猪瘟控制（净化）对母猪分娩率的影响

罗才庆

摘 要：目的：通过对某猪场母猪实施猪瘟控制（净化）方案，研究分析能否提高该猪场的母猪分娩率。方法：采用酶联免疫吸附试验（ELISA）对龙岩市某规模化猪场的母猪进行猪瘟抗体检测，对猪瘟抗体检测不合格（阻断率小于40%）且同时满足两条及以上淘汰标准的种猪实行淘汰以达到猪瘟控制（净化）目的，并对猪瘟控制（净化）前后配种分娩结果进行收集、统计。结果：猪瘟控制（净化）后，母猪返情、流产、空胎数量减少，分娩率明显提升。结论：猪瘟控制（净化）可以提高母猪分娩率，实行猪瘟控制（净化）对规模化猪场具有重大意义。

关键词：猪瘟；控制（净化）；分娩率

Abstract： Objective： Investigate and analyze whether the sow parturition rate could be improved by controlling （eradicating） classic swine fever in a large scale pig farm. Method： The antibodies of classic swine fever of sow were detected with Enzyme-linked immunosorbent assay （ELISA） on a large scale pig farm in Longyan city. The sows which the antibodies of classic swine fever were below standard were sifted out controlling （eradicating） classic swine fever. The data of the sow parturition rate were analyzed before controlling （eradicating） classic swine fever and after. Results： The numbers of the sows which showed returning to estrus， abortion and non-pregnancy have reduced and the sow parturition rate was improved obviously by controlling （eradicating） classic swine fever. Conclusion： Controlling （eradicating） classic swine fever can improve the sow parturition efficiency. It is of a great significance for a large scale pig farm to control （eradicate） classic swine fever.

Keywords： classic swine fever； control （eradicate）； parturition rate

猪瘟（Classical Swine Fever，CSF）是由猪瘟病毒（Classical Swine Fever Virus，CSFV）引起的猪的一种急性或慢性、热性和高度接触性传染病。猪瘟被世界动物卫生组织（OIE）列为法定的A类传染病，并规定为国际重点检疫对象[1]。它的危害程度极高，乃是当今养猪业的头号大敌，是万病之源。其可怕之处在于它是一种能够引起繁殖障碍的传染病，会影响其配种、分娩及新生仔畜的健康等。丘惠深的研究表明，猪瘟的“带毒母猪综合征”即妊娠母猪自然感染低毒力或中等毒力的猪瘟病毒后能引起潜伏性感染，病毒可通过胎盘传给胎儿，胎儿之间也可以互相感染[2]。这种母猪的垂直传播率高达45%～100%[3]，经常导致母猪流产、产木乃伊胎、死胎等，会减低母猪分娩率及新生仔畜健康度等。

目前全世界养猪国家防治猪瘟的主要办法有两种，一是扑杀，二是免疫。前者是以切断传染源的方式，后者是提高易感猪群对猪瘟的抵抗力。在我国，在同一猪场中各类猪群均可遭受猪瘟病毒感染的情况下，通过采用全场扑杀的办法来控制和根除猪瘟是不符合我国国情的，而且难于实行。实践证明，净化是当前有效控制猪瘟、消灭猪瘟的重要手段[4]。净化就是利用先进的、适宜的动物疫情检验检测手段、技术及仪器寻找发现动物疫病，确定动物疫病的存在形式、种类和数量，然后采取各种措施，主动消灭疫情于隐性或者发生前。在猪瘟污染的规模化猪场，实施以净化种猪和后备种猪为主的猪瘟综合防控措施是切实可行的，甚至可以达到事半功倍的效[5]。目前常见的猪瘟抗体检测方法主要包括病毒中和试验（VNT）、间接血凝试验（IHA）和酶联免疫吸附试验（ELISA） [6]。

本试验采用酶联免疫吸附试验（ELISA）方法，对龙岩市某规模化猪场的母猪进行猪瘟抗体检测，淘汰不合格母猪以达到猪瘟控制（净化）要求，并对猪瘟控制（净化）前后母猪配种分娩结果进行收集、统计，分析该猪场通过实施猪瘟控制（净化）后能否提高母猪分娩率。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 血清来源与数量

龙岩市某规模化猪场种猪血样共603份，按常规方法分离血清并置-20℃冰箱保存，待测。

1.1.2 疫苗

高效价猪瘟活疫苗（细胞源）。

1.1.3 试剂与仪器

猪瘟病毒抗体ELISA检测试剂盒购自北京IDEXX 生物科技有限公司，微量移液器为德国BRAND公司产品，酶标仪为美国伯乐公司产品。

1.2 方法

1.2.1 猪瘟抗体检测步骤

按照IDEXX 生物科技有限公司的试剂盒说明书操作：

（1）分别将50 μL样品稀释液加入每个检测孔和对照孔中；

（2）分别将50 μL的阳性对照和阴性对照加入到相应的对照孔中；

（3）分别将50 μL的被检样品加入到剩下的检测孔中；

（4）轻弹微量反应板或用振荡器振荡，将反应板中的溶液混匀；

（5）将微量反应板用封条封闭或于湿箱中（18～25℃）孵育2 h，也可将微量反应板用封条封闭或于湿箱中孵育过夜；

（6） 用300 μL左右的洗涤溶液洗涤每个板孔3次。在每次洗涤后，甩去每个板孔的液体，在最后一次甩掉后，在吸水材料上用力扣板，吸去剩余的液体；

（7）在每孔中加入100 μL辣根过氧化物酶标记的猪瘟病毒的酶标抗体，用封条封闭反应板并于室温下或湿箱中孵育30 min；

（8） 重复步骤（6）；

（9）每个反应孔中加入100 μL的底物溶液N.12，并于避光、室温条件下放置10 min；

（10）每个反应孔中加入100 μL的终止液液N.3终止反应；

（11）在450 nm 处测定样本以及对照的吸光度值，也可用双波长（450 nm 和620 nm）测定样本以及对照的吸光度值，空气调零；

（12）计算样本和对照的平均吸光度值。

1.2.2 判断标准

阳性对照阻断率大于40%，阴性对照平均OD450nm 大于0.5，检测结果有效；被检样本的阻断率大于或等于40%，该样本可判为猪瘟病毒抗体阳性。被检样本的阻断率小于40%，该样本可判为猪瘟抗体阴性[7]。

1.2.3 淘汰标准

对第1次猪瘟抗体检测不合格（阻断率<40%）且同时满足两条及以上淘汰标准的种猪实行淘汰。

淘汰标准为：体况差，过肥（超过4分膘）或过瘦（低于2分膘）；胎次高（8胎及以上）；连续两胎或累计三次产活仔数窝均7头以下；配种后连续两次返情、屡配不孕；连续两次或累计三次妊娠期习惯性流产；断奶后49 d不发情；发生普通病连续治疗两个疗程仍未康复。

剩余种猪中猪瘟抗体不合格的，采用肌肉注高效价猪瘟活疫苗（细胞源）2头份，4周后采血，按常规方法分离血清，用同样的方法再次检测猪瘟抗体。对第二次猪瘟抗体检测不合格的种猪实行淘汰计划。

1.2.4 后备种猪进群标准

在每次有新种猪进群前，进行猪瘟抗体检测，抗体检测合格的种猪（阻断率≥40%）才能进群。

1.2.5 数据收集

应用GPS猪场生猪管理系统对猪瘟控制（净化）前后的配种分娩结果进行收集、统计。

1.2.6 数据处理

用Microsoft Office Excel 2003软件对猪瘟控制（净化）前后分娩率进行单因素方差分析（One-Way ANOVA）。

2 结果

2.1 猪瘟抗体检测结果

2011年12月3日进行第1次猪瘟抗体检测，共检测478头，其中合格（阻断率≥40%）的有319头，不合格（阻断率<40%）的有159头，淘汰34头；2012年1月20日进行第2次猪瘟抗体检测，共检测125头，其中合格（阻断率≥40%）的有72头，不合格（阻断率<40%）的有53头，淘汰53头。2次猪瘟抗体检测结果见表1。

2.2 猪瘟控制（净化）前后分娩率的对比

从2011年12月开始实行猪瘟控制（净化）计划，历时两个月淘汰猪瘟抗体不合格的种猪。2012年2月开始的种猪群即为净化后的种猪群。2012年2月配种的母猪，分娩时间约在同年6月。2011年6至12月共种猪770头，其中分娩592头，2012年6至12月共配种761头，其中分娩636头。通过对比分娩率，并进行单因素方差分析，探讨猪瘟控制（净化）对分娩率是否有影响。由表2可知，与2011年相比，2012年6-12月的分娩率均有提高且差异极显著（P=0.002 581<0.01），说明分娩率有明显提升。猪瘟控制（净化）前后分娩率的对比结果见表2。

3 讨论

规模化养殖场稳定生产与持续发展是以种猪的健康稳定为前提，猪场猪瘟控制的好坏直接关系到整个种猪群的健康状况。当猪瘟低毒株感染妊娠母猪时，母猪本身没有临床症状，成为隐性猪瘟。种猪群携带猪瘟病毒、猪瘟抗体水平低下，会引起返情、流产、空胎、产木乃伊胎、死胎等繁殖障碍，降低母猪分娩率且影响新生仔畜的健康。在临床上，及时发现并淘汰猪瘟抗体水平不合格的种猪，是提高分娩率的有效手段之一，因此，实时进行猪瘟抗体监测尤为重要。抗体检测方法中，病毒中和试验能直接反映猪只对猪瘟病毒感染的抵抗力，中和抗体水平代表了猪群的保护力。但是，病毒中和试验操作复杂、技术含量高，不适用于临床上大规模地评估猪群的抗体水平。IHA在临床上具有快速、简便、廉价的优点，但其特异性和稳定性均不如ELISA，ELISA 能做到准确定量测定猪瘟抗体水平[6]。

在第一次抗体检测后淘汰34头母猪，原因是这些母猪的猪瘟抗体不合格且生产性能差，已没有饲养价值。第二次抗体检测后淘汰53头母猪，是由于这些母猪两次检测的猪瘟抗体均不合格。

影响分娩率的因素有很多，如精液的质量、母猪的营养因素、母猪的发病史、配种时机的掌握及管理因素等。①精液的质量：精液稀薄、无精、死精、精子畸形或活力低下等，可直接降低分娩率。②母猪的营养因素：营养物质，特别是维生素的不足或缺乏会影响胚胎着床和胎儿的发育，缺乏维生素A、维生素E 可导致胚胎死亡或被吸收。在妊娠前期如果采食饲料过多，会因代谢旺盛导致子宫壁毛细血管血流加速，不利于胚胎着床，同时肝脏性激素的代谢也随之增加，从而导致外周的性激素减少，特别是孕酮减少，使受精卵的存活率减少[8]。③母猪的发病史[9-10]：研究发现，母猪上胎次是否有生殖道感染、人工助产、返情、流产、产死胎或生殖应激等病史，均表现出对下一胎分娩率具有极其显著的影响作用；以及各种能够降低母猪的繁殖力和受胎率的疾病，如：猪瘟、细小病毒病、乙型脑炎、伪狂犬、蓝耳病、钩端螺旋体、衣原体等均会影响母猪的分娩率。④配种时机的掌握：根据母猪排卵时间及卵子、精子运行和存活时间，母猪最适宜的配种时间应是发情后24～36h，此时受胎率最高。因此，母猪最适宜的配种时间应为母猪排卵前2～3h[11]。⑤管理因素：如泌乳天数：泌乳天数少于12 d，通常会显著降低以后的分娩率，泌乳天数为14～21 d，则对分娩率的影响较轻。且泌乳期每天采食量不低于5.5 kg，则以后分娩率所受的影响较小[12]；温度和光照：母猪在高温（超过30℃）和长光照（超过16 h光照）的情况下配种，分娩率会降低[13]。

在众多因素中，猪瘟占据一个十分重要的位置。近年来，繁殖障碍型猪瘟多发，它主要发生于生产母猪.其本身呈隐性感染，并无明显的临床症状，但能通过垂直传播危害下一代，导致分娩率降低、胚胎死亡和仔猪的成活率下降[14]。

从猪瘟控制（净化）前后其分娩率的比较可以看出，猪瘟控制（净化）前后分娩率差异极显著（P=0.002 581<0.01），说明猪瘟控制（净化）后分娩率有明显提升，通过猪瘟控制（净化）可减少返情、流产、空胎的发生，提高分娩率。

在临床上猪瘟病毒低毒力毒株感染的母猪往往不表现临床症状，但该毒株可引起母猪不孕、流产等繁殖障碍，并可通过胎盘屏障使胎儿发生胎盘感染产生弱胎、死胎、木乃伊胎，有的胎儿产出后发生先天性震颤，共济失调等，对生产造成极大的损失。通过猪瘟抗体监测，可及时发现隐性感染猪瘟或猪瘟抗体低下的母猪，及时淘汰猪瘟抗体不合格的母猪实行猪瘟控制（净化），可以提高分娩率，提高猪场的规模效益。

（编辑：狄慧）

参考文献：

[1] 陈溥言. 兽医传染病学[M]. 北京： 中国农业出版社， 2006， 210.

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