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基于量子点的赭曲霉毒素A sFLISA检测技术研究

2014-07-18房保海等

山东农业科学 2014年4期

房保海等

摘 要:

建立了基于量子点标记技术的赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OTA)双抗夹心荧光免疫检测(sandwich fluorescence-linked immunosorbent assay,sFLISA)体系,包含多克隆包被抗体、生物素标记的多克隆检测抗体、量子点标记的链霉亲和素等,获得了sFLISA的最佳操作参数:包被抗体浓度2.5 μg/mL,检测抗体稀释500倍,量子点标记链霉亲和素稀释100倍。该方法在OTA浓度3.125~125 μg/L之间时,相对荧光强度和OTA浓度呈线性关系,回归方程为y=0.0206x+0.2018,R2=0.9924;加标回收率在90.1%~110.0%之间,变异系数均小于10%,能较好地进行赭曲霉毒素A的定量检测。

关键词:赭曲霉毒素A(OTA);量子点;双抗夹心荧光免疫检测(sFLISA)

中图分类号:R155.5+1 文献标识号:A 文章编号:1001-4942(2014)04-0102-04

赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OTA)是曲霉属和青霉属的某些菌种产生的次级代谢有毒产物,属烈性的肝脏和肾脏毒素,并具有致癌、致畸和致突变性[1~3]。OTA广泛存在于各种食物中,花生、谷物及其副产品是OTA 的主要来源,此外,在可可、咖啡、肉类、乳汁、干果、调味品、酒类中也存在OTA。这类毒素包括7种结构类似的化合物,其中毒性最大、对农作物污染最严重、分布最广泛的是OTA,OTA被证实有致癌、致畸、致突变的作用,还具有免疫抑制性,国际癌症研究机构LARC将OTA定位为2B类致癌物(即可能引起人类癌症的物质)[2,4] 。

OTA的产毒菌株广泛地存在于自然界中,在谷类和人血清等样品中都检出过OTA残留,严重危害人类的健康。由于OTA的危害性,各国都立法对食品中OTA的残留进行限定,至今已有多个国家制定了食品(1~50 μg/kg)和动物饲料(100~1 000 μg/kg)的OTA限量标准。及时进行检测和分析是预防和控制OTA危害的有效手段[5~7]。

量子点(Quantum dots,QDs) ,又称无机半导体纳米晶体,是一类由Ⅱ~Ⅵ 族( 如CdSe、CdTe、CdS、ZnSe 等) 或Ⅲ~Ⅴ 族( 如InP、InAs 等) 元素组成的纳米颗粒,是近年发展起来的一种新型荧光纳米材料。与传统有机荧光染料相比,具有很多优良的荧光性能,吸收光谱宽、发射光谱窄而对称,斯托克斯位移(Stokes shift) 大及较高的荧光稳定性和较长的衰减寿命[8~11]。现在,量子点是最重要的纳米材料之一,经常被用作生物标记及成像过程中的光学探针。

本研究利用多克隆抗体的强富集能力以及生物素-亲和素系统的放大作用,以量子点标记的链霉亲和素为荧光探针,巧妙设计了一种灵敏度高、特异性强的赭曲霉毒素A的双抗夹心荧光免疫捡测(sFLISA)技术,为赭曲霉毒素A在食品安全等应用领域提供技术基础和参考依据。

1 材料与方法

1.1 试剂和材料

赭曲霉毒素A(中检维康,50 μg/mL,1 mL);兔抗赭曲霉毒素A多克隆抗体(Global Biotech,250 μg/mL);鼠抗赭曲霉毒素A抗体(生物素标记,Covalab,1 mg/mL);量子点标记的链霉亲和素-605(QS605,武汉珈源量子点技术开发有限公司);96孔酶标板(Thermofisher NUNC,黑色底透)。

1.2 主要仪器设备

多功能荧光酶标仪(SpectraMax M5);6930型冷冻离心机(日本KUBOTA公司);MS3涡流旋转振荡仪(德国IKA公司);Eppendorf移液枪(0~200、0~1 000 μL);冰箱[冷藏温度(4±1)℃];恒温培养箱[(37±1)℃]。

1.3 sFLISA方法步骤

1.3.1 抗体包被 用pH 9.6的0.05 mol/L碳酸盐缓冲液将兔抗赭曲霉毒素A多克隆抗体稀释成浓度为2.5 μg/L包被酶标板,每孔100 μL。42℃孵育5 h,倒去包被液,用PBST洗3次,3 min/次,甩干。其中一孔不加包被抗体而加包被缓冲液,作为试剂空白。

1.3.2 封闭 用1× BSA-PBS溶液封闭板上的空白位点,每孔200 μL,37℃孵育1 h,倒去封闭液,用PBST洗3次,3 min/次,甩干。

1.3.3 加待检样品 除试剂空白及另留1排孔作为阴性对照外,其余各孔加待测样品或倍比稀释的标准品各100 μL,阴性对照孔加100 μL的1× BSA-PBS,37 ℃孵育1 h,用PBST洗3次,3 min/次,甩干。

1.3.4 加生物素化抗体 除试剂空白孔外,其余各孔加生物素化抗体100 μL,37℃孵育1 h,用PBST洗4次,3 min/次,甩干。

1.3.5 加量子点标记的链霉亲和素 所有各孔加100 μL用TBS缓冲液适当稀释的量子点标记链霉亲和素,37℃孵育10 min,用洗涤液PBST洗4次,3 min/次,甩干。

1.3.6 荧光检测 在多功能荧光酶标仪(SpectraMax M5)上390 nm激发波长,605 nm发射波长,选择底读模式,测量相对荧光强度(RFU,relative fluorescence units),减去试剂空白孔相对荧光强度,得到测量值。

1.4 检测限和重现性

在3.125~125 μg/L浓度范围内,以P/N>2.1作为判定阳性的标准,得到检测限。

选择3个OTA浓度(6.25、25和50 μg/L),每个浓度反复测定4次,计算相对标准偏差。

1.5 方法的特异性分析endprint

在sFLISA 最佳工作条件下,分别检测50 μg/L的黄曲霉毒素B1、BSA样品,检测抗体与被测物质的交叉反应程度。

1.6 加标回收

不含OTA的1 g花生粉中加入不同量的OTA标准品(6.25、25、50 μg/L),密封,室温过夜。次日按每管1 800 μL加入甲醇溶液(含0.01%乙酸)萃取1 h,10 000×g离心10 min后取上清液,加入等体积的PBS稀释,取100 μL按照1.3进行sFLISA测定,根据建立的标准曲线,推导出浓度值,计算添加回收率。

添加回收率(%)= 实测OTA含量/添加OTA含量×100

2 结果与分析

2.1 兔抗赭曲霉毒素A多克隆抗体包被浓度的优化

分别用浓度为0.5、1.25、2.5、5、10、20 mg/L的兔抗赭曲霉毒素A多克隆抗体包被酶标板,加入50 μg/L OTA标准品、1∶200稀释的鼠抗赭曲霉毒素A多克隆抗体(生物素标记)及1∶100稀释的量子点标记的链霉亲和素,同等条件下进行sFLISA,根据相对荧光强度值的变化选择适合的包被浓度。结果(图1)显示,0.5~2.5 mg/L时相对荧光强度值呈递增趋势,>2.5 mg/L后则趋于饱和,故本试验确定兔抗OTA多克隆抗体最适包被浓度为2.5 mg/L。

图1 兔抗赭曲霉毒素A多克隆抗体包被浓度的优化

2.2 鼠抗OTA多克隆抗体(生物素标记)浓度的优化

根据确定的一抗最适包被浓度包被酶标板,加入50 μg/L的OTA标准品、不同稀释倍数的鼠抗OTA多克隆抗体(生物素标记)及1∶100稀释的量子点标记的链霉亲和素,同等条件下进行sFLISA,根据相对荧光强度值的变化选择适合的第二抗体浓度。由图2看出,相对荧光强度值在1∶500之后呈递减趋势,故本试验确定鼠抗OTA多克隆抗体(生物素标记)适宜稀释倍数为1∶500。

图2 鼠抗OTA多克隆抗体(生物素标记)浓度的优化

2.3 量子点浓度的优化选择

根据确定的一抗最适包被浓度包被酶标板,加入50 μg/L的OTA标准品、1∶500倍稀释的鼠抗OTA多克隆抗体(生物素标记)及不同稀释倍数的量子点标记的链霉亲和素,同等条件下进行sFLISA,根据相对荧光强度值的变化选择适合的量子点标记的链霉亲和素。由图3可以看出,在1∶100之后呈递减趋势,sFLISA的相对荧光强度呈递减趋势,故本试验确定使用量子点标记的链霉亲和素适宜稀释倍数为1∶100。

图3 量子点标记链霉亲和素浓度优化

2.4 OTA sFLISA标准工作曲线的建立

将OTA进行梯度稀释,在优化的实验条件下,采用以上双抗体夹心FLISA法测定OTA。当OTA的浓度在3.125~125 μg/L范围时,OTA浓度与相对荧光强度之间呈线性关系(图4a);线性回归方程为y=0.0206x+0.2018,线性相关系数R2=0.9924(图4b)。在此浓度范围内,OTA浓度可进行定量分析。

图4 OTA浓度与相对荧光强度的关系

2.5 检测限和重复性

在3.125~125 μg/L浓度范围内,以P/N>2.1作为判定阳性的标准,则OTA浓度的检测限为3.125 μg/L。

选择3个OTA浓度(6.25、25和50 μg/L),每个浓度反复测定4次。计算相对标准偏差分别为5.63%、2.77%、5.65%;回收率分别为95.9%、100.6%、109.5%(表1),具有良好的重复性。

2.6 特异性试验

采用该sFLISA法检测黄曲霉毒素B1和BSA时,测得的相对荧光强度平均值分别为0.080和0.070,与阴性值接近,且无显著性差异。表明该法检测赭曲霉毒素具有很好的特异性。

2.7 加标回收试验

通过加标回收的测定结果(表2)可知 ,建立的sFLISA 能够对3个不同浓度的OTA进行准确测定,回收率范围在90.1%~110.0%之间,相对标准偏差均小于10%。表明该方法可用于OTA的定量检测。

3 结论

近年来,食品安全问题引起了全世界的普遍关注,尤其是毒素污染问题[12]。OTA在自然界中分布广泛,是目前花生等油料作物污染较严重并且毒性最强的天然污染物之一。我国规定食品中赭曲霉毒素的含量(GB 2761-2011食品中真菌毒素限量):谷物、豆类及其制品小于5.0 μg/kg;欧盟规定胡椒中的OTA残留限量为15 μg/kg,辣椒中为30 μg/kg,小麦蛋白中为8.0 μg/kg。

本研究利用多克隆抗体的强富集能力以及生物素-亲和素系统的放大作用,以量子点标记的链霉亲和素为荧光探针,建立了一种灵敏度高、特异性强的基于量子点技术的OTA sFLISA方法,在3.125~125 μg/L范围内具有良好的线性关系,加标回收试验结果较好,回收率范围在90.1%~110.0%之间,变异系数均小于10%,能够满足我国和欧盟有关食品中OTA检测限量要求,该方法具有分析时间短、不需要酶和显色液、荧光性能稳定等优点,可为OTA在食品安全等应用领域提供技术基础和参考依据。

参 考 文 献:

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