， 2003，89（1）：81-86.

[10] 刘晓涵，陈永刚，林 励，等.蒽酮-硫酸法与苯酚-硫酸法测定枸杞中多糖含量的比较[J].食品科技，2009，34（4）：270-272.

[11] 秦俊哲，刘 华.桑黄子实体多糖工艺及单糖组成研究[J].中国食用菌，2008，27（6）：43-45.

[12] 庄楚强，何春雄.应用数理统计基础[M].第三版.广州：华南理工大学出版社，2009.

[13] 尹秀莲，游庆红.超声辅助复合酶法提取桑黄多糖[J].食品与机械，2011（4）：58-60.

1.2.6 桑黄菌丝体多糖成分分析 运用薄层色谱法分析多糖组成成分[11]。

1）精确称取脱蛋白多糖10 mg，10 mg样品中加入5 mL 1 mol/L硫酸，密封试管100 ℃下水解4 h，水解液冷却后加入足量碳酸钡中和，4 500 r/min下离心10 min后收集上清液，沉淀以5 mL 50%乙醇洗涤后再离心，合并上清液。上清液于40 ℃下真空干燥，残渣溶于1 mL去离子水中备用。

同样，精确称定D-葡萄糖3 mg、D-木糖3 mg、 D-半乳糖3 mg、L-阿拉伯糖3 mg、L-鼠李糖3 mg、D-乳糖3 mg各溶于2 mL去离子水中制成对照糖溶液。

2）薄层色谱层析。①硅胶G薄层板。试验前取一块硅胶G板于110 ℃烘箱中活化1 h，取出后即可使用，亦可贮于干燥器中备用。薄层表面要求平整，厚薄均匀。②点样。选取制备好的薄板一块，在距1.5 cm底边的直线上选7个点，各点间距2 cm，用调至1 μL的移液枪于各点处分别点上不同的糖样品，样点直径尽量不超过2 mm，前次样点干后才能再次复点，重复3次。③展开。以体积比12.5∶4.5∶5.0∶1.5∶1.5的正丁醇∶甲醇∶氯仿∶冰醋酸∶水为展开剂倒入直径为15 cm的培养皿，将培养皿放入层析缸，待薄层板上样品点自然干燥后，将薄板置于盛有层析溶剂的层折缸中的培养皿中，自下向上展层，当展层溶剂到达离薄板顶端约3 cm 处时取出薄板，前沿作一记号，用吹风机将其吹干。④显色。待薄板吹干后，均匀地喷上一层苯胺-二苯胺溶液显色剂，于85 ℃下显色至斑点清晰，则各糖分别显出各自的颜色。

2 结果与分析

2.1 标准曲线的绘制

以吸光度为横坐标，葡萄糖含量为纵坐标，绘制标准曲线，结果见图1。由图1可以看出，在葡萄糖含量为0.000～0.100 mg/mL 的范围内，葡萄糖含量与吸光度线性关系良好。经线性回归标准曲线方程为Y=0.106 0A+0.000 2，R2=0.999。

2.2 各种方案试验结果

2因素3水平共有9中试验方案，9种试验方案结果见表2。从表2可以看出，在水提温度为100 ℃的条件下，料液比1∶45，提取时间3.5 h，此时多糖提取率为3.99%，而在料液比为1∶55，提取时间为4.0 h的提取率最小为0.61%。

2.3 薄层色谱结果

选择展开剂体积比为12.5∶4.5∶5.0∶1.5∶1.5的正丁醇∶甲醇∶氯仿∶冰醋酸∶水薄层图谱见图2。由图2可以得出，点样线到溶剂前沿的距离为11.5 cm，且已知公式Rf=点样线到斑点中心的距离/点样线到溶剂前沿的距离，则各糖对应的Rf值如下表3。综合考虑可得出桑黄粗多糖的单糖组成接近为D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖。因薄层色谱影响因素较多，如展开剂、显色剂的选择，显色时，显色剂量的控制等，所以单糖种类确定、精确的单糖组成和含量需进一步运用其他技术进行分析，如气相色谱等。

3 小结与讨论

药用真菌近年来越来越被人们所重视，如桑黄具有极高的药用价值，其中以多糖为主。由于其具有多种功效，因此对多糖的研究已成为医药食品界的热门领域。

由于蒽酮-硫酸法几乎可以测定溶液中所有碳水化合物的含量，所以用该法测出的碳水化合物含量，实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物的总量[11-13]。因此，蒽酮-硫酸法测定结果略高于苯酚-硫酸法，所测结果更为合理准确。

本试验考察了料液比、提取时间2个因素分别对多糖提取率的影响，结合其他考察因素得出最佳的提取条件为：在水提温度为100 ℃的前提下，料液比1∶45，提取时间3.5 h，多糖提取率最高可达3.99%。这个桑黄多糖提取率高于游庆红等[6]的桑黄多糖提取率1.133%、尹秀莲等[13]的桑黄多糖提取率1.46%及秦俊哲等[11]的桑黄子实体多糖提取率3.43%。这个试验用一种比较简单的方法获得了较高的多糖提取率，对于桑黄多糖的工业化提取具有重要的指导意义。

运用薄层色谱法初步确定桑黄菌丝体多糖的单糖组成为D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖，这与秦俊哲等[11]测定的桑黄子实体多糖的单糖组成为鼠李糖、阿拉伯糖、葡萄糖、甘露糖和半乳糖，日本桑黄子实体多糖的单糖组成为鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、葡萄糖、甘露糖和半乳糖具有较大差别，产生不同的原因有品种的原因，也可能因为菌丝体与子实体原材料不同所造成。

参考文献：

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[4] 王英辉，许泓瑜，敖宗华，等.桑黄发酵菌粉与桑黄子实体成分分析比较[J].食品与发酵工业，2008，34（2）：126-129.

[5] 梁大勇，黄 芳，赵 晨，等.桑黄粗多糖除蛋白及抗肿瘤活性[J].生物加工过程，2012，10（3）：56-60.

[6] 游庆红，尹秀莲.响应面法优化桑黄多糖提取工艺研究[J].中国酿造，2010（5）：67-69.

[7] 逯家辉，董 媛，张益波，等.响应面法优化桑黄菌丝体多糖超声波提取工艺的研究[J].林产化学与工业，2009，29（2）：63-68.

[8] 欧阳小丽，张晓昱，王宏勋，等.茶薪菇菌丝体多糖提取方法的研究[J].中国食用菌，2004，23（5）：35-37.

[9] KIM G Y，PARK H S，NAM B H.Purification and characterization of acidic proteo-heteroglycan from the fruiting body of Phellinus linteus （Berk. & M.A. Curtis） Teng[J].Bioresource Technology， 2003，89（1）：81-86.

[10] 刘晓涵，陈永刚，林 励，等.蒽酮-硫酸法与苯酚-硫酸法测定枸杞中多糖含量的比较[J].食品科技，2009，34（4）：270-272.

[11] 秦俊哲，刘 华.桑黄子实体多糖工艺及单糖组成研究[J].中国食用菌，2008，27（6）：43-45.

[12] 庄楚强，何春雄.应用数理统计基础[M].第三版.广州：华南理工大学出版社，2009.

[13] 尹秀莲，游庆红.超声辅助复合酶法提取桑黄多糖[J].食品与机械，2011（4）：58-60.

1.2.6 桑黄菌丝体多糖成分分析 运用薄层色谱法分析多糖组成成分[11]。

1）精确称取脱蛋白多糖10 mg，10 mg样品中加入5 mL 1 mol/L硫酸，密封试管100 ℃下水解4 h，水解液冷却后加入足量碳酸钡中和，4 500 r/min下离心10 min后收集上清液，沉淀以5 mL 50%乙醇洗涤后再离心，合并上清液。上清液于40 ℃下真空干燥，残渣溶于1 mL去离子水中备用。

同样，精确称定D-葡萄糖3 mg、D-木糖3 mg、 D-半乳糖3 mg、L-阿拉伯糖3 mg、L-鼠李糖3 mg、D-乳糖3 mg各溶于2 mL去离子水中制成对照糖溶液。

2）薄层色谱层析。①硅胶G薄层板。试验前取一块硅胶G板于110 ℃烘箱中活化1 h，取出后即可使用，亦可贮于干燥器中备用。薄层表面要求平整，厚薄均匀。②点样。选取制备好的薄板一块，在距1.5 cm底边的直线上选7个点，各点间距2 cm，用调至1 μL的移液枪于各点处分别点上不同的糖样品，样点直径尽量不超过2 mm，前次样点干后才能再次复点，重复3次。③展开。以体积比12.5∶4.5∶5.0∶1.5∶1.5的正丁醇∶甲醇∶氯仿∶冰醋酸∶水为展开剂倒入直径为15 cm的培养皿，将培养皿放入层析缸，待薄层板上样品点自然干燥后，将薄板置于盛有层析溶剂的层折缸中的培养皿中，自下向上展层，当展层溶剂到达离薄板顶端约3 cm 处时取出薄板，前沿作一记号，用吹风机将其吹干。④显色。待薄板吹干后，均匀地喷上一层苯胺-二苯胺溶液显色剂，于85 ℃下显色至斑点清晰，则各糖分别显出各自的颜色。

2 结果与分析

2.1 标准曲线的绘制

以吸光度为横坐标，葡萄糖含量为纵坐标，绘制标准曲线，结果见图1。由图1可以看出，在葡萄糖含量为0.000～0.100 mg/mL 的范围内，葡萄糖含量与吸光度线性关系良好。经线性回归标准曲线方程为Y=0.106 0A+0.000 2，R2=0.999。

2.2 各种方案试验结果

2因素3水平共有9中试验方案，9种试验方案结果见表2。从表2可以看出，在水提温度为100 ℃的条件下，料液比1∶45，提取时间3.5 h，此时多糖提取率为3.99%，而在料液比为1∶55，提取时间为4.0 h的提取率最小为0.61%。

2.3 薄层色谱结果

选择展开剂体积比为12.5∶4.5∶5.0∶1.5∶1.5的正丁醇∶甲醇∶氯仿∶冰醋酸∶水薄层图谱见图2。由图2可以得出，点样线到溶剂前沿的距离为11.5 cm，且已知公式Rf=点样线到斑点中心的距离/点样线到溶剂前沿的距离，则各糖对应的Rf值如下表3。综合考虑可得出桑黄粗多糖的单糖组成接近为D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖。因薄层色谱影响因素较多，如展开剂、显色剂的选择，显色时，显色剂量的控制等，所以单糖种类确定、精确的单糖组成和含量需进一步运用其他技术进行分析，如气相色谱等。

3 小结与讨论

药用真菌近年来越来越被人们所重视，如桑黄具有极高的药用价值，其中以多糖为主。由于其具有多种功效，因此对多糖的研究已成为医药食品界的热门领域。

由于蒽酮-硫酸法几乎可以测定溶液中所有碳水化合物的含量，所以用该法测出的碳水化合物含量，实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物的总量[11-13]。因此，蒽酮-硫酸法测定结果略高于苯酚-硫酸法，所测结果更为合理准确。

本试验考察了料液比、提取时间2个因素分别对多糖提取率的影响，结合其他考察因素得出最佳的提取条件为：在水提温度为100 ℃的前提下，料液比1∶45，提取时间3.5 h，多糖提取率最高可达3.99%。这个桑黄多糖提取率高于游庆红等[6]的桑黄多糖提取率1.133%、尹秀莲等[13]的桑黄多糖提取率1.46%及秦俊哲等[11]的桑黄子实体多糖提取率3.43%。这个试验用一种比较简单的方法获得了较高的多糖提取率，对于桑黄多糖的工业化提取具有重要的指导意义。

运用薄层色谱法初步确定桑黄菌丝体多糖的单糖组成为D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖，这与秦俊哲等[11]测定的桑黄子实体多糖的单糖组成为鼠李糖、阿拉伯糖、葡萄糖、甘露糖和半乳糖，日本桑黄子实体多糖的单糖组成为鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、葡萄糖、甘露糖和半乳糖具有较大差别，产生不同的原因有品种的原因，也可能因为菌丝体与子实体原材料不同所造成。

参考文献：

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