印楝育苗技术试验初报

李洪霞，谭中月，蔡小虎

(1.米易县林业局，四川米易 617200;2.攀枝花市林业局四川攀枝花市 617000;3.四川省林业科学研究院，四川成都 610081)

印楝属楝科(Meliaceae)，乔木，树高6 m～15 m，耐干旱，适应干热河谷的立地条件，可开发用作农药、医药、肥料、饲料、燃料、建筑材料和化工原料等，具有重要的经济价值。本项目重点对印楝的育苗几个关键环节进行探讨，为生产提供育苗技术支撑。

1 材料与方法

1.1 从云南省元谋县引入的新鲜种子，当年8月份采集种子，种子采收后，于室内常温贮藏，保持通风透气，从采收到开展试验时间在5 d以内。其它材料如基质成分、药品等均按试验设计准备。

1.2 试验方法

1.2.1 贮藏期对印楝种子发芽率的影响

试验种子准备好后，于室内常温贮藏，保持通风透气。每周取种子100粒于沙床进行发芽试验，播种期严格按1周间隔，共9周。观察、记录和分析不同试验的发芽率的差异。

1.2.2 浸泡处理对印楝种子发芽率的影响

试验设计:分别用 1%H2SO4、温水(65℃)、凉水浸种，不同浸泡时间等组合，包括对照共11个处理(见表1)，3次重复。每试验均选用100粒新鲜饱满种子，处理后进行发芽试验。

表1 印楝种子育苗对比试验Table 1 Comparative experiment of neem seed breeding

1.2.3 不同基质对育苗成效的影响

采用容器育苗的方式进行试验。育苗基质分6种代号、材料组成及比例见表2。将按照比例混合好并经过消好毒的基质放入容器中，再将经过发芽处理的种子播入袋内，每袋一颗种子。按随机区组组设计试验方案，各设3个区组。苗木出圃前对每个小区随机抽取50株苗木，去除附在苗木上的土壤，称苗木的重量，以生物量为指标进行比较分析。

表2 育苗基质组成情况Table 2 Breeding matrix composition

2 结果与分析

2.1 种子贮藏时期与发芽率关系

从实验中可以看出，印楝种子采收后，在没有经过特殊处理的情况下，其生活力逐渐下降，其发芽能力也迅速降低。贮藏3周时，种子发芽率80%左右。以后随贮藏时间的延长，种子发芽能力迅速下降，尤其在第4周至第7周，每周发芽率降低约10%，至第8周时，其发芽率降到20%以下(见图1)。因此，印楝种子育苗，应在采种后迅速播种(或沙床催芽)，种子贮藏时间以不超过3周为宜。如果由于长途运输的需要或长时间以后才使用种子，必须用特殊方法贮藏。

图1 印楝种子发芽率随贮藏期延长走势图Fig.1 Trend chart of the neem seed germination rate along with the extension of storage time

2.2 浸泡处理对种子发芽率影响

种子浸泡处理试验结果(见表3)，处理D(65℃温水浸泡30 min)和处理A(1%H2SO4浸种15 min)效果最好，平均发芽率均达90%以上;对照和处理H(20℃凉水浸种1 h)效果最差，发芽率均低于80%。其他处理发芽率均在80% ～90%之间，每个处理反正弦平均值为:A=72 B=67.5 C=63.7 D=75.7 E=69.2 F=64.6 G=64.4 H=61.1 I=69.2 J=69.7 CK=60.5(见表4)后进行方差分析，结果见表5。

表3 种子不同浸泡处理的印楝发芽率Table 3 Germination rate of neem seeds treated by different soaking ways

表4 不同种子处理的印楝发芽率反正弦表Table 4 Arc sine table of germination rate of neem seeds treated by different soaking ways

表5 种子浸泡处理方差分析表Table 5 Variance analysis table of seeds soaking treatment

从表5可以看出，不同浸泡处理对种子发芽率的影响差异极显著。为了比较各个处理之间的差异，现进行多重比较分析(见表6)。多重比较显著水平a=0.05，查表得，则=6.89，和对照比，只有D、A 、J、I、E 、B 处理具有显著性差异，F、G、C 、H 无显著性差异。从上表可以看出，D、A两个处理与其它处理相比，绝大部分处理都具显著性差异，且D、A处理对种子发芽均具有明显的促进作用。因此，在育苗中可以采用这两种方式，即浸1%H2SO4浸泡15 min或65℃的温水浸泡30 min进行处理。

表6 不同处理对种子发芽率影响多重比较方差分析表Table 6 Multiple comparison variance analysis table of the effect of different treatments on the seed germination rate

2.3 不同基质对苗木生长影响

通过随机抽取每个试验小区50株供试苗木进行生物量测定，其结果如表7。

表7 印楝在不同基质中苗木生物量结果表Table 7 Neem seedlings biomass in the different media

对其进行方差分析。结果见表8。

表8 生物量方差分析Table 8 Variance analysis table of biomass

对区组间s2作F测验，结果表明3个区组间的没有显著差异。区组间差异与否并不是试验的目的，因此一般不作F测验。对基质s2作F测验，结果表明6个总体平均数间有显著的差异，需进一步作多重比较，以明了哪些处理间有显著差异，哪些处理间没有显著差异。

采用最小显著极差法(LSR法)来检测基质间相互比较的差异显著性。首先算得样本平均数标准误SE:

查SSR值表，当v=DFe=10时得k=2、3……6的SSR值，并根据公式 LSRa=SE×LSRa，算得SSR值列于表9，然后用字母标记法以表9的LSR衡量不同基质间苗木生物量差异显著性将比较结果列于表10。

表9 最小显著极差法测验值Table 9 LSD test value

表10 方差分析表Table 10 Variance analysis table

结果表明:A基质与其它基质相比，均达到显著或极显著水平，B基质效果最差，所有其它基质均优于B基质，因此该基质不可取。D、C、E、F、D基质只极显著优于B基质，这几个基质之间无显著差异。因此，育苗时，可用A基质，即有用50%大田土(苗圃内本土)+29%腐质土+10%河沙+10%厩肥+1%的复合肥。

3 结论与讨论

3.1 贮存期对种子发芽率的影响

印楝种子寿命较短，采收后，在自然状态下，易失去活力。这是因为印楝种子内部所含物质是以淀粉为主，淀粉转化为可利用状态所需要的时间较短，同时被消耗所释放出的能量也较低，要满足种子微弱呼吸作用的需要就要消耗掉较多的淀粉，在单位时间内消耗的营养物质较多。另外，因为印楝种子含水量较高，种子细胞内出现自由水，使呼吸强度增强，呼吸性质由缺氧变为有氧呼吸，并放出大量水分和热量又被种子吸收，更加强了呼吸作用，并给微生物的活动创造了条件。所以印楝种子寿命较短。因此，在进行育苗时，尽量使用本地印楝种子，并要做到随采随用，对于由于种子不够或需从外面引入印楝种子时，一定要注意采用必要的措施进行贮藏，但以不超过3周为宜。

3.2 浸泡处理对印楝种子发芽率的影响

种子在适宜的湿度、温度和氧气的环境中才能发芽。在攀枝花，印楝育苗时间为9月～10月份，这时气温较高，能够满足印楝育苗的温度要求。主要要重点控制好湿度及氧气环境。印楝种子种皮较硬，在自然情况下，种子发芽率较低，且发芽不整齐，因此，为了有效提高印楝种子发芽率，播种之前进行浸泡处理，让种子较快并充分而不过量地吸收水分。这就要求在浸泡过程中，要把握好浸泡时间，太长让种子过量吸水抑制种子呼吸，太短使种子吸水太少延缓种子平均发芽速，降低发芽率。同时，采取一定温度的水液或加入一定浓度的其它物质(如:硫酸、盐酸等)，可以通过温度或化学物质的作用，对种皮进行物理侵蚀或化学刺激，使种皮顺利破裂，加强种子内部酶的活性，使贮藏物质水解，转化为可溶性化合物，为胚所利用，促进种子发芽。但如果水温过高或加入的化学溶液浓度过大或浸泡时间过长，都有可能破坏种子结构，使种子失去活力。同时，在气温或水温较高的情况下，由于水分过多，还易使种子遭受病菌的感染，容易使种子溃烂变质而影响种子发芽率。因此，在本试验中，采用1%H2SO4浸种15 min和65℃温水浸种30 min，有效地提高了印楝种子发芽率。

3.3 不同基质对印楝苗木生长的影响

在苗木培育中，育苗基质对苗木的高茎生长、生物量的积聚以及苗木质量的影响都是比较大的。本试验在选择基质搭配时，一方面从基质的通气性、保水排水性、养分含量等方面选择基质的种类及比例，另一方面，按照就地就近取材的原则，考虑可操作性、成本等方面的因素进行选择。通过试验及分析表明，基质不同，苗木生物量有明显的差异。A基质即50%大田土(苗圃内本土)、29%腐质土、10%河沙、10%厩肥和1%的复合肥的育苗效果均明显优于其它几种基质，一是因为A基质内加入了大量的腐殖质土、厩肥及一定的复合肥，因此，基质内肥力条件较好，能够较好地满足苗木的生长，同时因为腐殖质土、厩肥比例较大，因此基质通气良好。

［1］赖永祺.印楝栽培［M］.昆明:云南科技出版社，2003，1～6.

［2］杨荣喜.攀枝花干热河谷植被建设对策研究.攀枝花科技与信息，2001，26(4):18 ～19.

［3］张燕平，赖永琪，彭兴民.印楝的世界地理分布与引种栽培概况. 林业调查规划，2002，27(3):98～101.

［4］龚伟，胡庭兴，宫渊波，等.印楝在我国的引种与经营利用现状. 四川林业科技，2004，25(3):49～52.

［5］Randhawa N S and Parmar B S(eds.).Neem Research and Development［C］.India.Society of Pesticide Science，1993，27 ～32.

［6］彭兴民，赖永琪，赵培仙，等.印楝采种育苗及造林技术初步研究［J］.西南林学院学报，2001，21(3):134 ～137.

［7］方幸福.印楝育苗与造林技术［J］.广西农业科学，2004，35(4):327～329.

［8］赵善欢.印楝引种试验初报［J］.华南农业大学学报，1989，10(2):34～39.

［9］浙江科技大学.种子学［M］.上海:上海科技出版社，1980，48～50.

［10］奥小平，富裕华，郝向春，等.容器育苗基质组成的研究［J］.山西林业科技，1996，12(2):1 ～4.

［11］刁阳光，史景顺，罗利灵，等.金沙江干热河谷印楝适生区域选择初步研究［J］.四川林业科技，2006，27(6):59 ～60.

［12］周 杰.印楝育苗技术［J］.云南林业，2001，22(6):16.