RT-SHIV感染中国恒河猴及体内传代
2011-10-19陈志伟
姚 南,王 卫,丛 喆,陈 霆,金 光,陶 真,陈志伟,魏 强
(1.中国医学科学院医学实验动物研究所,卫生部人类疾病比较医学重点实验室,国家中医药管理局人类疾病动物模型三级实验室,北京 100021;2.香港大学李嘉诚医学院艾滋病研究所,香港 999077)
RT-SHIV感染中国恒河猴及体内传代
姚 南1,王 卫1,丛 喆1,陈 霆1,金 光1,陶 真1,陈志伟2,魏 强1
(1.中国医学科学院医学实验动物研究所,卫生部人类疾病比较医学重点实验室,国家中医药管理局人类疾病动物模型三级实验室,北京 100021;2.香港大学李嘉诚医学院艾滋病研究所,香港 999077)
目的 了解RT-SHIV感染中国恒河猴的感染特点,研究 RT-SHIV在中国恒河猴中传代特点;建立RT-SHIV中国恒河猴动物模型,为评价HIV-1药物有效性提供动物平台。方法 选择4只健康恒河猴,其中两只动物经上肢静脉感染RT-SHIV病毒,感染急性期采取外周血分离CD8-PBMC,扩增病毒,将新制备的病毒静脉感染另外两只中国恒河猴,通过监测血浆病毒载量,CD4+/CD8+比值,CD4+T淋巴细胞和B淋巴细胞的绝对数,了解实验猴的感染状态,同时分析病毒RT基因变异情况。结果 4只动物均获得系统性感染,且传代动物急性期表现更为强烈,RT基因在感染和传代的过程中共观察到3个氨基酸的改变。结论 本研究为RT-SHIV中国恒河猴模型的建立提供了基础信息。
RT-SHIV;传代;RT基因突变
从1981年以来,艾滋病毒已经发现了近三十年,人类至今仍未研发出有效的艾滋病疫苗,因此抗艾滋病的药物治疗成为重要的防治手段。艾滋病的治疗药物主要为逆转录酶抑制剂和蛋白酶抑制剂,其针对HIV-1的主要基因为RT基因和蛋白酶基因。RT-SHIV病毒为替换进HIV-1 RT基因的嵌合病毒[1],其对以 HIV-1 RT基因为靶点设计的药物具有很高的敏感性,由其建立的动物模型能够对逆转录酶抑制剂进行药效学评价[2],同时可研究药物压力下的基因耐药性突变问题。本研究拟通过RT-SHIV感染中国恒河猴,并在猴体传代增强RT-SHIV感染中国恒河猴的能力,从而为建立一个合格的药效学评价的动物模型提供毒株和实验数据。
1 材料和方法
1.1 实验动物
健康中国恒河猴4只,购自北京协尔鑫公司[SCXK(京)2005-2005],体重3 kg左右。编号分别为 G1101V、G1102V、G1103V、G1104V。经间接免疫荧光法(IFA)检测排除相关慢病毒(SIV、SRV-1、STLV-1)感染。动物饲养及相关实验在ABSL-3实验室中进行。
1.2 RT-SHIV毒株
RT-SHIV由NIH AIDS Research and Reference Reagent Program(Dr.Thomas North and Dr.Joseph Sodroski) 提供[1,3,4]。
1.3 样品采集
分别于 0、3、7、10、14、21、28、35、42、49、56、66 d用盐酸氯胺酮对中国恒河猴进行麻醉,采集EDTA抗凝血3 mL。
1.4 RT-SHIV感染恒河猴外周血病毒载量的检测
Trizol法提取血浆中病毒RNA,Quantitect SYBR Green RT-PCR Kit(Qiagen,204243) Roche LightCycler荧光定量仪测定血浆病毒RNA载量,该方法灵敏性为 103copies/mL[5]。
1.5 RT-SHIV感染恒河猴CD4+T细胞绝对数和B淋巴细胞绝对数检测
根据流式细胞仪测定的 CD4+/CD8+比值,CD20比值,并根据血常规结果计算出CD4+T淋巴细胞和B淋巴细胞的绝对数。所使用的抗体为PerCP-CD3(BD,552851)、FITC-CD4(BD,556615)、PE-CD8(BD,557086)、 APC-CD20(BioLegend,302310),使用BD FACS Calibur进行分析。
1.6 RT-SHIV感染恒河猴全基因组中RT基因扩增和测序
用 QIAamp DNA Blood Minikit(Qiagen,51106)提取外周血基因组DNA。巢式PCR扩增全基因组中RT基因,引物分别为RT out:CAGAGGATTTGCTGCACCTCAATTC,Anti-RTout: CAATCCATTTGCCAAGTCCCTAGAT;RT:ATTAGCCCTATTGAGACTGTACCA,Anti-RT: AGCACTGACTAATTTATCTACTTG。外套扩增程序为 94℃ 5 min;94℃ 1 min,50℃30 s,68℃ 2 min;68℃ 10 min,30 个循环;内套扩增程序为 94℃ 5 min;94℃ 1 min,45℃ 30 s,68℃2 min;68℃ 10 min,25个循环。
2 结果
2.1 RT-SHIV感染中国恒河猴载量结果
第一代感染恒河猴G1101V和G1102V分别于10 d、14 d检测到病毒载量,最高峰值分别为6.9×105copies/mL和 2.1 ×106copies/mL,于 35 d、42 d检测不出载量。二次传代恒河猴G1103V和G1104V在4 d便检测到病毒载量,最高峰值分别为2.5×104copies/mL和5.4×106copies/mL,G1103V于42 d检测不出载量,G1104V在70 d仍然在检测灵敏线以上(图1)。
2.2 RT-SHIV感染中国恒河猴细胞绝对数结果
两只第一代感染中国恒河猴表现为,G1101V的CD4+/CD8+细胞绝对数比值由0 d基本值1.83持续波动上升;CD4+T淋巴细胞绝对数在0 d基本值1973个/μL左右波动,最低值出现在 50 d,为1598个/μL;B淋巴细胞绝对数由感染后 3 d的5848个/μL持续下降到 66 d的 3099 个/μL,下降了近1/2。G1102V的CD4+/CD8+细胞绝对数比值在0d基本值2.07上下波动,CD4+T淋巴细胞绝对数的0 d基本值为1918个/μL,在第7天和50 d出现了两个低值分别为1083个/μL和929个/μL;B淋巴细胞绝对数由感染后3 d的2371个/μL持续下降至21 d的最低值1286个/μL,继而在1600个/μL左右徘徊。
图1 RT-SHIV感染恒河猴血浆病毒载量检测图Fig.1 Measurement of viral loads following RT-SHIV infection
图2 RT-SHIV感染恒河猴的 CD4+/CD8+比值,CD4+T淋巴细胞和B细胞绝对数监测图Fig.2 Measurement of CD4+/CD8+ratio,CD4+T-cell and total CD20+B-cell numbers following RT-SHIV infection
二次传代中国恒河猴猴表现为,G1103V的CD4+/CD8+细胞绝对数比值由0 d基本值1.34下降到11 d的最低值0.69,11 d和14 d出现倒置。18 d恢复到初始水平,后面的时间点在该水平上徘徊;CD4+T淋巴细胞绝对数由0 d 889个/μL降到21 d最低值533个/μL,然后反弹上升;B淋巴细胞绝对数由4 d的1 348个/uL降到7 d的547个/μL,然后 14 d反弹回 1200个/μL,在此基础上徘徊。G1104V CD4+/CD8+细胞绝对数比值由0 d基本值1.15下降到14 d的最低值0.62,后期一直在1左右波动;CD4+T淋巴细胞绝对数在急性期出现了一个下降趋势由453个/uL降到349个/μL,然后一直在450个/μL左右徘徊;B淋巴细胞绝对数由4 d的1 164个/μL,在第7天下降到698个/μL,然后在14d反弹回1100个/μL,以后并在1100个/μL的水平上波动(图2)。
2.3 RT-SHIV感染中国恒河猴后的RT基因突变情况
RT基因和RNAse H基因全长氨基酸数为560个,比对的序列为RT基因的26-525个氨基酸,碱基序列为76-1575位碱基。在碱基序列比对方面,303位的G-A,1 188位的C-T突变所有样本都存在,535位的G-A,558位的 G-A存在于除1-21(表示的为G1101V第21天的样本,以下类推)外的所有序列,569位的C-T存在于除1-21和2-28的所有序列,1 281位的A-T仅存在于2-28中。其中有义突变为558位,569位和1281位,氨基酸分别产生了 E(谷氨酸)-K(赖氨酸),T(苏氨酸)-I(异亮氨酸),L(亮氨酸)-F(苯丙氨酸)的突变(图3)。
图3 RT基因氨基酸序列比对图Fig.3 RT amino acid sequence alignment
3 讨论
RT-SHIV中国恒河猴动物模型是为筛选逆转录酶抑制剂,并对其进行体内药效学评价提供的一个动物平台,同时还可用于研究逆转录酶基因的一系列耐药性突变问题。该模型的建立首先RT-SHIV需要能够感染中国恒河猴,RT-SHIV病毒感染中国恒河猴这一指标我们已经完成,以200 TCID50感染,在第10天检测到病毒载量,且最高峰值达2×106copies/mL。然而在第42天,病毒载量由阳转阴,即低于1 000 copies/mL,这为我们接下来的给药提供了难题,现已检测不出病毒载量,便不知药物的效果如何。因而我们期待能有一种毒力更强的RTSHIV感染中国恒河猴。
SHIV病毒的猴体内传代是增强SHIV病毒毒力的一种常用方法,其主要原理是原始 SHIV病毒株在感染恒河猴后,免疫系统对该种 SHIV产生一系列的免疫反应以清除病毒,与此同时,SHIV病毒自身会产生一些突变,以逃逸这种免疫压力。在经过这一系列的突变后SHIV病毒能够更好的感染同一物种。本实验使用的传代方式为急性期采取外周血体外扩增病毒,不同于使用感染猴全血直接传代,该种传代方法的好处是可以浓缩病毒,使其更好的发挥功用。但是这种方式非常复杂,且在细胞培养的过程中易发生突变。我们通过猴体传代来增强RT-SHIV病毒毒力,期望RT-SHIV病毒能在中国恒河猴体内长期维持一种高载量,为我们接下来的药效学评价研究提供基础。在对传代猴和原始感染猴检测指标的对比中我们发现,传代猴的RNA病毒载量出现的时间更早,维持的时间更长能维持到70 d。且载量最高值也由原来的2×106copies/mL提高到6×106copies/mL。对 CD4+/CD8+比值的观察中我们可以看到,传代猴急性期出现了明显的倒置现象,而原始感染猴不是很明显。CD4+T淋巴细胞的减少趋势也更为明显。这些现象说明RTSHIV病毒经过在体内的一次传代后已经具有适应中国恒河猴的体内环境的趋势。
对RT-SHIV病毒B淋巴细胞绝对数的监测过程中我们发现,初始感染 RT-SHIV的恒河猴(G1101V,G1102V)的B淋巴细胞呈现出明显持续下降的趋势,这不同于文献报道SHIV/SIV病毒的B淋巴细胞在急性期下降,后期有反弹恢复的特征[6]。传代恒河猴的 B淋巴细胞绝对数在急性期出现一个暂时的急剧性下降后于14 d又反弹回原来的基础值,并未表现出和初始感染猴一样持续下降的趋势。在研究B淋巴细胞的过程中我们设置了一个用SHIV-1157ipd3N4感染的对照猴,同时监测他的B淋巴细胞发现其在感染急性期呈现明显的下降趋势,但是过完急性期后绝对数值又反弹回原来的数量(数据未提供)。文献报道称RT-SHIV感染的恒河猴会表现出B淋巴细胞的持续下降趋势,这是其主要特征之一[7],这一趋势在我们的初始感染恒河猴中表现明显,而在传代猴中这一趋势发生了改变,表现出和SHIV-1157ipd3N4感染恒河猴相同的趋势,导致这一趋势改变的原因是什么,是否是病毒基因在传代过程中发生的改变而导致的,这些问题有待我们进行更为深入的研究去解决。
逆转录酶相关的基因为RT基因和RNAse H基因,这两个基因由1 680个碱基决定,共编码560个氨基酸。在研究RT基因的突变过程中,由于PCR和测序等客观因素,我们只截取了存在高可信度的500个氨基酸进行分析研究。发现在病毒的感染阶段RT基因发生突变的几率较小,第一代感染猴G1101V和G1102V在500个氨基酸中仅出现了2个氨基酸突变,在二次传代猴 G1103V和 G1104V中也仅出现2个氨基酸突变,且该突变对整个病毒的感染并无太大的影响,表明RT-SHIV的RT基因在感染和传代过程中保持相对稳定,这对于今后的药物评价和耐药性突变研究提供了基础条件。
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RT-SHIV Infected and Passaged in Chinese-Origin Rhesus Monkeys
YAO Nan1,WANG Wei1,CONG Zhe1,CHEN Ting1,JIN Guang1,TAO Zhen1,CHEN Zhi-wei2,WEI Qiang1
(1.Key Laboratory of Human Diseases Comparative Medicine,Ministry of Health;Institute of Medical Laboratory Animal Science,Chinese Academy of Medical Sciences;Key Laboratory of Human Disease Animal Models,State Administration of Traditional Chinese Medicine,Beijing 100021,China;2.AIDS Institute,Li Ka Shing Faculty of Medicine,The University of Hong Kong,Hong Kong 999077,China)
Objective To study the characteristics of RT-SHIV passaging in Chinese rhesus macaques and to establish a RT-SHIV/rhesus animal model providing an animal platform in evaluation of the effectiveness of HIV-1 drugs.Methods Four healthy rhesus macaques selected were negative to SIV,SRV and STLV-1.Two monkeys of them were infected with RT-SHIV intravenously.Blood samples were collected from the infected monkeys at the acute phase and CD8-PBMC were isolated,and then propagated RT-SHIV.The propagated RT-SHIV with PBMC were injected intravenously into the other two monkeys.Viral load in plasma,CD4+/CD8 ratio and absolute number of CD4+ T lymphocytes and B lymphocytes were detected,and the RT gene variation was analyzed.Results Systemic infection was established in all of the four rhesus macaques,and the two passaged animals demonstrated more severe changes at the acute phase.There were three amino acid changed during infection and passages.Conclusion The results of our study provide basic information for the establishment of RT-SHIV/Chinese-origin rhesus monkeys models.
RT-SHIV;Passage;RT gene mutation
R33
A
1671-7856(2011)04-0016-05
2010-09-29
10.3969/j.issn.1671.7856.2011.04.004
“十一五”国家科技重大专项课题 (2009ZX10004-307);协和青年基金(RT-SHIV动物模型的建立)。
姚南,男,硕士研究生,从事实验动物病毒学研究工作。
魏强,教授,博士生导师,研究方向:实验动物病毒学。E-mail:weiqiang0430@sohu.com。