α-Klotho蛋白在肾性继发性甲状旁腺功能亢进中的作用
2014-05-18闫军放综述审校
闫军放 综述 郝 丽,张 凌 审校
继发性甲状旁腺功能亢进(secondary hyperparathyroidism,SHPT)是慢性肾脏病-矿物质和骨代谢紊乱(chronic kidney disease-mineral and bone disorder,CKD-MBD)最常见的一种表现形式,是慢性肾脏病最常见并发症之一。早期主要表现为血清生化指标的异常,如钙、磷代谢紊乱及甲状旁腺激素(parathyroid hormone,PTH)升高,临床症状多不明显。随着病情进展,逐渐发展成持续性或难治性SHPT[1],除出现难以控制的钙磷代谢紊乱及PTH升高外,临床上还可表现为:①骨病:骨痛、骨折、急性关节周围炎、自发性肌腱断裂及肌肉软弱、肌病等;②心血管系统损伤:血管及心脏瓣膜钙化、心血管结构和功能的改变、心源性猝死等;③ 皮肤损伤:包括皮肤钙化、瘙痒、溃疡形成及组织坏死等;④钙化防御,即钙化性尿毒症动脉病变(calcific-uremicarterriolopathy,CUA);⑤ 其他如贫血、生长迟缓、失眠、不安腿综合征等[2-3]。严重病例可表现为退缩人综合征[4](shrinking man syndrome,SMS)、Sagliker综合征[5-6]。SHPT 与原有肾脏病构成恶性循环,严重影响患者的生存及预后。
SHPT发病机制目前尚未完全明确,传统观点认为其机制主要为各种原因引起的低钙、高磷刺激甲状旁腺合成并分泌PTH[7]。目前认为抗衰老蛋白α-Klotho(以区别于后来在肠道内发现的 β-Klotho,下文中Klotho即指α-Klotho)在调节钙磷代谢及SHPT发展中起着重要作用[8]。
1 Klotho蛋白简介
Klotho基因是新发现的与人类衰老相关的基因,于1997年由 Kuro-o et al[9]在研究自发型高血压时发现。人类Klotho基因定位于染色体13q12区域,全长50 kbp,由4个内含子和5个外显子组成。研究[10]表明,Klotho基因 mRNA第三外显子有一内在选择性剪切位点,50 bp片段插入该剪切位点,其RNA只表达3个外显子,从而编码可溶性Klotho蛋白(sKlotho),又称分泌型Klotho或循环型Klotho,其约549个氨基酸,存在于血液、尿液、脑脊液中,以游离形式发挥生物学效应;如果该剪切位点没有接受50 bp片段插入,其外显子全部表达而编码模型Klotho蛋白,这种模型蛋白为一次性跨膜蛋白,含有1 012个氨基酸,包括N端信号序列、胞内区、跨膜区和胞外区(含有两个重复序列 KLl、KL2)。KL1和KL2含有550个氨基酸,和β-糖苷酶同源。KL1和KL2之间含有Lys-Lys-Arg-Lys序列,此为蛋白水解酶的作用位点。如被蛋白水解酶水解,则胞外区脱落形成分泌型蛋白(缺少 KL2、跨膜区和胞内区)。目前研究[11]显示,分泌型Klotho蛋白,即循环中的Klotho蛋白有3种来源:Klotho基因直接编码;膜型Klotho蛋白水解片段脱落入血;Klotho蛋白通过与Na+/K+-ATP酶结合从内质网和高尔基体上转移至细胞膜表面,之后被水解。
2 模型Klotho蛋白在SHPT发生发展中的作用
Klotho蛋白主要在肾脏和甲状旁腺中表达。Klotho蛋白作为 FGF23需辅助受体,可以调节FGF23 4种受体(FGFR1、FGFR2、FGFR3和 FGFR4)的活性,使受体由低亲和力的特性转化为高亲和力[12],与 FGF23结合形成所谓的 FGF23-Klotho轴[13],在调节钙磷代谢、PTH生成及分泌中起着重要作用。见图1。
图1 组织与循环Klotho蛋白在甲状旁腺及肾脏作用示意图
2.1 Klotho蛋白在肾脏中的作用 Klotho蛋白在肾脏可与FGF23协同,抑制肾脏近端小管对磷的重吸收。和FGFR受体相互作用,抑制25(OH)-维生素D-1α羟化酶,减少1,25(OH)2D3(活性维生素D3)的生成,并促进其灭活,进而调节机体的钙磷代谢。在肾脏,Klotho蛋白主要表达在远端小管,且此段小管表达FGFR1,说明肾远端小管可能是FGF23的效应部位[14]。但肾脏重吸收磷的部位主要在近端肾小管,而非远端肾小管。针对这一矛盾现象,可能的解释之一是分泌型sKlotho蛋白在肾脏内或肾脏外部出现转移,当sKlotho蛋白以及FGF23到达肾脏近端小管后,与近端小管上表达的FGFR3结合,从而发挥抑制近端小管重吸收磷的作用[15]。
2.2 Klotho在甲状旁腺中的作用 Klotho蛋白在甲状旁腺中的作用更加复杂。甲状旁腺组织表达Klotho蛋白及 FGFR,目前已经证实甲状旁腺是FGF23的靶器官[16]。在甲状旁腺组织中,FGF23可在受体水平与Klotho蛋白结合作用于甲状旁腺,调节PTH的生成与分泌。体内实验及离体实验均证实,Klotho蛋白能够使FGFR由低亲和力受体转化为高亲和力受体,与FGF23结合后,发挥FGF23对甲状旁腺细胞内PTH mRNA表达及PTH分泌的抑制效应。由此可见,FGF23发挥生物学效应需要Klotho蛋白存在,Klotho蛋白与 FGF23结合形成FGF23-Klotho轴。在此通路中 Klotho蛋白作为FGF23受体活化所必须的辅助因子,是必需辅助受体,在抑制PTH生成与分泌中起着重要作用。
大量的临床研究[1,7]观察慢性肾脏病(chronic kidney disease,CKD)患者,特别是终末期 CKD患者,血清FGF23水平通常显著增高,同时伴有血清PTH的高表达,这一现象与FGF23能够降低血PTH水平的理论相悖。目前多项实验证据[17-18]证实,血清FGF23与PTH呈正相关。基于CKD患者血清FGF23水平与 PTH 呈正相关现象,Komaba et al[19]研究发现血清FGF23对PTH分泌抑制作用的减弱可能与Klotho、FGFR mRNA表达下降以及细胞增生标志物Ki67的上调有关,并认为甲状旁腺组织可能存在FGF23抵抗。同时Kumata et al[20]通过对离体后增生的甲状旁腺组织研究,也发现增生的甲状旁腺组织中Klotho、FGFR1c表达减少,钙敏感受体CaR表达亦下降,Klotho、FGFR1c与CaR表达呈正相关;同时细胞增生标志物Ki67表达亦上调。另外在结节性甲状旁腺组织Klotho蛋白及FGFR1c表达较弥漫性增生的甲状旁腺上的表达显著减少,此种现象说明随着SHPT病情进展,甲状旁腺腺体发生组织学改变,其组织中Klotho蛋白及FGFR1c表达逐渐减少。于是笔者认为增生的甲状旁腺Klotho及FGFR1c表达下降可能为FGF23抵抗的原因之一。针对甲状旁腺组织Klotho及FGFR与血清参数(如血清钙、磷、PTH等)之间的关系,因研究纳入的SHPT病例比较少(n=12),且多个甲状旁腺腺体可能来自同一病例,不能确定所选的甲状旁腺腺体是否能够真实反应该病例,故在该研究中无法进行分析。
在甲状旁腺组织,Klotho蛋白不仅能通过与FGF23结合形成FGF23-Klotho轴发挥抑制PTH合成及分泌的作用,还可不依赖于FGF23,直接调节PTH合成、分泌。其机制是Klotho蛋白通过与甲状旁腺组织中Na+/K+-ATP酶的α1-亚单位分子间的相互作用,直接作用于Na+/K+-ATP酶,进而促进PTH合成及分泌[21]。然而CKD患者SHPT却不断进展,“甲状旁腺内存在阴-阳状态”这种假设或许能够解释这种现象[15]:在阴的状态时,虽然FGF23-FGFR途径对PTH分泌有抑制作用,但Klotho-Na+/K+-ATP酶途径完全激活,反而加强了PTH的分泌;相反在阳的状态时,由于Klotho蛋白下降,FGF23-FGFR途径抑制PTH分泌的作用不能完全发挥,导致PTH分泌增加,而Klotho-Na+/K+-ATP酶途径活性的下降不能抵消前者引起的PTH的增加,最终引起高水平的PTH。这种假设的基础是机体对PTH的合成及分泌有不断地刺激,而反调解机制仅部分有效。
3 sKlotho蛋白在SHPT中的作用
sKlotho蛋白以旁分泌和自分泌的形式发挥生物学效应[22]。
3.1 sKlotho作为激素作用于全身多个组织、器官
sKlotho蛋白作为一种激素,其靶目标为多种组织、器官,可发挥抗衰老、抑制细胞凋亡、心血管保护、调节血压、减少氧化应激以及避免肾脏纤维化等作用[23]。sKlotho蛋白减少,可诱发或加重心血管钙化等,进一步加重SHPT对患者的影响。
3.2 sKlotho以旁分泌形式发挥生理学效应 研究[24]显示Klotho蛋白具有 β-葡糖醛酸酶活性,其能通过旁分泌形式调解瞬时受体电位香草酸亚型1(TRPV5)和K+通道ROMK。TRPV5是肾脏远曲小管上皮细胞膜上的钙离子通道,是肾脏重吸收钙的部位。研究[25]表明,重组Klotho蛋白能够增强人胚肾细胞(HEK293)钙内流以及细胞表面TRPV5的表达。其能够水解TRPV5 N-寡聚糖链末端的唾液酸,末端唾液酸使半乳素1与TRPV5结合,结果使TRPV5的内化减少,TRPV5在上皮细胞膜表面的潴留增加。因此,Klotho蛋白的存在使肾脏对钙离子重吸收增加,以维持正常水平的血钙浓度。如前所述,在肾脏,Klotho蛋白可以与FGF23在肾脏近端小管与FGFR3相互作用,抑制肾脏对磷的重吸收。另外,sKlotho还可不依赖于FGF23,直接作用于肾近端小管刷状缘膜钠磷共转运体2a型(NaPi-2a)以及肠内NaPi-2b转运体,使两者表达及活性受到抑制,从而限制体内磷的重吸收,避免高磷血症的发生[26-27]。而对于 CKD 特别是尿毒症患者,由于DNA转甲基酶表达增加,DNA甲基化,导致CKD患者Klotho蛋白表达量较健康人群明显下降[28],且随着CKD 进展Klotho渐减少[29-30]。减少的Klotho蛋白对钙重吸收以及抑制磷重吸收作用均明显减弱,导致低钙、高磷血症,最终引起SHPT的发生与发展。
4 小结
随着对Klotho蛋白研究的不断深入,其在肾性SHPT发生发展中的作用正被逐渐认识。目前已知Klotho蛋白能够以模型Klotho以及分泌型sKlotho形式,通过FGF23依赖以及非FGF23依赖的途径,调节钙磷代谢以及PTH合成及分泌,其与SHPT之间的关系正被不断地阐明。尽管如此,但仍有诸多问题,如Klotho蛋白、FGFR1c与甲状旁腺细胞增生及PTH合成、分泌之间确切的关系,以及SHPT中Klotho基因表达的调控机制、Klotho蛋白具体的传导信号等,目前尚不完全清楚,需要更进一步的研究。
[1]Nakanishi S,Kazama J J,Nii-Kono T,et al.Serum fibroblast factor-23 levels predict the future refractory hyperparathyroidism in dialysis patients[J].Kidney Int,2005,67(3):1171 -8.
[2]Lishmanov A,Dorairajan S,Pak Y,et al.Elevated serum parathyroid hormone is a cardiovascular risk factor in moderate chronic kidney disease[J].Int Urol Nephrol,2012,44(2):541 -7.
[3]Van Ballegooijen A J,Reinders I,Visser M,et al.Parathyroid hormone and cardiovascular disease events:A systematic review and meta-analysis of prospective studies[J].Am Heart J,2013,165(5):655-64.
[4]Horensten M L,Boner G,Rosenfeld J B.The shrinking man:A manifestation of severe renal osteodystrophy[J].JAMA,1980,244(3):267-8.
[5]Sagliker Y,Balal M,Sagliker Ozkaynak P,et al.Sagliker syndrome:uglifying human face appearance in late and severe secondary hyperparathyroidism in chronic renal failure[J].Semin Nephrol,2004,24(5):449 -55.
[6]Zhang L,Yao L,Bian W J,et al.Severe uremic leontiasis ossea ameliorated by total parathyroidectomy[J].Kidney Int,2009,76(10):1118.
[7]Slatopolsky E,Dusso A,Brown A J.The role of phosphorus in the development of secondary hyperparathyroidism and parathyroid cell proliferation in chronic renal failure[J].Am J Med Sci,1999,317(6):370-6.
[8]Hu M C,Kuro-o M,Moe O W.Klotho and chronic kidney disease[J].Contrib Nephrol,2013,180:47 -63.
[9]Kuro-o M,Matsumura Y,Aizawa H,et al.Mutation of the mouse klotho gene leads to a syndrome resembling ageing[J].Nature,1997,390(6655):45-51.
[10]Imura A,Aiwano A,Tohyama O,et al.Secreted Klotho protein in sera and CSF:implication for post-translational cleavage in release of Klotho protein from cell membrane[J].FEBS Lett,2004,565(1-3):143-7.
[11]Wang Y H,Sun Z J.Current understanding of klotho[J].Ageing Ras Rev,2009,8(1):43-51.
[12]Urakawa I,Yamazaki Y,Shimada T,et al.Klotho converts canonical FGF receptor into a specific receptor for FGF23[J].Nature,2006,444(7120):770-4.
[13]Koizumi M,Komaba H,Fukagawa M.Parathyroid function in chronic kidney disease:role of FGF23-Klotho axis[J].Contrib Nephrol,2013,180:110 -23.
[14]Liu S,Vierthaler L,Tang W,et al.FGFR3 and FGFR4 do not mediate renal effects of FGF23[J].J Am Soc Nephrol,2008,19(12):2342-50.
[15]Drüeke T B.Klotho,FGF23,and FGF receptors in chronic kidney disease:a yin-yang situation?[J].Kidney Int,2010,78(11):1057-60.
[16]Ben-Dov I Z,Galitzer H,Lavi-Moshayoff V,et al.The parathyroid is a target organ for FGF23 in rats[J].J Clin Invest,2007,117(12):4003-8.
[17]Isakova I,Gunerrez O M,Wolf M.A blueprint for randomized trials targeting phosphorus metabolism in chronic kidney disease[J].Kidney Int,2009,76(7):705 -16.
[18]Komaba H,Fukagawa M.FGF23-Parathyroid interaction:implications in chronic kidney disease[J].Kidney Int,2010,77(4):292-8.
[19]Komaba H,Goto S,Fujii H,et al.Depressed expression of Klotho and FGF receptor 1 in hyperplastic parathyroid glands from uremic patients[J].Kidney Int,2010,77(3):232 - 8.
[20]Kumata C,Mizobuchi M,Ogata H,et al.Involvement of Alpha-Klotho and fibroblast growth factor receptor in the development of secondary hyperparathyroidism[J].Am J Nephrol,2010,31(3):230-8.
[21]Imura A,Tsuji Y,Murata M,et al.α-klotho as a regulator of calcium homeostasis[J].Science,2007,316(5831):1615 - 8.
[22]Drüeke T B,Massy Z A.Circulating Klotho levels:clinical relevance and relationship with tissue Klotho expression[J].Kidney Int,2012,83(1):13 -5.
[23]Kuro-o M.Klotho in health and disease[J].Curr Opin Nephrol Hypertens,2012,21(4):362 -8.
[24]Huang C L.Regulation of ion channels by secreted Klotho:mechanisms and implications[J].Kidney Int,2010,77(10):855 -60.
[25]Cha S K,Ortega B,Kuresu H,et al.Removal of sialie acid involring Klotho cm.18e6 eell·sndace retention of TRPV5 channel via binding to galeetill-1[J].Proe Natl Aead Sci USA,2008,105(28):9805-10.
[26]Hu M C,Shi M,Zhang J,et al.Klotho:a novel phosphaturic substance acting as an autocrine enzyme in the renal proximal tubule[J].FASEB J,2010,24(9):3438 -50.
[27]Dermaku-Sopjani M,Sopjani M,Saxena A,et al.Downregulation of NaPi-IIa and NaPi-IIb Na-coupled phosphate transporters by coexpression of Klotho[J].Cell Physiol Biochem,2011,28(2):251-8.
[28]Sun C Y,Chang S C,Wu M S.Suppression of Klotho expression by protein-bound uremic toxins is associated with increased DNA methyltransferase expression and DNA hypermethylation[J].Kidney Int,2012,81(7):640 -50.
[29]Akimoto T,Yoshizawa H,Watanabe Y,et al.Characteristics of urinary and serum soluble Klotho protein in patients with different degrees of chronic kidney disease[J].BMC Nephrology,2012,23(13):155-63.
[30]Yokoyama K,Imura A,Ohkido I,et al.Serum soluble α-klotho in hemodialysis patients[J].Clin Nephrol,2012,77(5):347 -51.