狗牙根抗盐性评价及抗盐机理研究进展
2012-03-31陈静波刘建秀
陈静波,刘建秀
(1.江苏省中国科学院植物研究所 南京中山植物园,江苏 南京210014;2.南京农业大学园艺系,江苏 南京210095)
狗牙根属(Cynodonspp.)植物属于禾本科虎尾草亚科虎尾草族,全世界约有10个种,我国产2种,包括狗牙根(C.dactylon)和弯穗狗牙根(C.arcuatus),其中狗牙根是一种世界广布种,广泛分布于全世界温暖地区,在我国主要分布于黄河以南各省,在新疆、西藏等西北高原地区也有一些分布,栽培上已经推广到北京附近[1],多生长于农田、路边、河岸、荒坡山地以及沿海和内陆的盐碱地,其生境极具多样化,因此存在很大的种内变异。狗牙根是一类多年生草本植物,具有发达的匍匐茎和根状茎,生长速度快,耐践踏,抗旱抗盐,耐重金属,因此是最常用的暖季型草坪草之一,广泛应用于热带、亚热带以及暖温带的运动场、公园、公路边以及小区等地区绿化,同时也是一种很好的水土保持和牧草植物[2]。草坪应用中最常用的狗牙根属植物包括狗牙根和杂交狗牙根,其中杂交狗牙根是狗牙根和非洲狗牙根(C.transvaalensis)的杂交后代。
盐碱化是一个全球性的问题,已经严重影响了农业生产的发展[3-6]。从1954年Gausman等[7]开始研究狗牙根的抗盐性到现在,已经过了半个多世纪,对狗牙根的抗盐性认识取得了不少进步,但这个进步显得过于缓慢,与狗牙根这种具有草坪草、牧草、水土保持以及生态修复等多重功能的草种不相适应。结合其他植物上已经取得的抗盐机理研究成果,主要从狗牙根抗盐评价和抗盐机理角度对国内外狗牙根抗盐性研究进行了综述,分析了已经取得的成就,同时指出了存在的问题,以期为加快狗牙根抗盐性研究,推动其在盐碱地利用提供一定的参考。
1 狗牙根的抗盐性评价
1.1 抗盐性的评价方法
抗盐评价是植物抗盐育种和抗盐机理研究一项最基础的工作。植物的抗盐性评价是一个复杂的问题,因为影响植物抗盐性的因素很多,如评价指标、培养方法、处理盐度和盐的种类、盐处理的时间、修剪程度、基质的营养状况、通气状况和pH、环境温湿度、光照强度和光周期等。同一个植物材料,不同的研究者在不同的地区和时间,采用不同的评价程序,其评价结果可能会有较大差异,因此抗盐性评价结果只是一个相对的结果,即抗盐性是相对的。目前狗牙根抗盐评价方法主要有室内控制条件下的水培法[8]和盆栽土培法[9],以及室外自然条件下的盐碱地选择法[10,11]等,其中水培法应用较多。
Lee等[12]、Chen等[13]认为,对于一些抗盐性较强的暖季型草坪草(包括狗牙根),处理盐度过低(<30dS/m)不能很好区分它们的抗盐性。Dudeck等[14]研究狗牙根的抗盐性时发现小于9.9dS/m的盐度不能区分8个狗牙根品种的抗盐性。Adavi等[15]也发现用10dS/m的盐水灌溉10个狗牙根品种,虽然品种间的表现有一定的差异,但差异不显著。陈静波等[16]对18份狗牙根优良选系和品种的抗盐性研究表明,以叶片枯黄率上升到50%时的盐度(S50%)为指标,参试材料的S50%平均为18.2g/L。
盐处理时间对草的表现也有很大差异。陈静波等[17]认为在短期和长期盐胁迫后的实际生长表现上不一致,长期盐胁迫对草坪草的伤害要大得多,但总体而言,待试材料短期盐处理的和长期盐处理的相对抗盐性是相对一致的,通过简单快速的短期盐处理实验能够很好区分不同草的抗盐性差异。
综合前人的研究结果,认为进行狗牙根大量资源抗盐评价时,采用室内水培实验,处理水溶液盐度(NaCl)应控制在15~20g/L(或200~400mmol/L)左右,处理时间约为1~2个月,能够简单高效地区分参试材料间的抗盐性。
1.2 狗牙根属内及与其他草种间的抗盐性比较
1.2.1 狗牙根属内的抗盐性比较 狗牙根属内不同品种或种源间的抗盐性差异很大。研究最早的是在1967年,Youngner和Lunt[18]比较了9个狗牙根品种在不同盐度下的地上部分和根系生长的变化,发现Sunturf和Tifway的抗盐性最强。Dudeck等[14]发现8个狗牙根品种中,Tifdwarf和Tifgreen抗盐性最强,Tifway等中等,Common和Ormond最弱。Marcum和Pessarakli[8]对35个狗牙根品种的抗盐性研究表明,不同的狗牙根品种差异也很大,枝叶干重下降到50%的盐度变化范围为26~40dS/m。Bauer等[19]对12个杂交狗牙根的抗盐性研究认为,FloraDwarf、Champion Dwarf、Novotek以及 TifEagle的抗盐性最强,而Patriot、Santa Ana、Tifgreen和TifSport最弱。王红玲等[20]用Na2SO4处理4个狗牙根品种,发现抗盐性为新农一号狗牙根>喀什狗牙根>C-3狗牙根>矮生天堂草。陈静波等[16]以叶片枯黄率上升到50%时的盐度(S50%)为指标,18份狗牙根草坪草优良选系和品种的S50%平均为18.2g/L,变异系数为29%,其中狗牙根的S50%平均为17.5g/L,变异系数为38%,杂交狗牙根S50%平均为19.1g/L,变异系数为15%,除C158、南京狗牙根和C610外,多数选系(品种)的抗盐性比对照品种Tifgreen和Tifdwarf强。Francois[21]发现来自以色列死海附近的材料Tifton 86抗盐性最强,其次为TifwayⅡ,最弱的为来自中国南方的 Tifton 10。Ramakrishnan和 Nagpal[22]、Hameed和 Ashraf[23]、Akram等[24]以及周霞等[25]研究均发现来自盐碱地生境的狗牙根生态型具有较强的抗盐性。Lu等[26]对狗牙根Tifeagle的愈伤组织进行0.3mol/L的NaCl处理,获得了一些抗盐体细胞突变体,盐胁迫下这些突变体的生长量更高,叶片伤害更小,表明抗盐性有所提高。这说明通过体细胞定向诱变(盐胁迫)的育种方法,可以提高狗牙根的抗盐性。这些研究为狗牙根抗盐性育种提供了一定的理论依据。通过广泛收集自然生长于盐碱地(包括海边盐碱地和内陆盐碱地)的狗牙根资源抗盐性评价能够得到抗盐性相对较强的育种材料,然后通过一定的常规育种手段(如杂交育种)或现代分子生物学技术(如基因克隆),最终选育到抗盐优质的狗牙根新品种或挖掘到抗逆功能基因资源。
1.2.2 狗牙根与其他草种间的抗盐性比较 早在1954年,Gausman等[7]就报道田间盐水灌溉条件下,在5种测试的草中,狗牙根具有较高的抗盐性,仅次于虎尾草(Chloris gayana)。Marcum和 Murdoch[27]通过水培法研究表明,沟叶结缕草(Zoysia matrella)、海雀稗(Paspalum vaginatum)和钝叶草(Stenotaphrum secundatum)的抗盐性最强,杂交狗牙根(C.dactylon×C.transvaalensis)中等,结缕草(Z.japonica)对盐敏感,而假俭草(Eremochloa ophiuroides)对盐非常敏感。同样的水培条件下,Marcum[28]发现抗盐性盐草(Distichlis spicata var.stricta)>碱地鼠尾粟(Sporobolus airoides)>狗牙根=结缕草>砂地鼠尾粟(Sporobolus cryptandrus)>野牛草(Buchloe dactyloides)> 垂 穗 草 (Bouteloua curtipendula)。其 后,Lee等[29]、Marcum 等[30]、Pessarakli和Touchane[31]、陈静波等[9,16,32]、刘一明等[33]研究都得到了与前面类似的结果,认为在室内控制环境的水培或土培条件下,狗牙根的抗盐性较强,但在测试的暖季型草种间均处于中等。
程云辉等[10]对苜蓿(Medicago sativa)、油葵(Helianthus annuus)、高羊茅(Festuca arundinacea)和狗牙根等在沿海滩涂盐渍化地上进行了筛选试验,结果表明只有狗牙根C121能在重度盐渍化地上生长。宗俊勤等[11]在含盐0.40%~0.52%的海边重盐土上种植不同暖季型草坪草发现,所有测试的草坪草均能存活,其中海雀稗P006和沟叶结缕草Z014的抗盐性强于所有狗牙根,与前期的室内水培抗盐评价结果基本一致[16],但结缕草Z080和Z008的抗盐性也强于所有狗牙根,而在水培实验中的结缕草Z080和Z008的抗盐性几乎弱于所有狗牙根材料[16],并且室内土培环境下长期盐处理实验中也证明Z080的抗盐性显著差于狗牙根C291[13]。这些盐碱地的田间抗盐性评价结果,一方面说明狗牙根抗盐性较强,能够在重盐碱地上建植,另一方面也说明室内的抗盐评价结果有时候会与盐碱地的实际种植表现有差异,因为室内实验的影响因素比较单一,只有盐度差异,其他生长条件往往控制最适合状态,而盐碱地除了盐度这个因素外,还存在其他可能的胁迫因素,如养分、水分、温度、pH以及盐离子组成等。一个草种能否在盐碱地使用,必须要通过盐碱地的多年多点种植表现观察后才能确定,而不能仅凭室内的评价实验。
根据上面分析可以看出,狗牙根作为一种常用的草坪和牧草,在盐碱地建植或盐水(包括再生水)灌溉中具有很高的应用潜力。虽然少数草种(如沟叶结缕草、海雀稗、钝叶草等)的抗盐性比狗牙根强,但这些草种主要分布在南方,抗寒性较弱,在长江以北地区存在绿期短,甚至无法越冬问题。因此在长江以北的狗牙根适应区域,其在盐碱地改良中具有更加显著重要的地位。
2 狗牙根的抗盐机理
2.1 离子调控机制
离子胁迫是最主要的一种盐胁迫。当根际盐离子浓度超出正常范围时,一方面大量的盐离子会抑制与盐离子结构相近的营养离子吸收(如土壤中过量的Na会造成植物体内K离子的亏缺),造成植物体内某些营养元素缺乏,抑制植物生长;另一方面,大量盐离子进入细胞后,如果细胞无法及时清除进入细胞质的盐离子,会对细胞质内的细胞器、各种酶类、DNA和细胞膜结构及上面的膜蛋白产生毒害,降低细胞的活性和膜的选择性,从而加剧离子胁迫,严重时造成细胞死亡[34-37]。一些研究表明,狗牙根抗盐基因型枝叶通常能够维持较低的Na含量,较高的K含量和K/Na[13,23,26,38]。狗牙根进行离子调控(主要指K、Na离子的调控)的可能途径主要有控制离子吸收和运输、离子在体内的分配以及盐离子的分泌等。
2.1.1 根系对离子的吸收和排除 在盐渍土壤中高浓度的盐离子可以通过被动吸收和主动吸收进入植物根系。通过根系减少盐离子吸收并增加营养离子的选择性吸收,可以提高植物对盐胁迫的抵抗力。Peng等[39]对禾本科盐生植物碱茅(Puccinellia tenuiflora)的研究表明,碱茅根系通过物理障碍凯氏带、Na/K选择性吸收的K离子通道等来提高营养元素K的吸收并减少盐离子Na的吸收,从而减少叶片对Na的积累并维持K平衡。在棉花(Gossypium hirsutum)上也报道盐处理可以加速其幼苗凯氏带的形成[40]。王红玲等[20]发现4个狗牙根品种均在土壤含盐量(Na2SO4)1.2%时根系对K的选择性吸收能力最强,其中抗盐性最强的新农一号选择性在品种间最强。这种选择吸收可能与盐促进根系生长有关[18,31],但缺乏具体的实验证据。而Maathuis和Amtmann[41]以及Zhang等[34]认为植物对Na、K的选择性吸收与根细胞质膜上的不同离子转运蛋白对Na、K离子透过能力不同造成的。
根系吸收的Na离子主要有3种去向,一种是留在根系中,一种是通过木质部运往地上部,还有一种是通过根系表皮细胞质膜上的Na+/H+逆向转运蛋白排到环境中[42,43]。Bradley和 Morris[44]认为泌盐盐生植物互花米草(Spartina alterniflora)大约91%~97%的离子最大理论吸收量通过根系来排除,即便其具有很强的叶片离子分泌能力。拟南芥的质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因SOS1已被克隆[45],并且在拟南芥(Arabidopsis thaliana)中过量表达SOS1显著提高了转基因植株的耐盐性[46,47]。狗牙根抗盐基因型枝叶能够维持较低的Na含量,较高的K含量和K/Na[13,23,26,38],是否存在 Na从根系排出机制,如果有,怎么排出,这些问题目前还不清楚,亟待解决。
2.1.2 离子在体内的选择性运输 进入木质部的盐分随着水分(蒸腾流)可以从根部运输到地上部分,最后随水分的蒸腾而残留在叶片。也就是说,只要植物在生长、有蒸腾作用,就会有源源不断的离子通过根系转运到叶片,并进行积累,最终产生毒害。因此,减少蒸腾流量(通过气孔开闭来调节)、离子在木质部运输过程中通过木质部薄壁细胞等对离子的再吸收以及韧皮部中Na+的回流等机制,可以减少盐离子往叶片的运输和积累[42,48]。离子选择性运输机制可以发生在从成熟的根[49]、茎基部[50]、一直到地上部分[51]等地方。Ren等[52]克隆到水稻(Ory-za sativa)上的一个抗盐基因SKC1,并证明这个基因在木质部的薄壁细胞表达,并具有Na/K选择活性,对减少水稻叶片Na积累提高抗盐性起关键作用。Chen等[13]发现盐胁迫下狗牙根根系的Na含量高于K,而叶片中的Na含量低于K,认为狗牙根可能也存在类似的离子选择运输效应,即选择K往叶片运输,但其进行离子选择运输的主要部位以及主要调控基因还需要进一步明确。
2.1.3 离子在体内的再分配 进入植物体内的盐离子可以通过器官、组织和细胞水平的再分配来进行离子调节。一些植物如芦苇(Phragmites australis)、海雀稗等可以通过把盐离子隔离在地下部分[13,53]、老的叶片等器官[54]。在组织水平上,通常把盐离子隔离在根系和茎等地方的薄壁细胞组织(如根系的皮层等),减少在分生组织和光合组织等对盐敏感的组织中积累[39,52]。而把盐离子隔离在液泡和质外体,减少在细胞质中积累,是细胞水平的抗盐关键机理,也是目前植物抗盐机理研究最多的部分[55,56]。液泡Na+/H+逆向转运蛋白在这个过程中起重要作用。目前对一些液泡Na+/H+逆向转运蛋白基因的克隆和表达分析研究证明,通过过量表达Na+/H+逆向转运蛋白,能显著提高转基因植物的抗盐性。这一点已经在狗牙根的近缘植物獐毛(Aeluropus littoralis var.sinensis)上得到证实[57]。生长于盐碱地的狗牙根在盐胁迫下根系和茎的皮层组织和髓部薄壁组织的面积增加[58],可能在组织水平上有利于盐离子的隔离,但缺乏生理学和分子生物学的证据。
2.1.4 盐腺离子分泌 狗牙根的叶片上具有一种特殊的双细胞结构叫盐腺,有向体外分泌盐分的功能[59]。狗牙根的盐腺结构以及分泌活性是其研究最多的离子调控机理。
盐腺由下部一个较大的瓶状的基细胞和上部一个小圆顶状的帽细胞组成。基细胞与周围的表皮细胞相邻,并有丰富的胞间连丝与之相连,突出表皮部分的细胞壁上有角质层,与周围表皮细胞的角质层连成一体,但不侵入到表皮以下的侧壁上。与紧密而有条纹的基细胞壁不一样,帽细胞的细胞壁显得比较疏松,看上去呈斑点状。帽细胞除了与基细胞相连的细胞壁外,其余朝外的细胞壁外均由一层角质层覆盖,并与基细胞的角质层连成一体。基细胞的细胞质中有复杂的双层膜系统,称为隔膜。隔膜的一端连接到基细胞与帽细胞相连处的细胞壁上并开口,另一端游离在细胞质中并闭合。隔膜上附着有大量线粒体和微管。基细胞与帽细胞相连处的细胞壁存在大量胞间连丝,其余部分全部严重木质化,物质不能透过。不分泌盐时,帽细胞内具有一个大的细胞核、一些小液泡等细胞器,并且细胞顶部的角质层与细胞壁不分离,此部分的角质层上还具有一些孔。而正在分泌的帽细胞质内产生一些大的液泡,并且细胞顶部的角质层与细胞壁分离,呈弧形,在两者之间形成一个腔,称为收集室[60-62]。
根据上面的盐腺结构特点以及镧示踪实验(一种质外体示踪元素)[61-66],综合其他禾本科植物一些研究,认为狗牙根盐腺分泌盐离子的可能过程为:盐腺周围细胞中的离子,通过质外体途径到达基细胞与帽细胞交界处的细胞壁,然后进入隔膜,再排入基细胞的细胞质中,期间可能需要消耗能量(是个主动过程),同时周围细胞中的离子也可以利用共质体途径即通过胞间连丝直接进入基细胞的细胞质;离子在基细胞的细胞质中积累浓缩,并通过基细胞与帽细胞间的胞间连丝直接进入帽细胞,或装入小液泡后再运输到帽细胞;进入帽细胞的离子泵入液泡,期间可能一些小液泡合并成大液泡,离子进一步浓缩;液泡移动到细胞顶部,然后通过顶部细胞壁的孔(斑点处)把浓盐液排到胞外;角质层鼓起,形成收集室,收集室内的盐液收集到一定程度后由于水压作用,盐液通过小孔被排到角质层外面;叶片表面的盐液在干燥的空气中逐步失水结晶,形成肉眼可见的盐晶。
狗牙根的盐腺主要分布在叶片的远轴面,并且叶片的中部比基部和顶部多[64]。盐腺对离子的分泌具有一定的选择性,对盐离子(Na、Cl)的分泌能力强,而对K、Ca、Mg等营养元素的分泌能力很弱[66]。狗牙根盐腺的分泌能力比大米草(Spartina anglica)、盐草、盐地鼠尾粟(Sporobolus virginicus)、沟叶结缕草、细叶结缕草(Z.tenuifolia)、结缕草等植物弱,而比野牛草、垂穗草等植物强[13,28,59,65]。盐分泌能力除受单位叶面积上的盐腺数量影响外,还与这些植物的盐腺结构有关,一般盐腺陷入叶片表皮内并且细胞粗短的植物盐分泌能力强,而突出表皮并且细胞细长的分泌能力弱[59],如果基细胞中没有隔膜,则这种禾本科叶片表面的双细胞结构没有分泌能力[66]。狗牙根的盐腺呈半下陷状态[60],因此盐分泌能力处于中等。狗牙根的盐分泌能力存在基因型差异,一些基因型的分泌能力强,如品种‘FloraTex’的分泌量为20.60(mg Na+/g叶干重·周),而一些基因型分泌能力比较弱,如‘Sultan’分泌仅1.41(mg Na+/g叶干重·周),而且盐分泌能力越强的基因型体内积累的盐离子越少,抗盐性越强,如‘FloraTex’叶片内的 Na含量为5.56(mg Na+/g叶干重),而‘Sultan’积累了15.18(mg Na+/g叶干重)[8]。
环境因素也会影响狗牙根盐腺的分泌能力。在一定盐度范围内,盐的分泌能力随盐度升高而增加,但超过一定盐度后分泌能力又下降[64],可能此时植株受到盐害过重,致使整个植株的代谢能力下降造成的。当处理溶液的离子总浓度一定,而K/Na增加时,K的分泌量增加,而Na的分泌量减少[64]。环境湿度高时(如相对湿度99%)盐腺的分泌能力比相对湿度低时(如60%)高,但是湿度高时分泌的盐液不会结晶,呈液体状,而干燥环境下容易在叶片表面观察到盐晶[64]。在狗牙根的一些近缘植物上还发现,光促进在獐毛盐腺的分泌,认为是一种间接的影响,可能是由于光通过促进蒸腾流而促进盐往叶片的转运引起的[67];盐腺抑制剂苯磺酸胆碱能抑制獐毛盐腺对盐分的分泌[68];盐处理不会诱导结缕草叶片上盐腺的数量增加,说明盐腺数量主要受植物本身基因控制[69],但6-BA处理能增加虎尾草叶片的盐腺数量[70]。狗牙根上是否也存在这些特性缺乏实验证据。
2.1.5 气孔调节 如前所述,盐分随蒸腾流进入叶片,最后随水分的蒸腾而残留在叶片产生毒害。因此,在盐条件下缺乏关闭气孔的能力是一些植物对含盐土壤敏感的一个重要原因[48]。例如,一种耐盐的紫菀(Aster tripolium)之所以能够生长在盐环境中,是因为当叶片质外体中存在Na+时能够关闭气孔,而A.amellus对盐敏感是由于Na+可以抑制气孔的关闭[48]。2个抗盐性不同的狗牙根在盐胁迫下光合效率、气孔导度、胞间CO2浓度、蒸腾率均显著下降,但抗盐型较盐敏感型下降慢[23]。盐胁迫下气孔无法关闭,会因为蒸腾流过大,导致叶片迅速积累盐离子而产生毒害,但气孔关闭会减少气体交换而抑制光合作用,减少光合产物积累并增加活性氧的产生。因此盐胁迫下气孔并不是简单地关闭或张开或者某个中间状态就能说明对植物的抗盐性的利弊,而是只有在防止叶片盐分积累的前提下,把气孔导度调整到最大开度,才能平衡离子积累和气体交换(光合作用)之间的矛盾。
狗牙根的抗盐基因型尽管在盐胁迫下具有更高的气孔导度,导致了蒸腾增加,因此具有更高的离子积累的风险,但可能具有更强的盐离子选择性吸收和转运、盐离子在液泡的隔离以及盐腺分泌盐离子能力,可以减少叶片细胞质中盐离子的积累,回避了由于蒸腾增加导致的盐离子积累风险。另一方面,气孔导度的增加,提高了胞间CO2浓度,增加了光合效率,使其具有更高的枝叶和根系生长,最终表现为抗盐性提高。
2.2 渗透调节
由于大量盐溶解于土壤水溶液后,使其浓度增加,水势下降,引起植物吸水困难,因此渗透胁迫是盐胁迫下狗牙根受到的另一种最主要胁迫,这也是盐胁迫与干旱胁迫具有一些共同特点的原因。狗牙根在渗透胁迫下会做出一系列的生理反应,来降低细胞的渗透势,抵御外界的渗透胁迫,包括积累渗透调节物质和减少细胞含水量等几种方法[62]。盐胁迫下的渗透调节物质分为可溶性有机物和无机离子2类[71]。
植物受到渗透胁迫时用于渗透调节的常见可溶性有机物有脯氨酸、甜菜碱、可溶性糖等,主要分布在细胞质内。Hameed和Ashraf[23]对不同抗盐性的2个生态型狗牙根进行盐胁迫处理后发现,总的游离氨基酸、总的可溶性蛋白、脯氨酸和总的可溶性糖均随处理盐度增加而增加,而且抗盐性强的生态型增幅更大,认为这些物质在狗牙根盐胁迫下的渗透调节中起重要作用。Lu等[26]利用愈伤组织进行盐胁迫后产生的体细胞突变体发现,抗盐性得到提高的突变体其盐胁迫后体内的脯氨酸含量比原来的亲本高。Marcun和Murdoch[65]对包括狗牙根在内的6种C4草研究认为,脯氨酸和甜菜碱均对提高这些草(除假俭草)在盐胁迫下的渗透调节有显著的作用,但后来Marcum[28]研究发现尽管盐胁迫下脯氨酸和甜菜碱均呈增加的趋势,但两者对狗牙根叶片细胞渗透势的贡献分别为2.7%和39.2%,综合其他不同抗盐性草种的结果,认为甜菜碱是一种最主要的渗透调节物质,而脯氨酸对渗透势的贡献很小,而且可能是一种受害的指标。Hameed和Ashraf[23]发现渗透势和水势虽然也随盐度增加而下降,但抗盐性强的生态型变化比较小。Marcum[28]对7种虎尾草亚科植物研究也发现,草的抗盐性与渗透势呈负相关。后来Marcum等[72]在8个盐草生态型的抗盐机理研究中认为,在完成渗透调节的前提下,进行最小的渗透调节,是草抗盐性强的特征。
无机离子作为一类主要的渗透调节物质,主要分布在液泡中,并主要通过液泡Na+/H+逆向转运蛋白等来完成[56]。在同为禾本科C4植物的海雀稗上,Lee等[73]认为一些无机离子如Na、Cl、K等对渗透调节起重要作用,在不同基因型中所起的贡献达到57%~97%,远高于有机渗透调节物质的贡献(仅为19%~22%)。但在狗牙根上,还缺乏无机离子对渗透势贡献的研究。盐胁迫下植物进行渗透调节,合成一些有机渗透调节物质需要消耗大量的能量和光合产物,而通过在液泡中积累盐离子,可以在消耗较少能量的前提下完成渗透调节,从而提高其抗盐性[74]。
另外,在盐胁迫实验中,通常能发现在1~3个月中低盐处理下(期间根系不进行剪除),狗牙根的根系生长(长度和重量)受到促进[18,27,28,32],但长期盐胁迫(9个月)后没有这种促进现象发生[9]。相同的是,狗牙根的根系在干旱条件下(即渗透胁迫下)也存在类似的生长被促进现象[75]。因此,盐胁迫促进狗牙根根系生长可能是一种短期的应激反应,而这种反应可能与根际盐度增加引起的渗透胁迫有关。
3 问题与展望
评价是植物育种程序中一个最基础的工作。在狗牙根抗盐评价上,目前已经取得了一定的成就。许多学者对一些狗牙根品种(系)研究表明,狗牙根基因型间存在很大的抗盐性差异,并筛选到一些抗盐性强的资源。这些抗盐评价结果,为下一步开展狗牙根抗盐性育种和抗盐机理的开展提供了很好的资源背景知识。同时,筛选到的抗盐优质狗牙根品种(系),可以直接服务于盐碱地的绿化、生态建设和畜牧业发展。
在狗牙根抗盐机理上,通过Na/K的选择运输、盐腺分泌盐离子来减少盐离子在功能叶积累和气孔调节是狗牙根进行离子调控的主要机理。除狗牙根的盐腺研究较多外,其他如根系如何吸收和排出离子、选择性运输的部位、体内如何进行离子的再分配、盐分泌活性的环境调节因素等还需要进一步的研究。在渗透调节上,目前的研究均发现盐胁迫能显著提高甜菜碱、脯氨酸等高耗能的有机渗透调节物质合成,且抗盐性强的含量高,但脯氨酸在盐胁迫下起什么作用,是否还存在其他重要的有机渗透调节物质,以及各种渗透调节物质(尤其是无机离子)对渗透势的贡献等均未做研究。而如何协调高耗能的有机渗透调节物质合成和低耗能的离子积累来进行渗透调节,以及如何解决减少离子积累引起的毒害和积累低耗能的离子进行渗透调节间的矛盾等问题,均没有圆满的答案。狗牙根抗盐有关的一些关键基因的明确、克隆、定位及表达状况方面的研究更少。像SOS1、NHX、HKT1等一些植物抗盐关键基因已经在许多植物上得到克隆和表达验证,但在狗牙根上缺乏证据。通过对盐胁迫下的基因诱导表达状况研究以及已知是植物抗盐有关基因的克隆和转化研究,有利于从分子水平进一步认识狗牙根的抗盐机理,是今后抗盐机理研究领域的关键方向。
[1] 齐晓芳,张新全,凌瑶,等.我国狗牙根种质资源研究进展[J].草业科学,2011,28(3):444-448.
[2] 刘伟,张新全,Wu Y Q,等.狗牙根属植物多样性与品种选育研究概况[J].园艺学报,2003,30(5):623-628.
[3] 赵祥,谢开云,王妍君,等.晋北盐碱化草地群落斑块的多样性[J].草业学报,2011,20(4):51-60.
[4] 杜利霞,董宽虎,杨桂英,等.不同盐碱化草地对披碱草光合生理特性的影响[J].草业学报,2011,20(5):49-56.
[5] 马江涛,王宗礼,黄东光,等.基因工程在牧草培育中的应用[J].草业学报,2010,19(6):248-262.
[6] 王舟,刘建秀.DREB/CBF类转录因子研究进展及其在草坪草和牧草抗逆基因工程中的应用[J].草业学报,2011,20(1):222-236.
[7] Gausman H W,Cowley W R,Barton S H.Reaction of some grasses to artificial salinization[J].Agronomy Journal,1954,46:412-414.
[8] Marcum K B,Pessarakli M.Salinity tolerance and salt gland excretion efficiency of bermudagrass turf cultivars[J].Crop Science,2006,46:2571-2574.
[9] 陈静波,阎君,张婷婷,等.四种暖季型草坪草对长期盐胁迫的生长反应[J].草业学报,2008,17(5):30-36.
[10] 程云辉,周卫星,王永霞,等.沿海滩涂盐渍化地上几种耐盐牧草的筛选试验[J].江苏农业科学,2003,(3):61-63.
[11] 宗俊勤,陈静波,於朝广,等.部分暖季型草坪草品种(系)在沿海滩涂的生长适用性及其对土壤盐度的影响[J].植物资源与环境学报,2010,19(3):48-54.
[12] Lee G,Carrow R N,Duncan R R.Criteria for assessing salinity tolerance of the halophytic turfgrass seashore paspalum[J].Crop Science,2005,45(1):251-258.
[13] Chen J,Yan J,Qian Y,et al.Growth responses and ion regulation of four warm season turfgrasses to long-term salinity stress[J].Scientia Horticulturae,2009,122(4):620-625.
[14] Dudeck A E,Singh S,Giordano C E,et al.Effects of sodium chloride on Cynodon turfgrasses[J].Agronomy Journal,1983,75:927-930.
[15] Adavi Z,Razmjoo K,Mobli M.Salinity tolerance of bermudagrass(Cynodonspp.L.C.Rich)cultivars and shoot Na,K and Cl contents under a high saline environment[J].Journal of Horticultural Science & Biotechnology,2006,81(6):1074-1078.
[16] 陈静波,阎君,姜燕琴,等.暖季型草坪草优良选系和品种抗盐性的初步评价[J].草业学报,2009,18(5):107-114.
[17] 陈静波,张婷婷,阎君,等.短期和长期盐胁迫对暖季型草坪草新选系生长的影响[J].草业科学,2008,25(7):109-113.
[18] Youngner V B,Lunt O R.Salinity effects on roots and tops of Bermuda grass[J].Journal of the British Grassland Society,1967,22:257-259.
[19] Bauer B K,Poulter R E,Troughton A D,et al.Salinity tolerance of twelve hybrid bermudagrass[Cynodon dactylon (L.)Pers.x C.transvaalensis Burtt Davy]genotypes[J].International Turfgrass Society Research Journal,2009,11:313-326.
[20] 王红玲,阿不来提·阿不都热依木,齐曼.Na2SO4胁迫下狗牙根K+、Na+离子分布及其抗盐性的评价[J].中国草地,2004,26(5):37-42.
[21] Francois L E.Salinity effects on three turf bermudagrasses[J].HortScience,1988,23:706-708.
[22] Ramakrishnan P S,Nagpal R.Adaptation to excess salts in an alkaline soil population of Cynodon dactylon (L.)Pers.[J].Journal of Ecology,1973,61:369-381.
[23] Hameed M,Ashraf M.Physiological and biochemical adaptations of Cynodon dactylon (L.)Pers.from the Salt Range(Pakistan)to salinity stress[J].Flora,2008,203:683-694.
[24] Akram N,Shahbaz M,Athar H,et al.Morpho-physiological responses of two differently adapted populations of Cynodon dactylon (L.)Pers.and Cenchrus ciliaris L.to salt stress[J].Pakistan Journal of Botany,2006,38(5):1581-1588.
[25] 周霞,黄春琼,张绪元,等.狗牙根耐盐性材料初步筛选[J].热带农业科学,2010,30(4):20-24.
[26] Lu S,Peng X,Guo Z,et al.In vitro selection of salinity tolerant variants from triploid bermudagrass(Cynodon transvaalensis×C.dactylon)and their physiological responses to salt and drought stress[J].Plant Cell Reporters,2007,26(8):1413-1420.
[27] Marcum K B,Murdoch C L.Growth responses,ion relations,and osmotic adaptations of eleven C4turfgrasses to salinity[J].Agronomy Journal,1990,82:892-896.
[28] Marcum K B.Salinity tolerance mechanisms of grasses in the subfamily Chloridoideae[J].Crop science,1999,39:1153-1160.
[29] Lee G,Duncan R R,Carrow R N.Salinity tolerance of selected seashore paspalums and bermudagrasses:Root and verdure responses and criteria[J].HortScience,2004,39:1143-1147.
[30] Marcum K B,Pessarakli M,Kopec D M.Relative salinity tolerance of 21turf-type desert saltgrasses compared to bermudagrass[J].Hortscience,2005,40(3):827-829.
[31] Pessarakli M,Touchane H.Growth responses of bermudagrass and seashore paspalum under various levels of sodium chloride stress[J].Journal of Food Agriculture and Environment,2006,4(3&4):240-243.
[32] 陈静波,阎君,姜燕琴,等.NaC1胁迫对6种暖季型草坪草新选系生长的影响[J].植物资源与环境学报,2007,16(4):47-52.
[33] 刘一明,程凤枝,王齐,等.四种暖季型草坪植物的盐胁迫反应及其耐盐阈值[J].草业学报,2009,18(3):192-199.
[34] Zhang J L,Flowers T J,Wang S M.Mechanisms of sodium uptake by roots of higher plants[J].Plant and Soil,2010,326:45-60.
[35] Zhu J K.Plant salt tolerance[J].Trends in Plant Science,2001,6:66-71.
[36] 景艳霞,袁庆华.NaCl胁迫对苜蓿幼苗生长及不同器官中盐离子分布的影响[J].草业学报,2011,20(2):134-139.
[37] 王龙强,米永伟,蔺海明.盐胁迫对枸杞属两种植物幼苗离子吸收和分配的影响[J].草业学报,2011,20(4):129-136.
[38] Hameed M,Ashraf M,Naz N.Anatomical and physiological characteristics relating to ionic relations in some salt tolerant grasses from the Salt Range,Pakistan[J].Acta Physiologiae Plantarum,2011,33:1399-1409.
[39] Peng Y,Zhu Y,Mao Y,et al.Alkali grass resists salt stress through high K+and an endodermis barrier to Na+[J].Journal of Experimental Botany,2004,55:939-949.
[40] Reinhardt D H,Rost T L.Salinity accelerates endodermal development and induces an exodermis in cotton seedlings in cotton seedling roots[J].Environmental and Experimental Botany,1995,35:563-574.
[41] Maathuis F J M,Amtmann A.K+nutrition and Na+toxicity:The basis of cellular K+/Na+ratios[J].Annals of Botany,1999,84:123-133.
[42] Tester M,Davenport R.Na+tolerance and Na+transport in higher plants[J].Annals of Botany,2003,91:503-527.
[43] Blumwald E.Sodium transport and salt tolerance in plants[J].Current Opinion in Cell Biology,2000,12:431-434.
[44] Bradley P M,Morris J T.Relative importance of ion exclusion,secretion,and accumulation in Spartina alterniflora Loisel[J].Journal of Experimental Botany,1991,42:1525-1532.
[45] Shi H,Ishitani M,Kim C,et al.The Arabidopsis thaliana salt tolerance gene SOS1encodes a putative Na+/H+antiporter[J].Proceedings of the National Academy of Sciences USA,2000,97:6896-6901.
[46] Shi H,Lee B H,Wu S J,et al.Overexpression of a plasma membrane Na+/H+antiporter gene improves salt tolerance in Arabidopsis thaliana[J].Nature Biotechnology,2003,21:81-85.
[47] Yang Q,Chen Z Z,Zhou X F,et al.Overexpression of SOS(salt overly sensitive)genes increases salt tolerance in transgenic Arabidopsis[J].Molecular Plant,2009,2:22-31.
[48] Robinson M F,Very A,Sanders D,et al.How can stomata contribute to salt tolerance?[J].Annals of Botany,1997,80:387-393.
[49] Yeo A R,Kramer D,Lauchli A,et al.Ion distribution in salt-stressed mature Zea mays roots in relation to ultrastructure and retention of sodium[J].Journal of Experimental Botany,1977,28:17-29.
[50] Matsushita N,Matoh T.Characterization of Na+exclusion mechanisms of salt-tolerant reed plants in comparison with saltsensitive rice plants[J].Physiologia Plantarum,1991,83:170-176.
[51] Blom-Zandstra M,Vogelzang S A,Veen B W.Sodium fluxes in sweet pepper exposed to varying sodium concentrations[J].Journal of Experimental Botany,1998,49:1863-1868.
[52] Ren Z H,Gao J P,Li L G,et al.A rice quantitative trait locus for salt tolerance encodes a sodium transporter[J].Nature Genetics,2005,37(10):1141-1146.
[53] Takahashi R,Nishio T,Ichizen N,et al.Salt-tolerant reed plants contain lower Na+and higher K+than salt-sensitive reed plants[J].Acta Physiologiae Plantarum,2007,29:431-438.
[54] Bhatti S,Steinert S,Sarwar G,et al.Ion distribution in relation to leaf age in Leptochloa fusca (L.)Kunth(Kallar Grass).I.K,Na,Ca and Mg[J].New Phytologist,1993,123:539-545.
[55] Hasegawa P M,Bressan R A,Handa A K.Cellular mechanisms of salinity tolerance[J].HortScience,1986,21(6):1317-1324.
[56] Munns R,Tester M.Mechanisms of salinity tolerance[J].Annual Review of Plant Biology,2008,59:651-681.
[57] Zhang G,Su Q,An L,et al.Characterization and expression of a vacuolar Na+/H+antiporter gene from the monocot halophyte Aeluropus littoralis[J].Plant Physiology and Biochemistry,2008,46(2):117-126.
[58] Hameed M,Ashraf M,Naz N,et al.Anatomical adaptations of Cynodon dactylon (L.)Pers.,from the salt range Pakistan,to salinity stress.I.root and stem anatomy[J].Pakistan Journal of Botany,2010,42(1):279-289.
[59] Liphshchitz N,Waisel Y.Existence of salt glands in various genera of the Gramineae[J].New Phytologist,1974,73:507-513.
[60] Oross J W,Thomson W W.The ultrastructure of the salt glands of Cynodonand Distichlis(Poaceae)[J].American Journal of Botany,1982,69(6):939-949.
[61] Oross J W,Thomson W W.The ultrastructure of Cynodonsalt glands:The apoplast[J].European Journal of Cell Biology,1982,28(2):257-263.
[62] Oross J W,Thomson W W.The ultrastructure of Cynodonsalt glands:secreting and nonsecreting[J].European Journal of Cell Biology,1984,34:287-291.
[63] Oross J W,Leonard R T,Thomson W W.Flux rate and a secretion model for salt glands of grasses[J].Israel Journal of Botany,1985,34:69-77.
[64] Worku W,Chapman G P.The salt secretion physiology of chloridoid grass,Cynodon dactylon (L.)Pers.,and its implications[J].SINET:Ethiopian Journal of Science,1998,21(1):1-16.
[65] Marcum K B,Murdoch C L.Salinity tolerance mechanisms of six C4turfgrasses[J].Journal of the American Society for Horticultural Science,1994,119:779-784.
[66] Amarasinghe V,Watson L.Variation in salt secretory activity of microhairs in grasses[J].Australian Journal of Plant Physiology,1989,16(2):219-229.
[67] Pollak G,Waisel Y.Ecophysiology of salt excretion in Aeluropus litoralis (Graminae)[J].Physiologia Plantarum,1979,47(3):177-184.
[68] 刘志华,赵可夫.盐胁迫对獐茅生长及Na+和K+含量的影响[J].植物生理与分子生物学报,2005,31(3):311-316.
[69] Marcum K B,Anderson S J,Engelke M C.Salt gland ion secretion:A salinity tolerance mechanism among five Zoysiagrass species[J].Crop Science,1998,38:806-810.
[70] Liphschitz N,Ilan A,Eshel A,et al.Salt glands on leaves of rhodes grass(Chloris gayana Kth.)[J].Annals of Botany,1974,38:459-462.
[71] 蔡建一,马清,周向睿,等.Na+在霸王适应渗透胁迫中的生理作用[J].草业学报,2011,20(1):89-95.
[72] Marcum K B,Yensen N P,Leake J E.Genotypic variation in salinity tolerance of Distichlis spicataturf ecotypes[J].Australian Journal of Experimental Agriculture,2007,47:1506-1511.
[73] Lee G,Duncan R R,Carrow R N.Nutrient uptake responses and inorganic ion contribution to solute potential under salinity stress in halophytic seashore paspalum[J].Crop Science,2007,47:2504-2512.
[74] Yeo A R.Salinity resistance:physiologies and prices[J].Physiologia Plantarum,1983,58:214-222.
[75] Huang B,Duncan R R,Carrow R N.Drought-resistance mechanisms of seven warm-season turfgrasses under surface soil drying[J].Crop Science,1997,37:1863-1869.