阴沟肠杆菌对抗菌药物耐药性分析

吴妮莉 李学晋 李坤

阴沟肠杆菌对抗菌药物耐药性分析

吴妮莉 李学晋 李坤

目的 了解阴沟肠杆菌的耐药现状, 指导临床合理用药。方法 采用K-B纸片扩散法对临床感染病例标本中分离出的56株阴沟肠杆菌进行10种抗生素药敏试验。结果 阴沟肠杆菌对青霉素、氨苄西林、头孢唑啉、氯霉素及哌拉西林的耐药率分别为76.8%、75.0%、67.9%、66.1%和62.5%,对头孢哌酮的耐药率最低(7.1%), 敏感性达87.5%。结论 头孢哌酮是治疗阴沟肠杆菌感染较为理想的药物。

阴沟肠杆菌；药敏试验；耐药率

近年来抗生素滥用现象在临床普遍存在, 阴沟肠杆菌这一条件致病菌的感染率呈逐年增高趋势, 同时该菌对抗生素的耐药性也逐渐增强, 从而给临床治疗带来了极大困难。为进一步了解该菌的耐药性, 作者检测了从临床标本中分离出的56株阴沟肠杆菌对10种抗生素的敏感性, 以了解其耐药情况, 并指导临床合理用药, 现总结报告如下。

1 材料和方法

1. 1 标本来源与临床资料 56株阴沟肠杆菌从新乡市第四人民医院2008年1月~2012年1月门急诊及住院患者的送检标本中分离得到, 其中, 从痰中分离21株, 咽拭子13株,脓和尿各9株, 导管液和血液各2株。56例患者中男性31例,女性25例, 年龄25岁~79岁, 平均52岁。原发病分别为慢性支气管炎25例、肺炎10例、上呼吸道感染5例、慢性胆囊炎5例、慢性尿路感染7例、肝硬化腹水4例。

1. 2 菌株鉴定 所有菌株均按《全国临床检验操作规程(第三版)》进行鉴定, 初步生化试验氧化酶阴性、葡萄糖发酵、硝酸盐还原等试验而推定为肠杆菌科细菌, 再行鸟氨酸、赖氨酸、VP等试验方法鉴定为阴沟肠杆菌。

1. 3 药敏试验 采用K-B纸片扩散法, 并接种于MH琼脂上。药敏制片购自北京天坛药物生物技术开发公司。测定阴沟肠杆菌对头孢哌酮、丁胺卡那霉素、环丙沙星、头孢他啶、庆大霉素、氯霉素、青霉素、氨苄西林、头孢唑林、哌拉西林等共计10种抗生素的敏感性。

2 结果

2. 1 耐药情况 药敏结果表明阴沟肠杆菌对多种抗生素耐药。对青霉素、氨苄西林、头孢唑啉、氯霉素及哌拉西林的耐药率分别为76.8%、75.0%、67.9%、66.1%和62.5%, 对头孢哌酮的耐药率最低(7.1%), 敏感性达87.5%(见表1)。

表1 56株阴沟杆菌对10种抗生素的药敏试验结果

2. 2 预后与转归 治疗均在严格的抗生素敏感试验的指导下进行。患者相关的症状临床指标消失或基本消失, 其中康复出院54例, 2例死亡系由于整体情况较差并发心肾功能衰竭所致。

3 讨论

阴沟肠杆菌为临床常见的条件致病菌, 正常存在于人和动物胃肠道和呼吸道, 当患者抵抗力低下或疾病状态下, 导致正常菌群失调而使人感染。

近几年来, 随着广谱抗生素、呼吸医疗器械应用等原因, 阴沟肠杆菌已逐渐成为院内感染的重要致病菌之一［1］,令抗感染治疗相当困难。本文结果提示阴沟肠杆菌对β-内酰胺类抗生素如青霉素及氨苄西林的耐药率较高, 达75%以上；对哌拉西林(氧哌嗪青霉素)和头孢唑林亦有较高的耐药性, 耐药率将近70%；对酶稳定的第三代头孢菌素, 阴沟肠杆菌也表现出较为严重的耐药性, 其中头孢噻甲羧肟的耐药率高达33.9%。目前认为, β-内酰胺酶的产生是阴沟肠杆菌对β-内酰胺类抗生素耐药的主要机制［2,3］。阴沟肠杆菌在无β-内酰胺类抗生素存在时, 只产生低水平的β-内酰胺酶, 经β-内酰胺类抗生素诱导后, 酶产生就明显增加［4］, 并进入外周间隙, 对酶不稳定的β-内酰胺类抗生素如头孢唑啉一进入间隙即被水解；对酶稳定的第三代头孢菌素进入外周间隙时, β-内酰胺酶与之牢固结合, 使药物无法与靶位的青霉素结合蛋白结合而丧失抗菌活性, 从而导致该菌对β-内酰胺类抗生素的耐药。本文结果显示, 阴沟肠杆菌对喹诺酮类、氯霉素、丁胺卡那霉素呈现较强的耐药性,说明这些药物已不宜作为该院治疗阴沟肠杆菌感染的可选药物。氨基糖甙类抗生素中, 庆大霉素的耐药率呈逐年上升的趋势。1970年, 阴沟肠杆菌株对庆大霉素敏感, 70年代中期Moellering等对分离到的3000多株肠杆菌进行研究, 发现耐庆大霉素已达10%［5］, 而本文结果提示庆大霉素的耐药率已达32.1%, 故建议临床少用庆大霉素治疗阴沟肠杆菌感染。本文资料显示, 阴沟肠杆菌对头孢哌酮的敏感性强, 对其耐药性弱(7.1%), 与王辉等［6］的研究结果相一致, 故认为头孢哌酮是治疗阴沟肠杆菌较为理想的药物。

［1］ Keller R, Pedroso MZ, Ritchmann R, et al. Occurrence of virulenceassociated properties in Enterobacter cloacae. Infect Immun, 1998,66(2):645-649.

［2］ Naumiuk L, Samet A, Dziemaszkiewicz E. Cefepime in vitro activity against derepressed extended-spectrum beta-lactamase (ESBL)-producing and non-ESBL-producing Enterobacter cloacae by a disc diffusion method. J Antimicrob Chemother, 2001, 48(2): 321-322.

［3］ 李艳,刘长庭.阴沟肠杆菌AmpC酶检测及对酶抑制剂复合制剂稳定性研究.中华医院感染学杂志, 2005, 15(1):17-19.

［4］ Burwen DR, Banerjee SN, Gaynes RP. Ceftazidime resistance among selected nosocomial gram-negative bacilli in the United States. National Nosocomial Infections Surveillance System. J Infect Dis. 1994,170(6):1622-1625.

［5］ Moellering RC Jr, Wennersten C, Kunz LJ,et al. Resistance to gentamicin, tobramycin and amikacin among clinical isolates of bacteria. Am J Med. 1977, 62(6):873-881.

［6］ 王辉,赵春江,王占伟,等. 2010年CMSS对革兰阴性杆菌耐药性监测报告.中华检验医学杂志, 2011,34 (10): 897-904.

Analysis of antibiotic resistance of enterobacter cloacae

WU Ni-li, LI Xue-jin, LI Kun.
Fourth People's Hospital of Xinxiang City, Xinxiang 453000, China

Objective In order to investigate the present drug resistance of enterobacter cloacae andprovide doctor with appropriate therapeutic protocol. Methods Susceptibility of 56 enterobacter cloacae strains isolated from clinical samples to 10 kinds of antibiotics was tested using K-B method. Results The resistant rate to penicillin, ampicillin, cefazolin, chloramphenicol and piperacillin was 76.8%, 75.0%, 67.9%, 66.1% and 62.5%, respectively. However, the level of cefoperazone resistance was low (7.1%), while 87.5% of enterobacter cloacae strains were susceptible.Conclusion Cefoperazone is the optimal treatment drug in the treatment of enterobacter cloacaeideal.

Enterobacter cloacae; Susceptible test; Rate of drug resistance

453000 河南省新乡市第四人民医院(吴妮莉)；河南省新乡医学院三全学院(李学晋)；河南省新乡市第一人民医院(李坤)

李坤