APP下载

大肠杆菌O157:H7实验感染动物排菌动态检测

2012-09-21孙茂华孟祥升夏兴霞赵攀登张雪寒何孔旺王永山

东南国防医药 2012年1期
关键词:菌液纸条菌落

孙茂华,孟祥升,夏兴霞,赵攀登,张雪寒,何孔旺,王永山

(本文编辑:张仲书; 英文编辑:王建东)

肠出血性大肠杆菌O157:H7感染具有暴发流行趋势、强烈的致病性与致死性以及抗生素治疗可能会加剧病情等特点。人感染O157:H7后,出现急性腹泻、出血性结肠炎(HC),并在5% ~10%的病例中引发溶血性尿毒综合征(HUS)及血栓性血小板减少紫癜(TTP)等严重并发症,严重者可导致死亡[1]。1982年该菌首先在美国发现,此后在世界各地散发或流行,1996年在日本大阪地区流行,患者逾万、死亡11人;2001年在中国江苏、安徽等地发生了多次食源性感染O157:H7事件,导致177人死亡。O157:H7已成为全球性的公共卫生和食品安全问题[2-4]。

人主要是经食源性或与带菌动物接触感染O157:H7,带菌动物的粪便是污染环境、食品以及水源的主要来源。从腹泻患者、畜禽粪便、市售肉类以及猪、鸽、牛、鸡、鸭等动物中均有分离出O157:H7的报道[5-6]。反刍动物是其主要的储存宿主,受感染动物通常不表现临床症状,但可经粪便排菌,因此是O157:H7的危险传染源[7]。鼠与人类生活关系密切,鼠类可以通过其排泄物污染人类的食品、食具以及生活环境,造成疾病的传播[8]。目前,我们对自然感染O157:H7动物的排菌情况还知之甚少,是O157:H7防控研究中的薄弱环节。

本实验以牛和小鼠为O157:H7感染动物模型,评价大肠杆菌O157:H7胶体金免疫层析检测试纸条[9-10]在O157:H7带菌动物监测中的应用前景。

1 材料与方法

1.1 主要试剂 大肠杆菌O157:H7检测试纸条与山梨醇麦康凯琼脂培养基(为O157:H7的鉴别培养基,含100μg/ml卡那霉素、50μg/ml新生霉素、40 μg/ml万古霉素和2.5μg/ml亚碲酸盐)均由江苏省农业科学院兽医研究所生物兽药实验室研制[4]。具有卡那霉素、新生霉素、万古霉素和亚碲酸盐四种抗性的大肠杆菌国际代表菌株O157:H7 EDL933株由江苏省农业科学院兽医研究所提供。该菌株在山梨醇麦康凯琼脂培养基上的菌落特征为:菌落透明、光滑湿润。

1.2 实验动物与分组 荷斯坦奶牛12头,雌性,(10±2)周龄,普通级,购自南京卫岗奶牛场。随机分成四个组,每组3头,实验前检测粪便O157:H7为阴性。ICR小鼠20只,雄性,6周龄,清洁级,购自扬州大学实验动物中心。随机分成四个组,每组5只。实验前检测粪便O157:H7为阴性。实验动物许可证号:SYXK(苏)2010-0005。

1.3 菌液制备 将冻存于-80℃的 O157:H7 EDL933菌种划线于山梨醇麦康凯平板,37℃过夜培养,次日挑取单菌落接种于5 m l的LB培养基中,37℃培养8 h。取O157:H7 EDL933纯培养物,划线接种于LB琼脂平板上,37℃培养18~24 h,用生理盐水将菌苔洗脱下来。取少量菌苔洗脱液做10倍比连续稀释,每个稀释度取1ml菌液与10~15 ml溶化后冷却至45℃左右的LB琼脂培养基混匀,倒入培养皿(直径90 mm)中,水平放置,待琼脂凝固后,于37℃温箱中培养,计数菌落,计算菌液中的细菌含量[菌落数/ml,(CFU/ml)]。

1.4 动物感染 所有实验动物在感染前3 d饮用5 g/L链霉素溶液,检测肠道粪便菌数CFU/g少于103时,断水断食12 h,然后采用灌胃途径感染动物。灌胃12 h后恢复饮食、饮水(0.5 g/L链霉素溶液)。

奶牛实验组:三个感染组,O157:H7的灌服剂量 CFU/头分别为 108、1010、1012;一个对照组,只灌服生理盐水。

ICR小鼠实验组:三个感染组,O157:H7的灌服剂量 CFU/只分别为 106、108、1010;一个对照组,只灌服生理盐水。

感染后,观察实验动物的精神、行为、食欲、粪便等临床症状。收集粪便,检测O157:H7排出状况。连续观察至粪便中无O157:H7检出。

1.5 粪便收集与处理 动物感染O157:H7后,分别于2、4、6、12和24 h后收集粪便,之后每天收集一次。取牛粪便1 g(鼠粪便0.2 g),悬于生理盐水中,获得10%(W/V)的样品悬液,震荡混合均匀,800 r/min离心5 min(离心半径8 cm),收集上清,然后5000 r/min离心3 min(离心半径8 cm),弃上清,1 ml生理盐水重悬菌体沉淀,检测菌液。

1.6 检测

1.6.1 试纸条检测 直接检测:分别取200μl上述菌液,滴加到O157:H7检测试纸条测试端,平放1~5 min,判定结果,无阳性反应者进行增菌检测。增菌检测:取上述菌液100μl,加入到3 ml改良EC肉汤培养基中(含20μg/ml新生霉素),37℃振摇培养9 h,取200μl菌液用O157:H7试纸条检测。

1.6.2 鉴别培养基菌落计数 将检测菌液分别进行10倍比连续稀释,每个稀释度取1ml,与10~15ml溶化后冷却至45℃左右的O157:H7山梨醇麦康凯琼脂培养基混匀,倒入培养皿(直径90mm)中,水平放置,待琼脂凝固后,于37℃温箱中培养,计数菌落,计算菌液中的细菌含量(CFU/g)。

2 结果

2.1 奶牛感染组 奶牛感染O157:H7后未见明显的异常,也没有出现腹泻症状。用大肠杆菌O157:H7检测试纸条和鉴别培养基菌落计数两种方法平行检测粪便处理物。牛在感染O157:H7后第2天开始从粪便排菌,第4~6天达到峰值,排菌时间最长持续28 d。

感染牛粪便中O157:H7菌数与感染剂量呈正相关。108CFU剂量组在第4天;1010CFU剂量组在第2、4、6 天;CFU 1012剂量组在第 2、4、6、8 天的粪便处理液用O157:H7检测试纸条直接检测为阳性。细菌培养计数均超过106CFU/ml。

感染牛从粪便排出O157:H7的持续时间与感染剂量也呈正相关。108CFU剂量组牛排菌时间可持续10 d;1010CFU剂量组牛排菌时间可持续16 d;而1012CFU剂量组牛排菌时间可持续28 d。

用大肠杆菌O157:H7检测试纸条(直接检测、增菌检测)与细菌培养计数两种方法检测牛感染O157:H7后的粪便排菌量和持续时间,两种方法的检测结果一致,试纸条更简便、快捷、直观,在1~5 min内可得出检测结果。

三个实验组牛感染O157:H7后的粪便排菌动态如表1所示。

2.2 小鼠感染组 小鼠感染O157:H7后1~3 d内均表现出昏睡、厌食、被毛蓬松,但没有明显的腹泻症状,只有少数在攻毒后2~3 d内有稀便。临床症状与感染剂量有关,高剂量组比低剂量组临床症状重,低剂量组从第3天逐渐恢复体况,采食量逐渐增加,精神好转。用大肠杆菌O157:H7检测试纸条和鉴别培养基菌落计数两种方法平行检测粪便处理物。小鼠在感染O157:H7后4 h开始从粪便排菌,6 h达到峰值,排菌时间最长可持续15 d。

感染鼠粪便中O157:H7菌落数与感染剂量呈正相关。106CFU剂量组在6 h;108CFU剂量组在4、6、12 h;1010CFU 剂量组在4、6、12、24 h 的粪便处理液用O157:H7检测试纸条直接检测为阳性。细菌培养计数均超过106CFU/ml。

感染鼠从粪便排出O157:H7的持续时间与感染剂量也呈正相关。106CFU剂量组小鼠排菌时间可持续8 d;108CFU剂量组小鼠排菌时间可持续10 d;而1010CFU剂量组小鼠排菌时间可持续15 d。

用大肠杆菌O157:H7检测试纸条(直接检测、增菌检测)与细菌培养计数两种方法检测小鼠感染O157:H7后的粪便排菌量和持续时间,两种方法的检测结果一致,试纸条更简便、快捷、直观,在1~5 min内可得出检测结果。

三个实验组小鼠感染O157:H7后的粪便排菌动态如表2所示。

表1 牛感染O157:H7后的粪便排菌动态

表2 小鼠感染O157:H7后的粪便排菌动态

3 讨论

大肠杆菌O157:H7主要生存在多种家畜、家禽,尤其是牛、羊等反刍动物体内,此外,从鹅、鸡、马、鹿、海鸥、绵羊、山羊、鸽子、鸭、兔、狗、猫的粪便中也可分离出O157:H7。O157:H7会引起幼龄动物腹泻,从而污染农畜产品。食源性以及与带菌动物接触是人感染O157:H7的主要途径,世界各地暴发流行的O157:H7的感染都是因食用被O157:H7污染的食物引起的。

牛是O157:H7的主要宿主,牛的饲养量巨大,是环境污染的重要源头,来源于牛的制品在民众生活中占有重要地位。而鼠与人类生活关系密切,有人类居住的地方几乎都受到鼠害侵袭,鼠类可以通过其排泄物污染人类的食品、食具以及生活环境,从而造成疾病的传播。因此,以牛和鼠为O157:H7感染动物模型,检测O157:H7的排菌状况,实际意义更强。

本实验参考 Wadolkowski和 Fujii等[11-12]的方法在感染前通过饮水给动物饲喂链霉素,排除肠道正常菌群,在动物消化道内为O157:H7驯化了一个定居和生长的环境,使O157:H7能在肠道中成为优势菌群。采用灌胃攻毒方式,使小鼠感染具有卡那霉素、新生霉素、万古霉素和亚碲酸盐四种抗性的O157:H7,灌胃攻菌后继续给予小鼠0.5 g/L的链霉素溶液饮用。牛在感染O157:H7后2 d开始从粪便排菌,4 d达到峰值,排菌时间最长可持续28 d。小鼠在感染O157:H7后4 h开始从粪便排菌,6 h达到峰值,排菌时间最长可持续15 d。牛、鼠感染O157:H7后的排菌时间和持续时间存在差异,与这两种动物的消化道结构有关。大肠杆菌O157:H7胶体金免疫层析检测试纸条与O157:H7鉴别培养基细菌培养计数的检测结果一致,而试纸条更简便、快捷、直观,在1~5 min内可得出检测结果,便于O157:H7临床样品的快速检测以及在粪便、食品、环境污染物、水样等现场检测样品中的快速筛查。

[1]Tarr PI.Escherichia coliO157:H7:clinical,diagnostic and epidemiological aspects of human infection [J].Clin Infect Dis,1995,20(1):1-10.

[2]WHO.Enterohaemorrhagic Escherichia coil infection Japan[J].Wkly Epid Rec,1996,30:229.

[3]李洪卫,景怀琦,逢 波,等.徐州市2000年肠出血性大肠埃希菌0157:H7感染性腹泻的调查[J].中华流行病学杂志,2004,23(2):119-122.

[4]倪大新,汪 华,顾 玲,等.江苏省1999年大肠埃希菌0157:H7宿主动物带菌情况调查[J].中华流行病学杂志,2002,3(2):102-104.

[5]Hancock D,Besser T,Lejeune J.The control of VTEC in the animal reservoir[J].Int JFood Microbiol,2001,66(1-2):71-78.

[6]Ogden ID,Hepburn NF,MacRae M,etal.Long-term survival of Escherichia coliO157 on pasture following an outbreak associated with sheep at a scout camp [J].Lett Appl Microbiol,2002,34(2):100-104.

[7]Meyer-Broseta S,Bastian SN,Arne PD,etal.Review of epidemiological surveyson the prevalence of contamination of healthy cattle with Escherichia coil serogroup O157:H7[J].lnternational Journal of Hygiene and Environmental Health,2001,203:347-361.

[8]刘 洁,夏兴霞,王永山,等.大肠杆菌0157:H7抗体胶体金免疫层析检测试纸条的研制[J].中国预防兽医学报,2010,32(5):375-378.

[9]夏兴霞,刘 洁,王永山,等.动物源性人兽共患细菌病防控生物新制剂的研究I.分泌抗大肠杆菌0157:H7单克隆抗体杂交瘤细胞株的建立[J].江苏农业学报,2009,25(2):291-295.

[10]夏兴霞,王永山,孟祥升,等.大肠杆菌O157:H7单克隆抗体胶体金免疫层析检测试纸条的研制[J].中国动物传染病学报,2010,18(4):47-53.

[11]Wadolkowski EA,Burris JA,O’Brien AD.Mousemodel for colonization and disease caused by enterohemorrhagic Escherichia coli O157:H7[J].Infect Immun,1990,58(8):2438-2445.

[12]Fujii J,Kita T,Yoshida S,etal.Direct evidence of neuron impairment by oral infection with verotoxin-producing Escherichia coli O157:H7 in mitomycin-treated mice[J].Infect Immun,1994,62(8):3447-3453.

猜你喜欢

菌液纸条菌落
两张纸条儿(上)
纸条大侦探
TTC应用于固体食品菌落总数测定研究
多糖微生物菌液对油菜吸收养分和土壤氮磷淋失的影响
不同emm基因型化脓性链球菌的菌落形态
Bonfire Night
五张纸条
鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验中通过吸光度值测定菌液浓度的方法研究
食品微生物检验中菌落总数测定的注意事项
神秘的纸条