APP下载

淀粉样脑血管病26例尸检标本免疫组化病理研究

2014-08-15李晓秋周中和徐慧琴王耀山陈会生

解放军医药杂志 2014年4期
关键词:顶叶免疫组化淀粉

李晓秋,周中和,徐慧琴,王耀山,陈会生

淀粉样脑血管病26例尸检标本免疫组化病理研究

李晓秋,周中和,徐慧琴,王耀山,陈会生

目的探讨 β 淀粉样蛋白(Aβ1-40、Aβ1-42)、β 淀粉样蛋白前体蛋白(β-amyloid precursor protein,βAPP)以及半胱氨酸蛋白酶抑制剂C(Cystatin C,CC)在淀粉样脑血管病(cerebral amyloid angiopathy,CAA)脑组织中的表达情况。方法 采用免疫组化方法,检测26例CAA患者尸检脑组织中Aβ1-40、Aβ1-42、βAPP和CC的表达情况。结果 Aβ1-40表达广泛见于枕叶、颞叶、顶叶、额叶,Aβ1-42、βAPP表达可见于颞叶、枕叶和顶叶,CC表达仅见于1例顶叶和枕叶;Aβ1-40、Aβ1-42、βAPP染色阳性主要见于中、小血管的血管壁外层,CC染色阳性多见于血管壁外膜,均可见脑血管壁增厚,透明样变性。结论 Aβ1-40是CAA血管壁内沉积淀粉样蛋白的主要成分,在CAA发生机制中起重要作用,并为CAA治疗目标Aβ从血管的靶向清除提供指导意义。

淀粉样脑血管病;淀粉样蛋白;半胱氨酸蛋白酶抑制剂C;淀粉样蛋白前体蛋白;脑出血;尸体解剖

淀粉样脑血管病(cerebral amyloid angiopathy,CAA)是一种颅内微血管病变,以淀粉样物在软脑膜和皮层的小血管壁内沉积为主要病理特征[1-3]。CAA目前已成为老年人原发性、非外伤性、非高血压性脑出血的主要病因之一[4-5],但其病因和发病机制尚未完全阐明,比较肯定的结果认为CAA致病基因表达的蛋白分别为β淀粉样蛋白前体蛋白(βamyloid precursor protein,βAPP)和半胱氨酸蛋白酶抑制剂C(Cystatin C,CC)。已知超过10种不同的淀粉状蛋白可沉积在脑血管或脑实质[6],最常见的为β淀粉样蛋白(amyloidβ,Aβ)。CC是沉积在血管内的除Aβ外的另一种淀粉样蛋白,目前认为CC在CAA相关脑出血淀粉样蛋白充载血管上更常见,严重CC沉积是CAA血肿扩大的重要危险因子。本研究采用免疫组化的方法,研究26例CAA患者尸检脑组织的淀粉样蛋白 Aβ1-40、Aβ1-42、βAPP、CC的表达情况。

1 资料与方法

1.1 临床资料 资料来源于我科1983—2013年245例脑尸解病例,逐一经HE、刚果红染色证实,发现26例CAA,男17例,女9例;年龄45~78岁,平均66.5岁。其中脑实质出血20例,蛛网膜下腔出血2例,出血性脑梗死、基底节区梗死、椎基底动脉闭塞及硬膜下血肿各1例。26例均符合 Boston CAA相关脑出血(CAAH)的诊断标准[7],出血灶周围小血管壁刚果红染色阳性,无其他病理改变。

1.2 方法 切片脱蜡、抗原修复,染色步骤按PV-9000通用型二步法免疫组化试剂盒说明书进行,一抗分别为淀粉样蛋白 Aβ1-40、Aβ1-42、βAPP、CC 多克隆抗体(均购自Sigama公司)。PBS代替一抗作为阴性对照。

1.3 光学显微镜观察 以微小血管壁呈棕褐色为Aβ、CC蛋白染色阳性。每张切片在100倍光镜下对额叶、枕叶、颞叶、顶叶、壳核、小脑、海马4个随机视野内阳性微小血管进行观察。

2 结果

26例CAA脑组织Aβ1-40的表达广泛见于枕叶、颞叶、顶叶、额叶;Aβ1-42的表达以颞叶、顶叶、枕叶明显,额叶及其他部位染色阴性;βAPP的表达见于颞叶、枕叶、顶叶,其他部位染色阴性;CC的表达仅见于1例CAAH患者的顶叶、枕叶,其他病例、其他部位染色均为阴性。Aβ1-40、Aβ1-42、βAPP 染色阳性主要见于中、小血管的血管壁外层,CC染色阳性多见于血管壁外膜,脑血管壁增厚,透明样变性。4种蛋白在顶叶脑组织中的表达情况见图1。图1 4种蛋白在顶叶脑组织中的表达情况 A.β淀粉样蛋白1-40表达(HE×100);B.β淀粉样蛋白前体蛋白表达(HE×100);C.β淀粉样蛋白1-42表达(HE×100);D.半胱氨酸蛋白酶抑制剂C表达(HE×40)

3 讨论

Aβ是由βAPP经β-和γ-分泌酶的蛋白水解作用而产生的包含39~43个氨基酸的多肽[8]。因酶切断部位不同,Aβ的C末端可出现长度不同的2种分子,即 Aβ1-40、Aβ1-42[9]。Aβ 凝集性高,以 β 折叠构造重合而形成纤维性凝集体,即β淀粉样蛋白,是散发性、年龄相关性CAA和阿尔茨海默病(alzheimer disease,AD)相关性CAA以及AD老年斑中淀粉样蛋白的主要组分。虽然Aβ1-40和Aβ1-42只有2个氨基酸的差异,但两者的生化特性显著不同,Aβ1-40为相对伸展的构象:无规卷曲,而Aβ1-42主要以比较紧密的构象:α2螺旋和β2片层构象存在。离体实验证实Aβ1-42较Aβ1-40有更高的纤维形成能力,而 Aβ1-40更容易聚集[10]。Aβ1-42 在淀粉样斑块的形成早期起重要作用,但是如果没有Aβ1-40的继续聚集,Aβ1-42本身无法形成成熟的、有毒性的斑块[11]。Aβ在脑脊液中通常稳定在800 ng/L左右,正常情况下Aβ从脑中的产生率和清除率分别为每小时7.6%和8.3%,清除量超过其产生量[12]。脑清除Aβ的机制包括:①血管途径:Aβ与载脂蛋白E(apolipoprotein E,ApoE)、α2M等蛋白结合后,通过血脑屏障低密度脂蛋白受体相关蛋白介导进入血液循环系统,维持脑中Aβ代谢平衡。绝大多数Aβ是经血脑屏障途径转运出脑。②胶质细胞途径:小胶质细胞和星形胶质细胞均可以吞噬Aβ。③酶解途径:目前至少有6种特殊的金属肽酶参与Aβ的生理降解,包括胰岛素降解酶(IDE)、肾胰岛素残基溶酶(NEP)、内皮素转化酶-1和2、金属基质蛋白酶-2和9、血管紧张素转化酶等[13]。这些酶能将Aβ降解为无毒性的小片段[14]。在基因敲除(敲除包括NEP在内的许多蛋白酶)小鼠实验中可观察到小鼠脑内源性Aβ增加。高表达NEP和IDE的小鼠模型脑内观察到Aβ水平下降和Aβ斑形成减少。Aβ在脑内沉积包括在脑实质沉积和沿小动脉沉积,前者包括弥散性斑块(周围无或有轻微的神经病理损伤)和致密的纤维状斑块(常伴有神经元营养障碍、炎症和神经元纤维缠结)。Aβ在细胞外沉积,即沿脑皮质和软脑膜的小和中等动脉以及脑微血管系统沉积,称为CAA[15]。弥散性斑块是在AD和Down's综合征患者脑中最早可见到的Aβ沉积[16],大多数发生在神经细胞周围,有时呈大片“云状”,形成机制不清,可能缘于Aβ的自发性聚集,免疫组化研究表明斑块主要由N末端缩短的非纤维化Aβ1-42组成。弥散性斑块“成熟”后成为致密核斑块。近来研究表明,弥散性和致密核斑块在发生和生物化学方面均有不同,致密核斑块通常包括神经元营养障碍和炎症,因此又被称为“神经炎性”或“经典性”斑块[17]。致密核斑块含有较高的Aβ1-40,与血管壁内沉积的β淀粉样蛋白在成分和组织化学方面有相似性[18-19]。但也有研究表明,在大鼠海马内注射Aβ1-40可模拟AD患者的部分病理表现[20]。免疫组化研究表明,神经细胞内Aβ1-42沉积是AD患者和转基因APP小鼠Aβ沉积的最初形式,即可出现在细胞外斑块之前,也可在无细胞外斑块存在时出现。而且,细胞内Aβ与细胞外的Aβ池保持平衡,随疾病进展Aβ可从神经细胞内转移到细胞外(包括血管壁)[21-22]。

Obici等[23]研究发现导致严重CAA和致命性颅内出血的Aβ变异,即Aβ选择性在血管壁沉积,未见Aβ在脑实质沉积和神经元纤维缠结,其进一步遗传分析发现1个新的Aβ变异,βAPP的外显子17序列测定显示密码子705的第1个核苷酸从G到C易位。这一替换导致Aβ第34个残基上的亮氨酸被缬氨酸替换,因此显示出独特的神经病理学特性:Aβ选择性定位于血管壁内,所有切片均未见营养障碍性神经炎或神经元纤维缠结,所有患者均未携带与严重CAA相关的ε2等位基因。刚果红染色后在偏振光显微镜下可观察到特征性脑膜、大脑、小脑皮质、小和中等大小动脉壁中Aβ沉积的苹果绿双折光,并可见到严重CAA的病理特征,如“管内管”结构和继发的出血,以及继发性微血管变性的证据,如小动脉透明变性、微动脉瘤等。应用抗Aβ抗体进行免疫染色,提示Aβ1-40和Aβ1-42均存在。

小鼠转基因CAA模型为我们了解脑血管淀粉样变Aβ1-40和Aβ1-42的沉积提供了线索,转移试验证实Aβ具有潜在的从产生部位向外弥散的能力[24]。在单纯分泌 Aβ1-42的小鼠模型(如伦敦APP小鼠或BRI-Aβ42小鼠)上观察到神经元衍生的不可溶性 Aβ1-42肽被运输并沉积在血管壁上[25]。基于转基因小鼠模型(如APP23和Tg2576)的研究显示,血管淀粉样变是自发性脑出血(脑微量出血和致命性脑叶出血)的主要原因,且Aβ在血管壁沉积可导致血管壁平滑肌细胞和其他血管壁成分变性,另外,非淀粉样变血管也可见到超微结构的微血管功能异常,如内皮细胞丧失,基膜增厚和血管壁平滑肌细胞变性[26]。细胞转化生长因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)转基因小鼠实验结果显示,当毛细血管基膜增厚时,加速了 CAA形成[27],提示基膜增厚可能是CAA发展的促进因素。

Aβ1-40是Tg2576和PSAPP小鼠脑中观察到的主要的Aβ肽,研究表明,Aβ1-40在CAA和致密核斑块形成中起重要作用,Aβ1-40急剧减少可引起CAA和致密核斑块形成大量减少,如APP T7141变异奥地利系谱中观察到的,Aβ1-40体外减少约80%,脑内几乎未见到Aβ1-40,同时未见到CAA和致密核斑块[28]。有研究表明,Aβ1-42 不仅对于Aβ1-40在脑实质沉积是必需的,而且对于Aβ1-40在血管内沉积也是必需的[25]。

本研究结果显示,Aβ1-40、Aβ1-42和 βAPP表达广泛见于枕叶、颞叶、顶叶、额叶脑膜及皮层,染色阳性主要见于中小血管的血管壁外层,同时可见脑实质和脑膜血管扩张,血管壁增厚,透明样变性。由此推测,Aβ1-40是CAA血管壁内可沉积的淀粉样蛋白的主要成分,在CAA发生机制中起重要作用,Aβ1-42、βAPP也可能参与了CAA的发生。

CC是冰岛型遗传性淀粉样变脑出血(HCHWAI)中沉积在血管壁内的除Aβ外的另一种淀粉样蛋白,由120个氨基酸残基组成,相对分子质量为13 260,在脑脊液中的含量是血浆中的5.5倍[29-30]。免疫组化研究发现,CAA脑出血患者脑内淀粉样沉积物中CC常与Aβ共存,也可以在无脑出血患者的淀粉样变微血管壁中找到,而且CC沉积继发于Aβ沉积。与无脑出血的CAA患者相比,CC在CAA相关脑出血(CAA-related hemorrhage,CAAH)患者淀粉样蛋白充载血管上更常见,但其作用并不清楚,可能在脑出血的发生发展中起一定作用[31]。

目前利用Aβ和CC的单克隆抗体定位CAA已成为诊断CAA相对敏感的方法[32]。CAA患者均可显示Aβ免疫活性,且Aβ和CC的协同定位有助于诊断CAA相关出血。散发性CAA血管壁除有Aβ沉积外,有时也可有CC沉积,但不表现为纤维状结构;冰岛型CAA只有CC免疫活性而无Aβ反应。有研究显示,严重CC沉积是CAA血肿增大的重要危险因子,并且在淀粉样物质沉积血管壁内可见到平滑肌细胞的丧失[33]。本研究结果显示,CC的表达仅见于1例多灶性大量脑出血,且染色阳性多位于血管壁外膜。提示CC的表达在国人散发性CAA中阳性率较低,也可能只见于CAA的亚型。

[1] Rannikmae K,Samarasekera N,Martînez Gonzalez N A,et al.Genetics of cerebral amyloid angiopathy:systematic review andmeta-analysis[J].JNeurol Neurosurg Psychiatry,2013,84(8):901-908.

[2] Yamada M.Brain hemorrhages in cerebral amyloid angiopathy[J].Semin Thromb Hemost,2013,39(8):955-962.

[3] Gahr M,Nowak D A,Connemann B J,et al.Cerebral amyloid angiopathy-an update[J].Fortschr Neurol Psychiatr,2012,80(11):618-626.

[4] 唐亚娟,赵继宗,李永,等.自发性脑出血与淀粉样脑血管病相关性研究[J].中华医学杂志,2010,90(15):1016-1019.

[5] Viswanathan A,Greenberg SM.Cerebral amyloid angiopa-thy in the elderly[J].Ann Neurol,2011,70(6):871-880.

[6] Revesz T,Holton JL,Lashley T,etal.Sporadic and familial cerebral amyloid angiopathies[J].Brain Pathol,2002,12(3):343-357.

[7] Knudsen K A,Rosand J,Karluk D,et al.Clinical diagnosis of cerebral amyloid angiopathy:validation of the Boston criteria[J].Neurology,2001,56(4):537-539.

[8] 王芳,周爱民.β淀粉样蛋白的研究进展[J].医学综述,2012,18(20):3377-3379.

[9] Grinberg L T,Korczyn A D,Heinsen H.Cerebral amyloid angiopathy impact on endothelium[J].Exp Gerontol,2012,47(11):838-842.

[10]郑嵋戈,阮志刚,刘靖,等.β-淀粉样蛋白的代谢机制[J].神经解剖学杂志,2011,27(3):344-348.

[11] Mutsuga M,Chambers JK,Uchida K,et al.Binding of curcumin to senile plaques and cerebral amyloid angiopathy in the aged brain of various animals and to neurofibrillary tangles in Alzheimer's brain[J].J Vet Med Sci,2012,74(1):51-57.

[12] Bateman R J,Munsell L Y,Morris JC,et al.Human amyloid-beta synthesis and clearance rates asmeasured in cerebrospinal fluid in vivo[J].Nat Med,2006,12(7):856-861.

[13] Saido T C,Iwata N.Metabolism of amyloid beta peptide and pathogenesis of Alzheimer's disease.Towards presymptomatic diagnosis,prevention and therapy[J].Neurosci Res,2006,54(4):235-253.

[14] Blomqvist M E,Chalmers K,Andreasen N,et al.Sequence variants of IDE are associated with the extent of beta-amyloid deposition in the Alzheimer's disease brain[J].Neurobiol Aging,2005,26(6):795-802.

[15]吕建平,骆锦标,曹志恺,等.脑淀粉样血管病脑出血患者血清抗Aβ抗体检测及临床治疗[J].解剖学研究,2013,35(1):32-35.

[16] Lemere C A,Blusztajn J K,Yamaguchi H,et al.Sequence of deposition of heterogeneous amyloid beta-peptides and APOE in Down syndrome:implications for initial events in amyloid plaque formation[J].Neurobiol Dis,1996,3(1):16-32.

[17] Gravina S A,Ho L,Eckman C B,et al.Amyloid beta protein(A beta)in Alzheimer's disease brain.Biochemical and immunocytochemical analysis with antibodies specific for forms ending at A beta 40 or A beta 42(43)[J].JBiol Chem,1995,270(13):7013-7016.

[18]Salvarani C,Hunder G G,Morris JM,et al.Aβ-related angiitis:comparison with CAA without inflammation and primary CNS vasculitis[J].Neurology,2013,81(18):1596-1603.

[19] Kumar Singh S.Cerebral amyloid angiopathy:pathogenetic mechanisms and link to dense amyloid plaques[J].Genes Brain Behav,2008,7(Suppl1):s67-s82.

[20]李艳伟,赵晋英,周泽江,等.海马注射β淀粉样蛋白1-40对大鼠脑铁含量及膜铁转运蛋白表达的影响[J].广东医学,2013,34(11):1669-1672.

[21] Wirths O,Multhaup G,Bayer TA.Amodified beta-amyloid hypothesis:intraneuronal accumulation of the betaamyloid peptide-the first step of a fatal cascade[J].J Neurochem,2004,91(3):513-520.

[22]LaFerla FM,Green K N,Oddo S.Intracellular amyloidbeta in Alzheimer's disease[J].Nat Rev Neurosci,2007,8(7):499-509.

[23]Obici L,Demarchi A,de Rosa G,et al.A novel AbetaPPmutation exclusively associated with cerebral amyloid angiopathy[J].Ann Neurol,2005,58(4):639-640.

[24]Meyer Luehmann M,Stalde M,Herzig M C,etal.Extracellular amyloid formation and associated pathology in neural grafts[J].Nat Neurosci,2003,6:370-377.

[25] McGowan E,Pickford F,Kim J,etal.Abeta42 is essential for parenchymal and vascular amyloid deposition in mice[J].Neuron,2005,47(2):191-199.

[26] Kumar Singh S,PiriciD,McGowan E,etal.Dense-core plaques in Tg2576 and PSAPP mouse models of Alzheimer's disease are centered on vesselwalls[J].Am J Pathol,2005,167(2):527-543.

[27]Wyss Coray T,Lin C,Sanan D A,et al.Chronic overproduction of transforming growth factor-beta1 by astrocytes promotes Alzheimer's disease-likemicrovascular degeneration in transgenicmice[J].Am JPathol,2000,156(1):139-150.

[28]Kumar Singh S,De Jonghe C,Cruts M,et al.Behavioral Nonfibrillar diffuse amyloid deposition due to a gamma(42)-secretase site mutation points to an essential role for Ntruncated a beta(42)in Alheimer's disease[J].Hum Mol Gener,2000,9:2589-2598.

[29]孙邵军,王纪敏,陈双峰.胱蛋白酶抑制剂C的研究进展[J].中国误诊学杂志,2007,7(8):1687-1689.

[30]林健雯,方燕南,黄如训.淀粉样脑血管病与脑出血[J].国外医学脑血管疾病分册,1999,7(2):97-99.

[31] McCarron M O,Nicoll JA.Cerebral amyloid angiopathy and thrombolysis-related intracerebral haemorrhage[J].Lancet Neurol,2004,3(8):484-492.

[32] Ishihara T,Takahashi M,Yokota T,et al.The significance of cerebrovascular amyloid in the aetiology of superficial(lobar)cerebral haemorrhage and its incidence in the elderly population[J].JPathol,1991,165(3):229-234.

[33] Rosand J,Muzikansky A,Kugmar A,et al.Spatial clustering of hemorrhages in probable cerebral amyloid angiopathy[J].Ann Neurol,2008,58:459-462.

Immunohistochem ical Study of 26 Autopsy Cases of Cerebral Amyloid Angiopathy

LIXiao-qiu,ZHOU Zhong-he,XU Hui-qin,WANG Yao-shan,CHEN Hui-sheng(Department of Neurology,General Hospital of Shenyang Military Area Command,Shenyang 110840,China)

ObjectiveTo evaluate the expressions of Aβ1-40,Aβ1-42,β-amyloid precursor protein(βAPP)and Cystatin C(CC)in the brain issues of cerebral amyloid angiopathy(CAA).MethodsExpressions of Aβ1-40,Aβ1-42,βAPP and CC in the brain samples of26 autopsy cases of CAA were detected by immunohistochemicalmethod.ResultsThe Aβ1-40 expression in vessel wallwidely existed in occipital,temporal,parietal and frontal lobes,expressions of Aβ1-42 and βAPPexisted in temporal,occipital and parietal lobes,and CC expression existed in parietal and occipital lobes of one case;positive stainings of Aβ1-40,Aβ1-42 and βAPPweremainly existed in themedium-sized and small-sized vascular outer layer of vesselwalls,positive staining of CCmainly existed in the outermembrane of the vessel walls.At the same time,thickening and hyaloid degeneration of cerebral vesselwallwere also found.ConclusionAβ1-40 is themain component of amyloid-laden vesselwalls,and it has important implications for the pathogenesis of CAA,whichmay provide therapy guidance for targeting Aβto be cleared from blood vessels.

Cerebral amyloid angiopathy;Amyloid;Cystatin C;Amyloid precursor protein;Cerebral hemorrhage;Autopsy

R743.9

A

2095-140X(2014)04-0020-04

10.3969/j.issn.2095-140X.2014.04.006

辽宁省博士启动基金(20121088)

110840沈阳,沈阳军区总医院神经内科

陈会生,E-mail:chszh@aliyun.com

2013-11-18 修回时间:2013-12-27)

·论著·

猜你喜欢

顶叶免疫组化淀粉
从人工合成淀粉说开去
夏枯草水提液对实验性自身免疫性甲状腺炎的治疗作用及机制研究
婴幼儿原始黏液样间叶性肿瘤一例及文献复习
MRI测量中国汉族不同性别正常人顶叶体积
结直肠癌组织中SOX9与RUNX1表达及其临床意义
脑双侧顶叶多发异常强化信号的MRI影像学特征分析
MMT/淀粉-g-PAA的制备及其对铬(Ⅵ)的吸附
蕉藕淀粉与薯类淀粉特性对比研究
子宫瘢痕妊娠的病理免疫组化特点分析
去雄携带顶叶对玉米生长及产量的影响