高致病性猪蓝耳病的诊断与防治

张军，胡俊琦，吴泽川，古从伟

（1.广元市元坝区文村乡畜牧兽医站，四川广元 628063；2.广元市玉田农业开发有限责任公司，四川广元 628021；3.广元市元坝区畜牧食品局，四川广元 628021）

高致病性猪蓝耳病又称猪繁殖与呼吸综合征（PRRS），是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）引起的一种以妊娠母猪繁殖障碍、早产、流产和死胎，以及各种年龄猪，特别是以仔猪呼吸道疾病为特征的急性高致病性传染病，我国将其列为一类疫病。该病最早发生于1987年，在美国的北卡罗来纳州首次暴发。当时人们不能确定其病因，一度被称为“神秘病”。1991年荷兰也从病猪中分离到了这种病毒。1992 年，该病被正式命名为 PRRS。在国内，业界一般称之为猪的“蓝耳病”，因患猪经常被观察到耳等部位皮肤呈蓝色，但在北美发生该病时则无此现象。遗传变异分析证明猪繁殖与呼吸综合征病毒至少分为两个型：即以美国分离的毒株为代表的美洲型（A TCC2VR22332株）和以荷兰分离的毒株为代表的欧洲型（LV株）。1996年，郭宝清等首次报道从流产胎儿中分离到PRRSV，证实我国也存在猪繁殖与呼吸综合征。1997 年，孙颖杰等从北京某猪场的死胎中分离到 PRRSV B13株，后经赵耘、罗长宝等鉴定为欧洲型 PRRSV。2006年以来，我国又暴发了以变异美洲型的高致病性蓝耳病，给我国养猪业造成了巨大的经济损失。

一、流行特点

赵坤等认为，高致病性猪蓝耳病是一种高度接触性传染病，呈地方流行性，一年四季都可发生，以夏、秋季为严重发病期。PRRSV 主要是通过病毒引入传播，易感猪群一旦有病毒入侵，大约经4～5个月，90 %的母猪血清学检测呈阳性，即使1～2年后，仍有20%的母猪呈阳性。该病毒的易感猪群主要是妊娠中后期的母猪和新生仔猪。因此，隐性带毒猪是主要传染源。猪可以通过口腔、鼻内、肌肉、腹膜和阴道感染PRRSV。

该病毒具有高度感染性，通过肌肉或鼻内接种 10 个或更少的病毒粒子即可感染发病。Cafruny W A 等通过腹腔或尾软骨注射其最小感染剂量为近 1个病毒粒子。PRRSV在宿主存在时间较长，易继发混合感染，特别是呈地方性呼吸疾病的传染，如猪地方性肺炎，与其相关联的混合感染还有猪支原体肺炎、猪流感、猪链球菌病、猪乙型脑炎、胸膜肺炎和猪放线杆菌病等。另外，空气可能是重要的传播媒介，风向通常是传播的方向。没有猪只引进的密闭式猪场同样发生 PRRS，说明气源传播是存在的。精液是PRRSV的传播的另一媒介。研究人员通过人工感染公猪后能从精液中分离到 PRRSV，研究还发现通过人工授精和引进带毒精液能引起PRRS的暴发。

二、临床症状及病理变化

研究显示，病猪仅由PRRS 病毒单一引起时是无症状的，而且广泛认为PRRS病毒引起的临床表现是复杂的。当一个猪场内其他因素理想的情况下，由PRRS病毒引起的症状起决定性作用。在大多数感染群体中，PRRS 病毒将在体内持续存在。

临床症状分急性感染型和慢性型，急性感染型初期，猪群表现为食欲低下、发热、昏睡和精神不振等症状，一般持续1星期。发病高峰的主要特征是母猪早产、晚期流产以及木乃伊胎和弱仔增多；仔猪断奶前死亡率增加，高峰期一般持续8～12星期。以下3项指标可用于衡量急性PRRS：流产或早产超过8%；死胎率超过20%；仔猪出生后第 1星期死亡率超过24%。发病末期，母猪繁殖功能逐渐恢复，达到或接近病前水平。仔猪和育肥猪存在不同程度的呼吸系统症状，痊愈猪一般生长缓慢，体重较轻。慢性型较急性型病情缓和，病期较长，对猪群的主要影响是由其他细菌或病毒侵害呼吸系统引起的继发性感染，如鼻炎、肺炎等。感染猪生长率、饲料报酬率降低。

根据马德慧等观察，死胎及出生后不久死亡的弱仔猪可见颌下、颈下和腋下水肿，呈胶冻样。解剖病变主要在肺部，病变常分布在肺小叶，病灶呈鲜红色到灰紫色，肺部触感软硬不均匀，肺间隔增厚，外观肿胀；肺前叶、尖叶和心叶常有“胰样变”或“肝样变”，当猪出现并发感染时，病变会因感染不同致病菌而有不同变化，肝脏充血，呈棕黄色，肝细胞脂肪变性，少数肝细胞坏死；脾头部肿大，切面红髓增生；肾脏肿胀，灰黄色，时有针尖状出血点；脾脏边缘或表面出现梗死灶，肾脏呈土黄色，表面有针尖或小米粒大小出血斑点，皮下、扁桃体、心脏、膀胱、肝脏和肠道可见出血点和出血斑。肺表面有弥散、灰褐色的斑状。

三、分子基础及致病机理

巨噬细胞和内皮细胞是 PRRSV感染的主要靶细胞。张平英等通过试验检测到PRRSV抗原主要分布在脾脏、淋巴结、肺脏、肝脏的巨噬细胞和肾脏的血管内皮细胞，引起相应病变。颜其贵等的人工感染猪试验的结果表明PRRSV抗原在仔猪的内脏及心肌组织中均有分布，并通过超微观察表明，在肺泡、淋巴结和脾脏的巨噬细胞中有散在的病毒粒子的存在。

已有研究发现PRRSV侵染细胞的方式首先是与猪肺泡巨噬细胞上的受体结合，然后经胞吞作用进入细胞。已经鉴定出猪肺泡巨噬细胞( PAMS)上具有所推断的病毒受体。PRRSV 嗜好在PAMS和肺内皮细胞巨噬细胞(PIMS)内复制，结果造成这些细胞大量破坏。PRRSV感染猪2 h后，PAMS的吞噬作用增强。但是，在感染后7 d，PAMS的吞噬作用显著减弱，其释放超氧负离子的能力也下降，PAMS依赖于超氧负离子而发挥杀菌作用的功能也就下降。这样就为病原微生物的继发感染创造了有利条件。

PRRSV在PAMS大量复制后，随着细胞的崩解，进入血液循环和淋巴循环。结果可导致病毒血症的形成及全身淋巴结的感染。Yoon KJ等认为猪感染 PRRSV后，血清中中和抗体的滴度较低，不能有效地清除血液中的病毒，这是造成病毒血症持续性存在的主要原因。

四、实验室诊断

PRRS的诊断目前主要依靠病毒分离鉴定，借助血清学试验检测PRRS抗原及其抗体。由于细胞制备和PRRSV不同毒株对细胞的选择性生长及毒株间的抗原差异，使实际诊断工作复杂、困难、费时、费力。在未成功分离PRRSV之前，该病诊断主要依靠病猪典型临床症状、特征性组织学病理变化，尤其是间质性肺炎。

血清学诊断方法是应用最广泛的诊断方法。对于PRRSV的血清学诊断，国内外己建立了4种PRRSV抗体检测方法，即间接荧光试验(IFA)、免疫过氧化物酶单层细胞试验(IPMA)、酶联免疫吸附试验(ELISA)、血清中和试验(SN)。IPMA 是欧洲国家广泛用于该病诊断的一种方法，敏感性和特异性都比较好，可用于PRRSV的病毒鉴定及血清抗体检测。IFA与IPMA具有相同的特异性和敏感性，目前在北美应用较为广泛。SN检测PRRS抗体特异性好，但一般在感染后的4～6周才出现中和抗体，故SN不适合PRRS的早期诊断。ELISA具有快速、经济、敏感、适合大量样品的检测，结果的判定不含主观因素，可半自动化(机器洗板)和自动显示结果等优点，明显优于 IPMA和IFA，已作为 PRRS免疫监测和诊断的常规手段。

病毒的分离鉴定是急性病例和新疫区检测实用方法。鉴于PRRS遗传变异的多样性，变异新毒株只有用核苷酸序列和氨基酸序列测定确诊。RT-PCR就成了检测PRRS病毒的有效方法。由于PRRS易伴有继发感染，呈地方性混合感染，所以要结合与呼吸系统有关的细菌、病毒感染鉴别诊断。

五、防控

高致病性猪蓝耳病病毒具有在外界环境中存活能力较差的特点，只要消毒措施得当就能杀灭病毒。有效控制该病与亚临床畜群的感染、猪群内病毒的再传播等因素有关。目前我国使用的方法主要有：杜绝境外传入，从不发病国家和地区引进猪及其相关产品；从疫区进口的种猪等要严格检疫，全面普查，及时检测；境外防止传染，及时发现和扑灭疫情，以控制疫病的蔓延；发病时，对患畜进行扑杀、销毁，以控制疾病蔓延；进行血清学检测，对发病地区进行封锁或限制猪及其产品的任意流动。由于PRRS传播迅速，流行广泛，而且该病毒抗原具有多样性。目前尚无特效的治疗措施，现在防治本病的疫苗主要是灭活苗和弱毒苗。但是弱毒苗的安全性和效力并不可靠，也不能阻止本病的再次感染。弱毒苗具有返祖现象，所以迫切需要研制针对我国流行毒株的免疫保护性好安全性高的 PRRS疫苗。

六、小结

综上所述，PRRS作为一种世界性的猪传染病，给各国猪业带来了极其严重的危害和巨大的经济损失。根据临床和血清学调查，该病在我国普遍存在，而且近年来还呈流行态势。虽然目前对PRRSV的分子生物学研究方面取得了很大进展，但仍有许多问题尚不十分清楚，如持续感染机制、免疫机制、一些病毒编码的蛋白结构与功能的关系等等，还有待更加深入细致的进行研究。针对PRRS仍未有一个确实、有效的防治原则适用于所有猪群的情况下，充分掌握自己猪群所处的健康状态，细化防治传染病三环节，制定合理有效的精细化养猪方案，可能是当前的最佳选择。