细菌内毒素检测在ICU病区感染性疾病患者中的应用价值

王坤

[摘要] 目的 探讨细菌内毒素检测在ICU病区感染性疾病患者中的应用价值。 方法 回顾性分析16例细菌培养为G-杆菌感染患者（G-杆菌感染组）和20例细菌培养为非G-杆菌感染患者（非G-杆菌感染组）的血液内毒素检测结果。 结果 G-杆菌感染组的血液内毒素检测结果为（4.987±10.609）EU/ml，非G-杆菌感染组为（0.043±0.052）EU/ml，两组比较，差异有统计学意义（P<0.05）。 结论 在ICU病区，细菌内毒素升高与G-杆菌感染有关，对感染性患者先进行内毒素检测有利于临床早期诊断和治疗，为临床治疗提供理论依据，具有很高的临床意义。

[关键词] 细菌内毒素；细菌培养；感染性疾病；G-杆菌感染

[中图分类号] R446.11+2 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721（2014）01（b）-0125-02

内毒素（endotoxin，ET）是革兰氏阴性细菌细胞壁的主要成分，其化学成分为脂多糖（lipopolysaccharide，LPS），由类脂A、核心寡聚糖O及多肽侧链组成[1]。ET能够直接作用于人体，激活组织内的炎性细胞和炎症因子，导致机体发热并产生全身性炎症反应综合征（SIRS），继而引起弥散性血管内凝血（DIC）、休克、多脏器功能衰竭等严重的病理生理症状，危及生命，由于ET与革兰氏阴性菌关系密切，所以内毒素血症在临床非常常见。及早诊断内毒素血症有利于预测感染性疾病的性质和预后，迅速采取相应的治疗措施，减轻ET对患者生命造成的损害。ICU病区的患者都是免疫力低下的重症患者，易感染，细菌培养时间较长，故ET的检测很好地解决了这个问题，此法灵敏度高，测定范围大，通常在0.006～300 EU/ml[2]。本研究回顾性分析16例细菌培养为G-杆菌感染的患者和20例细菌培养为非G-杆菌患者的血液ET检测结果，现报告如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料

本组为2012年10月～2013年8月本院ICU病区收治的16例细菌培养为G-杆菌感染的患者（G-杆菌感染组），其中男13例，女3例，年龄47～87岁，平均71.3岁，其中阴沟肠杆菌1例、鲍曼不动杆菌5例、铜绿假单胞菌4例、克雷伯菌4例、大肠埃希菌2例；20例细菌培养为非G-杆菌感染患者（非G-杆菌感染组），其中男15例，女5例，年龄41～81岁，平均70.2岁。患者均为ICU重症患者。

1.2 方法

采用动态浊度法检测细菌ET，严格按照全国临床检验操作规程进行细菌培养。

1.2.1 标本采集 严格按照无菌操作，采集早晨空腹静脉血1 ml，加入体液处理剂Ⅰ号（1 ml）管内，加盖，混合30 s，备用；细菌培养标本采用无菌容器收集。

1.2.2 仪器与试剂 使用天津天大天发BET-24A型细菌ET测定仪检测细菌ET，试剂、标准曲线、质控液均为湛江博康海洋生物有限公司提供；细菌培养按照全国临床检验操作规程使用珠海迪尔生物工程公司提供的DL-96 E G-杆菌鉴定、药敏配套试剂和鉴定系统。

1.2.3 测定 将样本按标准化要求处理好上机检测ET：加样完毕，用封口膜封闭管口，轻轻混合3 s（不产生气泡），插入ET检测仪孔中恒温检测，观察时间为4500 s；细菌培养按照全国临床检验操作规程细菌培养。

1.3 统计学处理

数据采用 SPSS 16.0 软件进行统计分析，计量资料用均数±标准差（x±s）表示，采用t检验，计数资料采用χ2检验，以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

G-杆菌感染患者的细菌ET明显高于非G-杆菌感染患者（P<0.05）（表1）。

表1 两组细菌培养结果的比较[n（%）]

与非G-杆菌感染组比较，*P<0.05；统计时ET高于正常为阳性

3 讨论

临床上细菌感染的患者常发生内毒素血症、DIC、休克肺、心脏抑制及口腔疾病等，死亡率为20%～30%[3]。革兰氏阴性细菌败血症尤常并发内毒素血症，常见致病菌为沙门菌属、阴沟肠杆菌属及拟杆菌属，这些致病菌多通过泌尿道、肠道、胆道及呼吸道而引起感染，也可通过外伤、外科手术、导管检查或留置以及器械操作等途径进入血液，伴随杀灭细菌细胞壁破裂产生的ET也越多[4]，可引起败血症。有研究表明ET是全身炎症反应的重要触发剂，是一系列连锁反应的扳机[5]。ET是介导革兰氏阴性菌脓毒症的重要启动因子，通过其结合受体或调节蛋白的作用诱导宿主多种细胞因子的合成和释放，激发机体一系列病理、生理改变，危害相当大[6]。ET是诊断和监测革兰氏阴性菌感染的重要指标[7-8]。近年来，许多国内外报道，革兰氏阴性菌感染有逐年增加的趋势[9]，进行血浆ET测定，对疾病的鉴别诊断和ET休克的防治以及控制感染都有非常重要的意义，本研究通过观察本院ICU病区收治的16例细菌培养为G-杆菌感染的患者和20例细菌培养为非G-杆菌感染患者血液ET检测结果，结果证明了血ET在诊断和检测革兰氏阴性菌感染中的重要作用。病情凶险，需要动态检测才能及时制订治疗方案、判断预后，特别是ICU病区的患者尤其重要，时间就是生命，血ET定量测定具有省时、简便、灵敏度高等特点，使快速鉴别诊断革兰氏阴性菌感染、监测细菌感染高危患者的病情变化成为可能。相对于传统血培养的耗时、阳性率低等弊病，血ET检测值得临床推广应用。

[参考文献]

[1] 马全玲，刘扬，李传保.ET检测与临床应用现状[J].国外医学临床生物化学与检验学分册，2003，24（2）：64-65.

[2] 汪玲，王桂平.细菌ET的检测方法及其应用概况[J].中国药师，2003，6（5）：316-317.

[3] 徐修礼，刘宝瑞，张建芳，等.ET定量酶免疫分析法的建立及应用[J].第四军医大学学报，2002，23（3）：250-253.

[4] 林爱华，刘云海，林建国.抗ET药物的研究进展[J].国外医学药学分册，2001，28（1）：23.

[5] Kogut MH，He H，Kaiser P.Lipopolysaccharide binding protein/CD14/TLR4-dependent recognition of salmonella LPS induces the functional activation of Chicken heterophils and up-regulation of pro-inflammatory cytokine and chemokine gene expression in these cells[J].Anim Biotechnol，2005，16（2）：165-181.

[6] 郁峰.血清降钙素原和ET检测在小儿SIRS的意义[J].中国现代医生，2013，51（5）：62-64.

[7] Nahid AM，Sugii S.Binding of porcine ficolin-alpha to lipopolysaccharides from Gram-negative bacteria and lipoteichoic acids from Grampositive bacteria[J].Dev Comp Immunol，2006，30（3）：335-343.

[8] van Deventer SJ，Buller HR，ten Cate JW，et al.Endotoxaemia：an early predictor of septicaemia in febrile patients[J].Lancet，1988，1（8586）：605-609.

[9] 戴良成，吴昊，劳志刚，等.重症监护病房下呼吸道感染细菌的构成及耐药性分析[J].实用医学杂志，2007，23（13）：2057-2060.

（收稿日期：2013-10-31 本文编辑：许俊琴）

[摘要] 目的 探讨细菌内毒素检测在ICU病区感染性疾病患者中的应用价值。 方法 回顾性分析16例细菌培养为G-杆菌感染患者（G-杆菌感染组）和20例细菌培养为非G-杆菌感染患者（非G-杆菌感染组）的血液内毒素检测结果。 结果 G-杆菌感染组的血液内毒素检测结果为（4.987±10.609）EU/ml，非G-杆菌感染组为（0.043±0.052）EU/ml，两组比较，差异有统计学意义（P<0.05）。 结论 在ICU病区，细菌内毒素升高与G-杆菌感染有关，对感染性患者先进行内毒素检测有利于临床早期诊断和治疗，为临床治疗提供理论依据，具有很高的临床意义。

[关键词] 细菌内毒素；细菌培养；感染性疾病；G-杆菌感染

[中图分类号] R446.11+2 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721（2014）01（b）-0125-02

内毒素（endotoxin，ET）是革兰氏阴性细菌细胞壁的主要成分，其化学成分为脂多糖（lipopolysaccharide，LPS），由类脂A、核心寡聚糖O及多肽侧链组成[1]。ET能够直接作用于人体，激活组织内的炎性细胞和炎症因子，导致机体发热并产生全身性炎症反应综合征（SIRS），继而引起弥散性血管内凝血（DIC）、休克、多脏器功能衰竭等严重的病理生理症状，危及生命，由于ET与革兰氏阴性菌关系密切，所以内毒素血症在临床非常常见。及早诊断内毒素血症有利于预测感染性疾病的性质和预后，迅速采取相应的治疗措施，减轻ET对患者生命造成的损害。ICU病区的患者都是免疫力低下的重症患者，易感染，细菌培养时间较长，故ET的检测很好地解决了这个问题，此法灵敏度高，测定范围大，通常在0.006～300 EU/ml[2]。本研究回顾性分析16例细菌培养为G-杆菌感染的患者和20例细菌培养为非G-杆菌患者的血液ET检测结果，现报告如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料

本组为2012年10月～2013年8月本院ICU病区收治的16例细菌培养为G-杆菌感染的患者（G-杆菌感染组），其中男13例，女3例，年龄47～87岁，平均71.3岁，其中阴沟肠杆菌1例、鲍曼不动杆菌5例、铜绿假单胞菌4例、克雷伯菌4例、大肠埃希菌2例；20例细菌培养为非G-杆菌感染患者（非G-杆菌感染组），其中男15例，女5例，年龄41～81岁，平均70.2岁。患者均为ICU重症患者。

1.2 方法

采用动态浊度法检测细菌ET，严格按照全国临床检验操作规程进行细菌培养。

1.2.1 标本采集 严格按照无菌操作，采集早晨空腹静脉血1 ml，加入体液处理剂Ⅰ号（1 ml）管内，加盖，混合30 s，备用；细菌培养标本采用无菌容器收集。

1.2.2 仪器与试剂 使用天津天大天发BET-24A型细菌ET测定仪检测细菌ET，试剂、标准曲线、质控液均为湛江博康海洋生物有限公司提供；细菌培养按照全国临床检验操作规程使用珠海迪尔生物工程公司提供的DL-96 E G-杆菌鉴定、药敏配套试剂和鉴定系统。

1.2.3 测定 将样本按标准化要求处理好上机检测ET：加样完毕，用封口膜封闭管口，轻轻混合3 s（不产生气泡），插入ET检测仪孔中恒温检测，观察时间为4500 s；细菌培养按照全国临床检验操作规程细菌培养。

1.3 统计学处理

数据采用 SPSS 16.0 软件进行统计分析，计量资料用均数±标准差（x±s）表示，采用t检验，计数资料采用χ2检验，以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

G-杆菌感染患者的细菌ET明显高于非G-杆菌感染患者（P<0.05）（表1）。

表1 两组细菌培养结果的比较[n（%）]

与非G-杆菌感染组比较，*P<0.05；统计时ET高于正常为阳性

3 讨论

临床上细菌感染的患者常发生内毒素血症、DIC、休克肺、心脏抑制及口腔疾病等，死亡率为20%～30%[3]。革兰氏阴性细菌败血症尤常并发内毒素血症，常见致病菌为沙门菌属、阴沟肠杆菌属及拟杆菌属，这些致病菌多通过泌尿道、肠道、胆道及呼吸道而引起感染，也可通过外伤、外科手术、导管检查或留置以及器械操作等途径进入血液，伴随杀灭细菌细胞壁破裂产生的ET也越多[4]，可引起败血症。有研究表明ET是全身炎症反应的重要触发剂，是一系列连锁反应的扳机[5]。ET是介导革兰氏阴性菌脓毒症的重要启动因子，通过其结合受体或调节蛋白的作用诱导宿主多种细胞因子的合成和释放，激发机体一系列病理、生理改变，危害相当大[6]。ET是诊断和监测革兰氏阴性菌感染的重要指标[7-8]。近年来，许多国内外报道，革兰氏阴性菌感染有逐年增加的趋势[9]，进行血浆ET测定，对疾病的鉴别诊断和ET休克的防治以及控制感染都有非常重要的意义，本研究通过观察本院ICU病区收治的16例细菌培养为G-杆菌感染的患者和20例细菌培养为非G-杆菌感染患者血液ET检测结果，结果证明了血ET在诊断和检测革兰氏阴性菌感染中的重要作用。病情凶险，需要动态检测才能及时制订治疗方案、判断预后，特别是ICU病区的患者尤其重要，时间就是生命，血ET定量测定具有省时、简便、灵敏度高等特点，使快速鉴别诊断革兰氏阴性菌感染、监测细菌感染高危患者的病情变化成为可能。相对于传统血培养的耗时、阳性率低等弊病，血ET检测值得临床推广应用。

[参考文献]

[1] 马全玲，刘扬，李传保.ET检测与临床应用现状[J].国外医学临床生物化学与检验学分册，2003，24（2）：64-65.

[2] 汪玲，王桂平.细菌ET的检测方法及其应用概况[J].中国药师，2003，6（5）：316-317.

[3] 徐修礼，刘宝瑞，张建芳，等.ET定量酶免疫分析法的建立及应用[J].第四军医大学学报，2002，23（3）：250-253.

[4] 林爱华，刘云海，林建国.抗ET药物的研究进展[J].国外医学药学分册，2001，28（1）：23.

[5] Kogut MH，He H，Kaiser P.Lipopolysaccharide binding protein/CD14/TLR4-dependent recognition of salmonella LPS induces the functional activation of Chicken heterophils and up-regulation of pro-inflammatory cytokine and chemokine gene expression in these cells[J].Anim Biotechnol，2005，16（2）：165-181.

[6] 郁峰.血清降钙素原和ET检测在小儿SIRS的意义[J].中国现代医生，2013，51（5）：62-64.

[7] Nahid AM，Sugii S.Binding of porcine ficolin-alpha to lipopolysaccharides from Gram-negative bacteria and lipoteichoic acids from Grampositive bacteria[J].Dev Comp Immunol，2006，30（3）：335-343.

[8] van Deventer SJ，Buller HR，ten Cate JW，et al.Endotoxaemia：an early predictor of septicaemia in febrile patients[J].Lancet，1988，1（8586）：605-609.

[9] 戴良成，吴昊，劳志刚，等.重症监护病房下呼吸道感染细菌的构成及耐药性分析[J].实用医学杂志，2007，23（13）：2057-2060.

（收稿日期：2013-10-31 本文编辑：许俊琴）

[摘要] 目的 探讨细菌内毒素检测在ICU病区感染性疾病患者中的应用价值。 方法 回顾性分析16例细菌培养为G-杆菌感染患者（G-杆菌感染组）和20例细菌培养为非G-杆菌感染患者（非G-杆菌感染组）的血液内毒素检测结果。 结果 G-杆菌感染组的血液内毒素检测结果为（4.987±10.609）EU/ml，非G-杆菌感染组为（0.043±0.052）EU/ml，两组比较，差异有统计学意义（P<0.05）。 结论 在ICU病区，细菌内毒素升高与G-杆菌感染有关，对感染性患者先进行内毒素检测有利于临床早期诊断和治疗，为临床治疗提供理论依据，具有很高的临床意义。

[关键词] 细菌内毒素；细菌培养；感染性疾病；G-杆菌感染

[中图分类号] R446.11+2 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721（2014）01（b）-0125-02

内毒素（endotoxin，ET）是革兰氏阴性细菌细胞壁的主要成分，其化学成分为脂多糖（lipopolysaccharide，LPS），由类脂A、核心寡聚糖O及多肽侧链组成[1]。ET能够直接作用于人体，激活组织内的炎性细胞和炎症因子，导致机体发热并产生全身性炎症反应综合征（SIRS），继而引起弥散性血管内凝血（DIC）、休克、多脏器功能衰竭等严重的病理生理症状，危及生命，由于ET与革兰氏阴性菌关系密切，所以内毒素血症在临床非常常见。及早诊断内毒素血症有利于预测感染性疾病的性质和预后，迅速采取相应的治疗措施，减轻ET对患者生命造成的损害。ICU病区的患者都是免疫力低下的重症患者，易感染，细菌培养时间较长，故ET的检测很好地解决了这个问题，此法灵敏度高，测定范围大，通常在0.006～300 EU/ml[2]。本研究回顾性分析16例细菌培养为G-杆菌感染的患者和20例细菌培养为非G-杆菌患者的血液ET检测结果，现报告如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料

本组为2012年10月～2013年8月本院ICU病区收治的16例细菌培养为G-杆菌感染的患者（G-杆菌感染组），其中男13例，女3例，年龄47～87岁，平均71.3岁，其中阴沟肠杆菌1例、鲍曼不动杆菌5例、铜绿假单胞菌4例、克雷伯菌4例、大肠埃希菌2例；20例细菌培养为非G-杆菌感染患者（非G-杆菌感染组），其中男15例，女5例，年龄41～81岁，平均70.2岁。患者均为ICU重症患者。

1.2 方法

采用动态浊度法检测细菌ET，严格按照全国临床检验操作规程进行细菌培养。

1.2.1 标本采集 严格按照无菌操作，采集早晨空腹静脉血1 ml，加入体液处理剂Ⅰ号（1 ml）管内，加盖，混合30 s，备用；细菌培养标本采用无菌容器收集。

1.2.2 仪器与试剂 使用天津天大天发BET-24A型细菌ET测定仪检测细菌ET，试剂、标准曲线、质控液均为湛江博康海洋生物有限公司提供；细菌培养按照全国临床检验操作规程使用珠海迪尔生物工程公司提供的DL-96 E G-杆菌鉴定、药敏配套试剂和鉴定系统。

1.2.3 测定 将样本按标准化要求处理好上机检测ET：加样完毕，用封口膜封闭管口，轻轻混合3 s（不产生气泡），插入ET检测仪孔中恒温检测，观察时间为4500 s；细菌培养按照全国临床检验操作规程细菌培养。

1.3 统计学处理

数据采用 SPSS 16.0 软件进行统计分析，计量资料用均数±标准差（x±s）表示，采用t检验，计数资料采用χ2检验，以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

G-杆菌感染患者的细菌ET明显高于非G-杆菌感染患者（P<0.05）（表1）。

表1 两组细菌培养结果的比较[n（%）]

与非G-杆菌感染组比较，*P<0.05；统计时ET高于正常为阳性

3 讨论

临床上细菌感染的患者常发生内毒素血症、DIC、休克肺、心脏抑制及口腔疾病等，死亡率为20%～30%[3]。革兰氏阴性细菌败血症尤常并发内毒素血症，常见致病菌为沙门菌属、阴沟肠杆菌属及拟杆菌属，这些致病菌多通过泌尿道、肠道、胆道及呼吸道而引起感染，也可通过外伤、外科手术、导管检查或留置以及器械操作等途径进入血液，伴随杀灭细菌细胞壁破裂产生的ET也越多[4]，可引起败血症。有研究表明ET是全身炎症反应的重要触发剂，是一系列连锁反应的扳机[5]。ET是介导革兰氏阴性菌脓毒症的重要启动因子，通过其结合受体或调节蛋白的作用诱导宿主多种细胞因子的合成和释放，激发机体一系列病理、生理改变，危害相当大[6]。ET是诊断和监测革兰氏阴性菌感染的重要指标[7-8]。近年来，许多国内外报道，革兰氏阴性菌感染有逐年增加的趋势[9]，进行血浆ET测定，对疾病的鉴别诊断和ET休克的防治以及控制感染都有非常重要的意义，本研究通过观察本院ICU病区收治的16例细菌培养为G-杆菌感染的患者和20例细菌培养为非G-杆菌感染患者血液ET检测结果，结果证明了血ET在诊断和检测革兰氏阴性菌感染中的重要作用。病情凶险，需要动态检测才能及时制订治疗方案、判断预后，特别是ICU病区的患者尤其重要，时间就是生命，血ET定量测定具有省时、简便、灵敏度高等特点，使快速鉴别诊断革兰氏阴性菌感染、监测细菌感染高危患者的病情变化成为可能。相对于传统血培养的耗时、阳性率低等弊病，血ET检测值得临床推广应用。

[参考文献]

[1] 马全玲，刘扬，李传保.ET检测与临床应用现状[J].国外医学临床生物化学与检验学分册，2003，24（2）：64-65.

[2] 汪玲，王桂平.细菌ET的检测方法及其应用概况[J].中国药师，2003，6（5）：316-317.

[3] 徐修礼，刘宝瑞，张建芳，等.ET定量酶免疫分析法的建立及应用[J].第四军医大学学报，2002，23（3）：250-253.

[4] 林爱华，刘云海，林建国.抗ET药物的研究进展[J].国外医学药学分册，2001，28（1）：23.

[5] Kogut MH，He H，Kaiser P.Lipopolysaccharide binding protein/CD14/TLR4-dependent recognition of salmonella LPS induces the functional activation of Chicken heterophils and up-regulation of pro-inflammatory cytokine and chemokine gene expression in these cells[J].Anim Biotechnol，2005，16（2）：165-181.

[6] 郁峰.血清降钙素原和ET检测在小儿SIRS的意义[J].中国现代医生，2013，51（5）：62-64.

[7] Nahid AM，Sugii S.Binding of porcine ficolin-alpha to lipopolysaccharides from Gram-negative bacteria and lipoteichoic acids from Grampositive bacteria[J].Dev Comp Immunol，2006，30（3）：335-343.

[8] van Deventer SJ，Buller HR，ten Cate JW，et al.Endotoxaemia：an early predictor of septicaemia in febrile patients[J].Lancet，1988，1（8586）：605-609.

[9] 戴良成，吴昊，劳志刚，等.重症监护病房下呼吸道感染细菌的构成及耐药性分析[J].实用医学杂志，2007，23（13）：2057-2060.

（收稿日期：2013-10-31 本文编辑：许俊琴）