扫描电镜在嵩草种子结构及发芽研究中的应用
2014-04-29张国云何晓华郭付振
张国云 何晓华 郭付振
摘要
[目的]為了描述西藏7种嵩草(喜马拉雅嵩草、大花嵩草、藏北嵩草、短轴嵩草、线叶嵩草、矮生嵩草、高山嵩草)种子的形态特征,阐明不同种子预处理方法提高其发芽率的机理。[方法]利用扫描电镜放大倍率大、分辨率高、图像直观等特点,在嵩草属牧草种子结构及种子萌发研究中引入扫描电镜,对青藏高原东部嵩草属几种嵩草种子的形态、解剖特征进行了观察, 并且对其形态特征进行初步描述。对7种嵩草种子做了不同浓度的赤霉素、PEG、硫酸、氢氧化钠化学处理,对其果皮特征进行了电镜观察。结合发芽试验,对嵩草属牧草种子萌发率低的原因及不同处理影响嵩草属植物种子萌发的机理进行了初步分析。
[结果]除喜马拉雅嵩草种子果皮最外层的表皮细胞细胞壁较薄、有裂孔外,其他都具有种子小、果皮厚、外表致密、保护组织机械性强等特征。不同种子预处理方法对果皮的影响不同。赤霉素、PEG对果皮几乎无机械破坏作用;硫酸对果皮有一定的破坏作用,但作用有限;氢氧化钠对果皮的机械破坏效果最好。
[结论]嵩草属牧草种子在试验条件下萌发率与其种子的果皮特征关系密切。嵩草属牧草种子大多果皮坚硬致密、外覆光滑且厚的角质层是其萌发率低的主要原因。一定浓度的氢氧化钠溶液处理种子能均匀去掉果皮角质层,甚至破坏果皮最外层大型厚壁细胞,增大细胞间隙,使得中间纵向致密组织变得疏松,让水分和氧气易于进入种子,从而提高发芽率。
关键词扫描电镜;形态特征;嵩草属;萌芽率
中图分类号S121文献标识码A文章编号0517-6611(2014)28-09670-04
Application of SEM in Research of Kobresia Seeds Structures and Germination
ZHANG Guoyun1,HE Xiaohua2,GUO Fuzhen2*
(1.State Key Laboratory of Crop Stress Biology in Arid Areas, Northwest A&F University, Yangling, Shaanxi 712100; 2. Key Laboratory of Plant Protection Resources and Pest Management of Ministry of Education, Entomological Museum, Northwest A&F University, Yangling, Shaanxi, 712100)
Abstract[Objective]The research aimed to describe morphological characteristics of seven kinds of K.obresia (K.royleana,K.macrantha,K.choenoides,K.prattii,K.capillifolia,K.humilis and K.pygmaea)seeds from Tibet and elucidate the mechanisms how different treatments promoted germination percentage.[Method]The structures and germination of Kobresia pasture seeds were studied with the scanning electron microscope for its characteristics of the high magnification, high resolution, and image visual. Seven kinds of Kobresia seeds from Tibet were observed with scanning electron microscope in order to analyze their morphology and anatomy characteristics. Combining the Kobresia pasture seed germination tests, the characteristic of seed peels treated with gibberellin, PEG, sulfuric acid and sodium hydroxide was observed, and the relationship between the low germination rate and the mechanisms of different treatments was preliminarily analyzed. [Result]Except for the cell wall of external seed peels of K.royleana seed was thin with some cracks,the other seeds were small and covered with thick and pykno peels and their protective tissues were very strong.The effects of different treatments on seeds peels were different. GA and PEG almost had no katogene to the peels,and the effect of the sulphuric acid wasnt that good,and the caustic soda had the best effects.[Conclusion]There was a close relationship between the germination rate and the seed skin under the laboratory conditions. It was pointed out that the main reason of the low germinated rates of Kobresia seeds might be that the seed peel was hard, compact, and covered with smooth thick cuticle. With the treatment of certain concentration of sodium hydroxide,the corneous layer of the seeds were abscised uniformly, the sclerenchymatous cells in the outer layers were destroyed, the cell spaces were also increased and even the compact tissues in the middle were loosen, which made the entrance of the water and oxygen into the seeds easily, thereby the germination capacity was improved.
Key wordsScanning electron microscope; Morphology characteristics; Kobresia; Germination percentage
嵩草属(Kobresia)植物是组成青藏高原高寒地区植被的主要物种。以该属一些植物为建群种的嵩草草甸是青藏高原主要的植被类型[1]。嵩草属牧草是多年生草本植物,草质柔软,营养丰富,为各类家畜所喜食,是青藏高原主要的优良牧草。其良好生长对发展当地经济、维持青藏高原地区的生态平衡都具有重要作用[2]。然而,由于掠夺式经营、过度放牧、鼠虫危害以及人类活动的干扰等多种原因,青藏高原草地严重退化,生产力水平不断下降,生态环境也日益恶化[3-7]。目前,对于嵩草属(Kobresia)植物资源包括嵩草属牧草种子及其繁殖特性等方面的研究日益增多[8-16]。针对嵩草属牧草种子小、不易观察等特点,借助于扫描电镜,笔者先对采自西藏的几种嵩草种子的形态特征及其解剖特征进行了观察与分析,然后对这几种嵩草种子做了不同化学试剂处理,并且对处理后种子果皮再次进行了电镜观察。结合发芽试验,初步探讨了不同处理影响嵩草属植物种子萌发的机理,并且提出了提高嵩草种子发芽率的方法,以期为西藏地区的草地植被及生态恢复、畜牧业发展提供帮助。
1材料与方法
1.1材料
2006年9月上旬,在西藏的那曲、当雄和浪卡子3个不同海拔地区采集喜马拉雅嵩草、大花嵩草、藏北嵩草、短轴嵩草、线叶嵩草、矮生嵩草和高山嵩草的种子(表1)作为供试草种。将种子带回实验室,自然风干后装入纸袋,室温贮藏。
1.2 方法
1.2.1
对供试种子形态特征、解剖特征及不同处理后种子种皮特征的电镜观察。
取上述供试种子及不同化学试剂处理后种子若干(试剂处理方法见萌发试验),在解剖镜下选取一些饱满种子,部分横切和纵切,装入洗净、贴好标签的青霉素小瓶,用浓度4%、pH 6.8的戊二醛4 ℃固定12 h;再用pH 6.8、浓度0.1 mol/L磷酸缓冲液常温漂洗5次、每次15 min;浓度30%、50%、70%、80%、90%、95%丙酮脱水1次,时间20 min;浓度100%丙酮脱水3次,每次30 min;乙酸异戊酯置换2次,每次20 min;然后,用二氧化碳臨界点干燥仪干燥;最后,粘台,喷金,用扫描电镜观察种皮、胚乳及种子纵、横断面结构。
1.2.2
萌发试验。设4种试剂处理方式,即将上述7种草种分别用0.15、0.20、0.25、0.30、0.40 g/L赤霉素溶液浸种12、24、36、48 h;体积分数15%、20%、25%、30%聚乙二醇(PEG6000)溶液浸种12、24、36、48 h;体积分数49%、98%硫酸溶液浸种3、5、10 min;10、20、30、40 g/L氢氧化钠溶液浸种0.5、1.0、2.0、3.0 h。上述处理后的种子都用自来水反复冲洗后置于4 ℃冰箱中层积1个月,以不经任何预处理的种子为对照,用2PW280B型智能植物培养箱进行发芽试验。采用培养皿内滤纸上变温发芽,每天光照8 h,温度35 ℃;黑暗16 h,温度25 ℃。每个草种每个处理取100粒种子,3次重复。逐日观察,统计发芽情况,到第28天结束试验,测定发芽率。
2结果与分析
2.17种嵩草种子形态结构特征及解剖特征
结合扫描电镜图像及肉眼观察,发现7种嵩草种子的果皮均可分为3层。果皮最外层为大型厚壁细胞,细胞腔大而明显,可储存大量气体。表面覆有角质层,厚且光滑(喜马拉雅嵩草除外,果皮最外层表皮细胞细胞壁较薄,有裂孔)。中间一层为纵向的机械组织,排列紧密。最里层为横向的基本组织。胚位于胚乳之中果柄一侧。不同嵩草种子虽具有以上共性,但也具有不同的结构特征,其种子大小和形状也有很大差别。
(1)喜马拉雅嵩草。果实长梭形,具有较长的果柄和果喙,果柄侧保护组织薄且疏松,厚度仅为17.4 μm(图1a,1c)。果皮粗糙(图1b),厚度约55 μm,最外层表皮细胞外壁有裂孔。
(2)大花嵩草。果实宽卵形,具有较长的果柄和果喙,基部(果柄)与顶部(果喙)保护组织致密层极厚,基部厚度约170 μm(图1d,1f)。果皮极光滑、致密(图1e),厚度约58 μm。
(3)藏北嵩草。果实形似葵花籽,具较长的果柄和果喙,果喙侧保护组织厚达167 μm,基部(果柄)组织疏松,厚度48 μm(图1g,1i)。果皮细胞突起、光滑(图1h),厚度约84 μm。
(4)短轴嵩草。果实长圆形,果柄76 μm,果喙180 μm,基部(果柄)组织疏松且薄,厚度25 μm(图1j,1l)。果皮细胞突起、致密(图1k),厚度约32 μm。
(5)线叶嵩草。果实卵圆形,无明显的果柄和果喙,果柄侧致密,保护组织极厚,约80 μm,果喙侧有导气孔(图1m,1o)。果皮细胞突起,极光滑、致密(图1n)。果皮厚度约63 μm。
(6)矮生嵩草。果实侧扁,形似南瓜子,果柄侧与果喙侧致密,保护组织极厚,基部致密层厚度约75 μm,顶部(果喙)有导气孔(图1p,1r)。果皮极光滑、致密(图1q),厚度约77 μm。
(7)高山嵩草。果实近三棱形,无明显果柄,果喙187 μm。果实基部与顶部(果喙)致密,保护组织极厚,约120 μm,顶部(果喙)有导气孔(图1s,1u)。果皮细胞突起,极光滑、致密(图1t),厚度约88 μm。
2.2不同药剂处理对种子表皮的作用(以藏北嵩草为例)
由图2、3可知,不同药剂处理对嵩草种子果皮的影响不同,赤霉素、PEG对果皮几乎没有机械破坏作用。由图4可知,硫酸对果皮有一定的破坏作用,使得藏北嵩草果皮最外层细胞出现一些横向裂孔;由图5可知,氢氧化钠对果皮的机械破坏效果较好,不但去掉嵩草种子角质层,而且使最外层细胞间隙加大,甚至使部分最外层大型厚壁细胞脱落。
2.37种嵩草种子的结构特征对比及不同处理的种子发芽率
由表2可知,
各嵩草种子未经任何处理试验条件下发芽率与种子大小、地理位置、海拔高度似无直接关系,与果皮厚度关系也不大,但与果皮光滑致密度、发芽口致密层厚度呈0.05水平显著负相关。赤霉素、PEG处理对嵩草种子发芽率没有大的影响,一定浓度的硫酸和氢氧化钠处理能明显提高发芽率,其中40%氢氧化钠处理效果较好,使得上述种子的发芽率分别由未经任何预处理的91%、0、76%、69%、14%、21%和0提高到96%、90%、93%、96%、74%、63%和50%。
3 结论与讨论
根据对7种嵩草种子的形态和解剖特征以及不同处理后种子种皮特征的观察与分析,结合发芽试验,认为嵩草属牧草种子试验条件下萌发率与其种子的果皮特征关系密切。嵩草属牧草种子果皮大多坚硬致密、外覆光滑且厚的角质层是其萌发率低的主要原因。坚硬致密的果皮虽有利于嵩草属种子抵御严寒和外力破坏,也使得胚和胚乳不易获得足够的水和氧气,并且阻碍胚根和胚芽穿破保護组织,限制种子的萌发。
从不同处理种子的电镜照片可以看出,赤霉素、PEG对果皮几乎没有机械破坏,对嵩草属种子的作用可能更多的是药理性的,而与对果皮的机械破坏无关。硫酸对果皮有一定的破坏作用,使得果皮最外层细胞破裂,但对破除角质层无明显作用。氢氧化钠对种皮的机械破坏效果最好。首先是去角质层,使得果皮更容易吸附水分,进一步加大细胞间隙,使细胞间变得疏松,甚至去掉了果皮最外层的大型厚壁细胞,使中间纵向致密细胞层也变得疏松,水分和氧气易于进入种子,从而提高发芽率。
研究还表明,PEG处理对上述嵩草种子发芽率没有影响;赤霉素处理对大花嵩草、藏北嵩草、短轴嵩草、线叶嵩草、矮生嵩草和高山嵩草种子的发芽率有少许提高;一定浓度的硫酸和氢氧化钠处理均能明显提高发芽率,但以40 g/L氢氧化钠的处理效果最好。
率的研究中,需要将萌发试验与不同化学试剂处理后对种子种皮的微观形态观测相结合,这样不但有利于找到提高嵩草属种子发芽率的方法,而且有利于阐述其机理。
参考文献
[1]
张树仁.西藏嵩草属(莎草科)的修订[J].植物分类学报,2004,42(3):194-221.
[2] 李巧峡,赵庆芳,马世荣,等.嵩草属植物研究进展[J].西北师范大学学报,2006,42(6):78-82.
[3] 武高林,杜国祯.青藏高原退化高寒草地生态系统恢复和可持续发展探讨[J].自然杂志,2007,29(3):159-164.
[4] 赵贯锋,余成群,武俊喜.青藏高原退化高寒草地的恢复与治理研究进展[J].贵州农业科学,2013,41(5):125-129.
[5] 王建兵,张德罡,曹广民,等.青藏高原高寒草甸退化演替的分区特征[J].草业学报,2013,22(2):1-10.
[6] 周华坤, 赵新全, 周立,等.青藏高原高寒草甸的植被退化与土壤退化特征研究[J].草业学报,2005,14(3):31-40.
[7] 贺有龙,周华坤,赵新全,等.青藏高原高寒草地的退化及其恢复[J].草业与畜牧,2008(11):1-9.
[8] 褚希彤,付娟娟,孙永芳.不同海拔梯度嵩草种子的萌发机制[J].草业科学,2013,30(7):1025-1030.
[9] 李巧峡,李凯,丁文龙, 等.不同处理对北方嵩草种子萌发的影响[J].草业科学,2009,26(8):112-117.
[10] 马玉玲.三种嵩草种子萌发技术的探讨试验[J].养殖与饲料,2009(7):62-63.
[11] 李希来.不同地区矮嵩草(Kobresia humilis)种子解剖特征和萌发特性的研究[J].种子,2002(6):12-13.
[12] 段春华,张德罡,张靖,等.物理、化学处理方法对矮生嵩草和线叶嵩草种子萌发的影响[J].草原与草坪,2013,33(1):40-44.
[13] 周芝琴,李廷山,胡小文.莎草科4种植物种子休眠与萌发特性的研究[J].西北植物学报,2013,33(9):1885-1890.
[14] 严虎,苟桂香,王得贤.几种预处理对两种贮藏期线叶嵩草萌发的影响[J].青海草业,2000,9(1):13-15.
[15] 苟桂香,赵得明.不同处理方法对三种嵩草种子发芽率影响的初探[J].青海草业,2006,15(2):21-23.
[16] 李希来.非萌发与萌发状态下两种嵩草种子解剖特征的初步研究[J].种子,2003(2):48-50.