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Rh IL-21对NK-92M I细胞生物学活性的影响

2012-04-03陈葆国颜卫华李伯利章卫国干灵红

医学研究杂志 2012年3期
关键词:活化培养基受体

郑 瑞 陈葆国 颜卫华 李伯利 章卫国 干灵红

IL-21主要是由活化的CD4+T细胞和NKT细胞分泌,属于γc(共同γ链)细胞因子家族成员之一[1~3]。至今有不少关于白介素(IL)-21对鼠和人NK细胞生物学调节的研究。曾发现IL-21和IL-15体外共同培养的鼠NK细胞,其增殖受到抑制,IL-21也并非NK细胞早期成熟必须的细胞因子[4]。IL-21可以通过增强鼠NK细胞杀伤活性对NKG2D配体阳性的肿瘤细胞有抑制作用,但也有研究表明IL-21通过下调人primary NK和CD8+T细胞表面NKG2D/DAP10的表达,而抑制primary NK细胞通过NKG2D介导的细胞毒作用[5,6]。可见IL-21对NK细胞功能的调节可能因种群差异存在差异。因此本文通过rhIL-21对NK-92MI细胞生物学活性调节的研究,进一步探讨IL-21对NK细胞的免疫调节作用。

材料与方法

1.材料:rhIL-21及Human IFN-γMini ELISA Development Kit购自美国PeproTech公司,细胞毒活性检测试剂盒CytoTox 96®Non-Radioactive Cytotoxicity Assay购自美国Promega公司,PE标记鼠anti-hNKG2D购自R&D公司,TRizol Reagent购自美国Invitrogen公司,Revert AidTMFirst Strand cDNA Synthesis Kit购自加拿大Fermentas(MBI)公司,凋亡检测试剂盒购自联科生物 AnnexinV/PI apoptosis kit,胎牛血清、新生牛血清、马血清、RPMI-1640及α-MEM基础培养基均购自美国GIBCO公司。引物由上海基康是生物技术有限公司合成。NK-92MI细胞(恶性非霍奇金淋巴瘤患者外周血NK细胞系NK-92经稳定转染hIL-2后得到)及K-562细胞(人慢性髓系白血病细胞系)均为本室保存。

2.细胞培养:NK-92MI细胞培养:在α-MEM培养基中加入终浓度为12.5%的胎牛血清和12.5%的马血清,于37℃、含5%CO2和95%湿度的孵箱常规培养;K-562细胞培养:于RPMI-1640培养基中加入10%的新生牛血清,常规传代培养。

3.细胞增殖试验:取处于对数生长状态良好的NK-92 MI细胞,1200r/min×4min,离心。PBS洗1次,1m lα-MEM完全培养基悬起细胞,计数。调整细胞浓度为1×105/ml,备用。按rhIL-21药物浓度实验分4组,分别为0ng/ml,25ng/ ml,50ng/ml和100ng/ml组。配备含200ng/m l rhIL-21的α-MEM完全培养基1ml(取2μl100ng/μl的rhIL-21加入到1mlα-MEM完全培养基)于96孔板实验各孔加入100μl的α-MEM完全培养基,取含200ng/ml rhIL-21的α-MEM完全培养基加入到第一组各孔,100微升/孔。轻混匀后分别取100微升/孔加入下一个稀释度的各孔依次倍比2稀释,3复孔/稀释度,取NK92 MI细胞悬液100μl加入各相应孔。将96孔板置37℃、5%CO2孵箱中培养,分别在24、48和72h 3个药物培养时间段收集细胞并计数。

4.细胞毒效应试验:取生长状态良好NK-92MI细胞,PBS洗涤两次后,于100ml培养瓶中按2×105个/ml细胞浓度培养,一组加入终浓度为50ng/ml rhIL-21,一组未加药物,在37℃、含5%CO2的孵箱常规培养48h。收集预处理后细胞,PBS洗涤3次,把两组细胞浓度调为4×106个/毫升备用。取U型底96孔板,按CytoTox 96®Non-Radioactive Cytotoxicity Assay试剂盒操作步骤,设靶细胞自然释放孔、培养基背景孔、靶细胞最大释放孔、体积校正孔及效应细胞自然释放孔。取准备好的NK-92MI细胞加入96孔板,以倍比稀释法设立6个效应细胞浓度梯度,体积50微升/孔。再取准备好的生长状态良好的靶细胞K-562(2×105个/毫升)50μl加入到相应各孔,使效靶比分别为20∶1、10∶1、5∶1、2.5∶1、1.25∶1共5个浓度梯度,每个梯度4个复孔。在37℃、含5%CO2的孵箱常规培养4h后,以每孔10μl裂解液加入到靶细胞最大释放孔和体积校正孔,再孵育45min后,取出250g×4min离心,收集上清50微升/孔,移入另一平底96孔板,再加入反应液50微升/孔,避光室温孵育30min,490nm读取吸光度值。通过检测上清中LDH含量计算NK-92MI对K-562细胞的细胞毒活性。细胞毒效应计算公式:细胞毒(%)=(实验组-效应细胞自发释放-靶细胞自发释放)/(靶细胞最大释放-靶细胞自发释放)×100%。

5.流式细胞术(FACS)检测:以50ng/m l rhIL-21预处理NK-92MI细胞48h,同时设PBS对照组(即未加药组)。收集细胞用PBS洗涤两次,离心后,用300μl PBS重悬细胞混匀,平分为3管,一管加入anti-IgG-PE/IgG-FITC同型对照荧光标记抗体,一管加入anti-Granzyme B-PE荧光标记抗体,另一管加入anti-hNKG2D-PE荧光抗体,室温孵育30min,PBS洗涤两次,细胞用500μl PBS悬起,上机分析。同样方法培养细胞48h和72h,按AnnexinV/PIapoptosis kit操作步骤检测rhIL-21对NK-92MI细胞凋亡影响。

6.RT-PCR检测目的基因的表达:分时收集50ng/ml预处理0、6、12和24h的NK-92MI细胞,PBS洗涤2两次,细胞计数板计数,每次取同等量细胞,用TRizol试剂盒抽取细胞总mRNA。反转录反应取2μl mRNA,总体系为20μl,合成cDNA。PCR反应体系为25μl:2.5μl 10×Buffer,1.5μl 25mmol/L MgCl2,0.5μl dNTP,0.5μl cDNA,各0.5μl上下游引物,0.5μl Taq DNA聚合酶,18.5μl去离子水。反应条件:94℃10min; 94℃1min、56℃45s、72℃45s共38个循环;72℃min;4℃ Hold。取4μl PCR产物用1.3%琼脂糖凝胶电泳分析,结果用Quantity one软件进行灰度分析,对目的基因进行半定量。各引物如表1。

表1 各PCR引物序列及扩增片段长度

7.ELISA 检测IFN-γ的分泌:试验于96孔板中进行,检测50ng/m l rhIL-21药物在不同时间对NK-92MI细胞分泌IFN-γ的影响。体积为200微升/孔,每个时间梯度(12h,24h和48h)3个复孔,同时设培养基(含12.5%胎牛血清和12.5%马血清的α-MEM)和常规NK-92MI细胞培养对照组,于37℃、含5%CO2的孵箱培养。按 Human IFN-γMini ELISA Development Kit实验步骤进行,检测490nm吸光度值。

8.统计学方法:所有数据均采用SPSS 13.0统计软件分析,计量资料描述用均数±标准差±s)表示,统计分析前各组数据均进行方差齐性检验,多组间数据比较采用One-way ANOVA方差分析,组间两两比较采用LSD统计方法,两组间比较采用两组间独立样本t检验(细胞杀伤实验采用配对资料t检验),P<0.05为差异具有显著性。

结果

1.RhIL-21对NK-92MI细胞增殖的影响:实验数据显示,随培养时间的延长实验组及对照组细胞均有不同程度的增殖(One-way ANOVA方差分析,结果显示各组P均<0.05)。同时观察到随培养时间的延长各组之间细胞的增殖并不同步,实验组较对照组细胞生长缓慢,特别是在培养72h之后,差异更为显著(P=0.000),可见rhIL-21抑制了NK-92MI细胞的正常增殖,但并未看到呈药物浓度梯度依赖性抑制,统计学显示各实验组之间差别无统计学意义(P<0.05)。结果如表2所示。

表2 不同浓度rh IL-21对NK-92M I增殖的影响

2.rhIL-21对NK-92MI细胞凋亡的影响:鉴于结果1所示,不同剂量rhIL-21对NK-92MI细胞的增殖有不同程度的抑制,我们选择既能发挥药效又不至于过度抑制细胞生长的剂量(50ng/ml)进行后续试验研究。在50ng/ml rhIL-21培养NK-92MI 48h和72h后,Anexin V和PI染色显示,实验组和对照组细胞凋亡率的差别无统计学意义(48h,P=0.947; 72h,P=0.325),且不随培养时间的延长而增加,即50ng/ml rhIL-21并未增加NK-92MI细胞的凋亡。结果如表3所示。

表3 rh IL-21对NK-92M I凋亡的影响(%)

3.rhIL-21对NK-92MI细胞细胞毒效应的影响:以50ng/ml浓度的rhIL-21预处理NK-92MI 48h后,观察NK-92MI细胞毒效应的改变。结果显示在效靶比为5∶1、2.5∶1、1.25∶1时,50ng/ml能增强NK-92MI细胞的细胞毒活性(P<0.05)。结果如图1所示。

图1 rh IL-21对NK-92M I细胞毒效应的影响

4.rhIL-21对NK-92MI细胞相关基因表达的影响:RT-PCR结果显示,50ng/ml rhIL-21能够促进NK细胞细胞毒效应相关基因如颗粒酶-B (274bp)、穿孔素(511bp)、IFN-γ(339bp)以及NK细胞表面活化型受体NKG2D基因(416bp)mRNA的表达,且均呈时间依赖性表达增强(P<0.05),见图2,用Quantity one软件分析目的基因与β-actin的灰度比值见表4。

图2 RT-PCR鉴定NK-92M I细胞活化相关基因表达

5.rhIL-21对NK-92MI细胞表面NKG2D受体及胞质颗粒酶-B蛋白的调节:50ng/m l rh IL-21处理NK-92MI细胞48h后,细胞表面NKG2D受体的平均荧光强度及胞质颗粒酶-B蛋白的表达均明显增强(NKG2D,P=0.00;颗粒酶-B,P=0.00),如图3及表5所示。

表4 不同时间目的基因的表达量变化

图3 流式细胞术检测NK-92M I细胞表面NKG2D受体及胞内颗粒酶-B的表达

表5 NKG2D及颗粒酶-B蛋白平均荧光强度的变化

6.rhIL-21对NK-92MI细胞IFN-γ分泌的影响:根据 ELISA标准曲线公式(y=755.81x2-721.46x+139.66,r2=0.9551)计算相应吸光度值对应的IFN-γ浓度。随培养时间的延长,两组细胞分泌IFN-γ水平均有升高(实验组P=0.000,对照组P=0.000)。但与对照组比较,50ng/ml rhIL-21药物处理组细胞分泌IFN-γ的能力在24h和48h时,均明显高于对照组(24h P=0.020,48h P=0.002);而在12h时两组相比,分泌IFN-γ水平无显著性差异(P=0.173),如图4所示。

图4 50ng/m l rh IL-21对IFN-γ分泌的影响

讨论

自Parrish-Novak等[1]报道IL-21对NK细胞的研究以来,有较多关于IL-21对人及鼠NK细胞增殖、免疫调节及抗肿瘤效应等各方面的研究。针对IL-21对NK细胞增殖的研究,有报道表明IL-21能抑制IL-15或IL-2活化的鼠NK细胞的增殖,并能促使NK细胞通过经典的凋亡途径发生凋亡[4,7]。虽然种属不同,但与本研究rhIL-21能不同程度抑制NK-92MI细胞增殖的结果相近。然而这种生长抑制不是NK-92MI细胞凋亡率增加的结果,本研究并未发现rhIL-21培养组和对照组在NK-92MI生长48h后,Annexin V+/PI+双阳性细胞百分率的差异。这同Skak等[8]报道的,IL-21能促进人外周血纯化的NK细胞的存活率结果相吻合,或者至少证明了IL-21不会促进人NK细胞的凋亡。

作为具有天然抗肿瘤活性的NK细胞,其细胞毒效应可受多种细胞因子的调节。研究IL-21对NK细胞细胞毒效应的影响,是IL-21对NK细胞各种免疫调节的综合体现。本研究结果表明50ng/ml浓度的rhIL-21均能显著增强NK-92MI细胞对靶细胞K-562的细胞毒效应,这与Skak等[8]的研究结果一致,尽管也有其他研究结果与此不同,但多数研究支持 IL-21能增强 NK细胞细胞毒效应的结论[5~8]。传统理论认为NK细胞的活化是细胞表面活化型受体和抑制型受体综合作用的结果,因此本实验分别从基因和蛋白质水平上检测了rhIl-21对NK-92MI细胞表面主要活化型受体NKG2D的调节。结果表明,50ng/ml的rhIl-21能逐渐增强NKG2D基因mRNA的表达,并能显著增强培养48h后NK-92MI细胞表面NKG2D受体的平均荧光强度。Skak等[8]报道IL-21能增强外周血单个核细胞中NK细胞表面细胞毒效应受体NKp46、活化型受体NKG2D及抑制型受体CD94和NKG2A不同程度的表达上调,而最终表现为细胞毒活性的增强。而 Burgess等[6]曾报道IL-21通过下调纯化人primary NK细胞表面NKG2D/DAP10的表达,而抑制primary NK细胞通过NKG2D和其配体介导的细胞毒活性。这种结果的差异是否由不同细胞系造成?有待于体内实验或更多实验进一步验证。

RT-PCR结果显示IFN-γ、穿孔素及颗粒酶的表达随rhIL-21培养时间的延长而逐渐增强,且IFN-γ的分泌及颗粒酶蛋白表达水平也明显增强。这进一步验证了NK-92MI被rhIL-21活化后细胞毒效应的增强机制。IFN-γ是在细胞免疫中发挥关键调节作用的细胞因子,显然rhIL-21促进NK-92MI细胞分泌的IFN-γ,进一步增强了细胞免疫能力。这有利于在肿瘤免疫中机体抗肿瘤免疫的能力,但也可能导致机体过度免疫而产生自身免疫性疾病。当然机体的免疫平衡的维持靠复杂的细胞因子网络的调节。曾有研究表明高浓度的IFN-γ能下调人NK细胞活化型受体NKG2D基因及蛋白水平的表达,IL-21可以通过对转录因子Eomesodermin的抑制而下调CD4+T细胞分泌IFN-γ能力。

通过本实验的研究,进一步认识了IL-21对人NK细胞免疫调节作用,然而对单纯的体外实验和细胞系研究并不能模拟人体复杂的微环境,实验结果不能完全揭示疾病状态下IL-21对NK细胞的调节。因此通过对自身免疫性疾病或肿瘤患者机体免疫状态的检测、细胞因子的分析及精细的体内实验的研究,观察IL-21在相关疾病中所扮演的角色,将对全面认识IL-21生物学活性非常重要。

1 Parrish-Novak J,Dillon SR,Nelson A,et al.Interleukin 21 and its receptor are involved in NK cell expansion and regulation of lymphocyte function[J].Nature,2000,408(6808):57-63

2 Coquet JM,Kyparissoudis K,PellicciDG,etal.IL-21 is produced by NKT cells and modulates NKT cell activation and cytokine production[J].J Immunol,2007,178(5):2827-2834

3 Habib T,Senadheera S,Weinberg K,et al.The common gamma chain (gamma c)is a required signaling component of the IL-21 receptor and supports IL-21-induced cell proliferation via JAK3[J].Biochemistry,2002,41(27):8725-8731

4 Kasaian MT,Whitters MJ,Carter LL,et al.IL-21 limits NK cell responses and promotes antigen-specific T cell activation:amediator of the transition from innate to adaptive immunity[J].Immunity,2002,16(4):559-569

5 Takaki R,Hayakawa Y,Nelson A,et al.IL-21 enhances tumor rejection through a NKG2D-dependent mechanism[J].J Immunol,2005,175(4):2167-2173

6 Burgess SJ,Marusina A I,Pathmanathan I,etal.IL-21 down-regulates NKG2D/DAP10 expression on human NK and CD8+T cells[J].J Immunol,2006,176(3):1490-1497

7 Brady J,Hayakawa Y,Smyth MJ,et al.IL-21 induces the functionalmaturation ofmurine NK cells[J].JImmunol,2004,172(4): 2048-2058

8 Skak K,Frederiksen KS,Lundsgaard D.Interleukin-21 activates human natural killer cells andmodulates their surface receptor expression[J].Immunology,2008,123(4):575-583

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