猪瘟血清学监测在规模化猪场中的应用

2011-01-19熊小军冉承锋

湖南畜牧兽医 2011年3期

关键词：公猪猪群猪瘟

熊小军，冉承锋

（1.湖南省麻阳县畜牧水产局，湖南麻阳 419400；2.湖南长沙达可思生物科技有限公司，湖南长沙410014）

猪瘟血清学监测在规模化猪场中的应用

熊小军1，冉承锋2

（1.湖南省麻阳县畜牧水产局，湖南麻阳 419400；2.湖南长沙达可思生物科技有限公司，湖南长沙410014）

对一规模化猪场前后几次猪瘟疫苗免疫后抗体水平的检测，进行对比分析，着重就影响疫苗免疫抗体水平产生的一些因素进行总结，给养猪生产提供了疾病防控的思路与解决措施。

规模化猪场；猪瘟免疫；血清学监测；应用

在近几年多地发生的“高热病”的多数病例中，可检出猪瘟抗体水平不合格，个别病例甚至出现典型的猪瘟病变。猪瘟如何防控仍然是值得探讨的重要问题，免疫预防是目前猪瘟流行地区控制猪瘟的主要手段。在使用疫苗的同时，应选择良好的检测手段，建立和执行免疫监测来优化免疫程序和保证免疫效果，才能最终达到控制猪瘟的效果。IDEXX猪瘟ELISA抗体检测试剂盒与中和抗体紧密相关，是进行抗体监控的良好方法。近年来我国养猪业的规模化程度大幅提高，使实施免疫监测成为必要和可能。但目前只有少数特大型猪场应用这一方法控制猪病，大多数人还没有给予足够的重视，仍然停留在机械照般别人的免疫程序或“发病了，再打疫苗”的思想阶段。

本文对一规模化猪场前后几次猪瘟疫苗免疫后抗体水平的检测，进行对比分析，着重就影响疫苗免疫抗体水平产生的一些因素进行总结，以供同行交流与参考。

1 材料与方法

1.1 试验材料血清来源于湖南某规模化猪场（基础母猪群500头）不同类别猪群，随机采样。操作严格按照实验室要求进行，采集完毕后2～8?C保存，并立即送检。本试验根据群体统计学原理，群体代表性在85%以上。

1.2 试剂盒爱德士（IDEXX）FlockChek*ELISA猪瘟抗体检测试剂盒。

1.3 具体操作程序严格参照ELISA试剂盒操作规程执行。

1.4 数据处理试验数据用微软office Excel 2003进行统计与分析。样品阻断率≥40为猪瘟抗体阳性，样品阻断率≥50为有保护性，样品阻断率≤40为猪瘟抗体不合格。

2 结果与分析

第1次检测结果表明，由于各个阶段的猪抗体水平普遍较低，结合该场实际情况，疫苗不合格的可能性较大，导致检测结果没有达到参考值的标准，猪群存在极大的猪瘟感染风险。根据第1次检测的结果，对免疫进行了调整，更换了合格的疫苗，全群2次免疫，2次免疫间隔时间为4周。见表1。

在第2次免疫后2个月进行了第2次检测，检测的结果比第一次有了很大的改善，基本上达到了参考的标准。第2次检测同时检查了15头仔猪母源抗体的消长情况，选择23天、33天和43天未经猪瘟疫苗免疫的仔猪群，随机采样进行检测。结果表明该场仔猪猪瘟疫苗首免时间应确定在38日龄左右为宜。这是由哺乳母猪的抗体水平决定的。见表2。

3 结论与应用

目前很多猪场没有对小猪进行母源抗体的消长规律的监测，首免时间安全凭技术场长的主观判断，没有科学依据。这样制定的小猪免疫程序，结果是首免没有起到免疫的效果，抵消了母源抗体，在第2次免疫的时候才相当于首免的效果，如果这样，还需要再加强1次。在实际中小猪就要免疫3次，而实际操作中只免疫2次。这是在小猪在育肥阶段猪瘟抗体很差的主要原因。

3.1 猪瘟抗体水平群体判断标准

阻断率在40以上的，群体占有率≥95%；阻断率在50以上的，群体占有率≥95%；离散度≤20，平均值在65至75之间，免疫后高峰期越高越好。以上为标准适合于整个母猪群，以及各个阶段的商品猪。对于参与配种的公猪，要求阻断率在50以上的，群体占有率100%。

3.2 在猪场生产上的应用

有条件的生产场，应定期开展猪瘟抗体水平检测。并根据抗体的消长规律，结合实际情况，制定相应的免疫程序与生产措施。

3.2.1 后备猪：为确保基础生产群体的安全，后备猪应在210日龄左右进行抗体检测，根据抽样检测结果确定是否进行加强免疫。对于二免后不合格的坚决不进行配种，治疗无效的坚决淘汰，以免将隐性带毒猪带入群体中，影响以后的生产稳定。

3.2.2 公猪：由于人工授精后公猪与基础母猪比例在1:70左右，公猪是否健康直接对整个生产母猪群的影响甚大，如果公猪为隐性带毒猪，就会在后代中进行放大，倘若为扩繁场或原种场，则后果不堪设想。因此，公猪必须100%具有保护力即阻断率50%以上。对于不合格的公猪精液坚决不参与配种，二免后仍不合格经治疗无效的公猪，做淘汰处理。

3.2.3 商品仔猪：对于商品仔猪的免疫，在母猪群抗体水平比较高的前提下，应对不同日龄仔猪进行抗体检测分析，当母源抗体阻断率下降到50%时，要加强免疫猪瘟。发生猪瘟流行时，要采取超前免疫措施，减少仔猪感染几率，确保生产稳定。

3.2.4 注意事项：在2次免疫后，要及时淘汰猪瘟抗体阻断率在40以下的猪，因为经过多次强化免疫，抗体水平仍然很低，说明受到野毒感染或者出现了免疫抑制。尤其是公猪和后备猪，猪瘟抗体阻断率大于50的公猪精液才能参加配种工作，有问题的公猪坚决淘汰，以免引起病原的扩大与散播。后备猪的种源来自其他场，猪瘟抗体水平通常难以保证，出于安全考虑，可以考虑后备种猪一进场就加强免疫猪瘟疫苗2次，以后的猪瘟疫苗再按照猪场自己制定的免疫程序进行免疫，只有这样才能确保后备母猪猪瘟抗体水平处于比较理想的水平。

3.3 加强免疫管理，确保理想的免疫抗体水平

3.3.1 制定适合的免疫时间与剂量

规模化猪场首先要根据自身群体抗体水平情况，制定合适的免疫程序。尤其注意免疫时间与剂量。我国使用的猪瘟苗多为弱毒苗，会中和部分抗体，特别要注意当母源抗体下降到50%以下时，仔猪方可加强免疫，否则免疫效果会比较差。不同的免疫剂量对抗体的产生也起关键作用。发生猪瘟疾病时，考虑加大免疫剂量。

3.3.2 选择良好稳定的疫苗品种

选择疫苗要选择正规且疫苗效价较为稳定的厂家（是否还有BVDV-牛病毒性腹泻病毒、疫苗杂膜蛋白是否超标），在使用疫苗过程中不要随意改换不同厂家的疫苗。为避免影响效价，弱毒苗从出厂到使用全程都要保证冷藏贮运并且避免太阳直晒，一般要求保存温度要求在-15℃以下时，其保存期不超过12个月或18个月。猪瘟的免疫应使用猪瘟单苗，不要用“猪瘟-猪肺疫-猪丹毒”三联苗,尤其是乳前免疫和25日龄免疫,禁止使用三联苗。猪瘟发病严重的场(户),还可选用C株牛体反应苗或脾淋苗。

3.3.3 加强细节管理，确保免疫措施有效到位

（1）根据场内生产情况，考虑近期可能的疫苗使用量和疫苗有效期等，确定疫苗的购入量，并检查有效期、包装有无破损等情况。离有效期还有2～3个月的猪瘟疫苗建议不要使用。

（2）运输疫苗时使用放有冰袋的保温箱，并注意冰袋和疫苗在箱内的放置顺序和位置，并在尽可能短的时间内到达场内，保持疫苗冷链体系不中断。

（3）稀释猪瘟疫苗所使用的生理盐水必须提前至少1天放置冰箱冷藏，稀释时将疫苗和稀释液放置室温停置数分钟，避免疫苗同稀释液的温度相差太大，而且已失真空的疫苗禁止使用。

（4）实施免疫前，根据所规定的免疫剂量、免疫头数和免疫人员的工作能力来决定疫苗用量和稀释次数，目的是做到现用现配和保证疫苗稀释液在1小时内用完。

（5）在疫苗液的整个使用过程中，疫苗液均要放在有冰袋的保温箱中暂时保存，保持冷链体系的延续。防止疫苗液长时间暴露于室温中，增加疫苗损耗。

（6）吸取疫苗液时注意摇匀和更换针头，并避免反复抽取，不能使用已注射过的针头吸取疫苗液。免疫种群时做到1猪1个针头。针头应选择长度为38～44mm的16#的针头，并控制好注射速度和进针角度，防止出现漏针、飞针等情况，确保疫苗液真正足量注射至肌肉层中。

（7）免疫接种前后所使用的容器、用具(特别是针头)等及剩余的疫苗液、疫苗瓶子必经过严格的消毒处理，确立并保持“不人为扩散可能存在的污染”的意识。

（8）免疫接种疫苗前后应注意尽可能避免一些剧烈操作，如转群、采血等，防止猪群处于应激状态而影响免疫效果，而且在免疫接种疫苗的过程中也要采取必要措施来避免过分驱赶或抓取猪只。在实际生产中，猪场管理者和兽医应认真考虑，使所采取的疫病防治措施和场内的生产流程有机结合起来，发挥疫病防治措施在保证养猪生产中的最大作用。

（9）免疫接种前后7天内，勿使用肾上腺素类的激素药物或免疫抑制性药物(如链霉素、新霉素、卡那霉素、四环素、磺胺类药物等会影响淋巴细胞活动，抑制抗体产生)，或抗病毒药物。

（10）猪瘟免疫接种工作应由场内兽医技术人员具体负责实施。及时认真填写免疫接种记录，包括疫苗名称、免疫日期、舍别、栏别、猪日龄、免疫头数、免疫剂量、疫苗性质、生产厂家、有效期、批号、接种人等。完整详细的规范性记录有利于估算近期的疫苗购买量和防止猪群免疫中可能出现的漏免及重复免疫，也利于疫病监测后的分析工作。

3.3.4 提高饲养管理水平，确保猪群健康稳定

猪群在健康水平比较高时，进行免疫方能产生良好的抗体水平。因此，猪场管理者必须确保猪群合理的饲养密度，保持良好的通风与保温状态，提供猪群优良的营养水平，避免霉菌毒素的影响，确保良好的饲养管理和全价的营养是保证猪自身健康的基础。

3.3.5 完善猪场生物安全体系，严格的卫生消毒防疫制度

一些疾病如蓝耳、伪狂犬以及圆环病毒病会影响猪瘟抗体水平的产生，是常见的免疫抑制疾病。猪只感染该类疾病后，难以产生比较好的抗体水平。因此。加强防疫消毒、创造清洁环境是减少猪群接触病原或重复感染的保证。