不同破眠处理对阳光玫瑰葡萄冬芽萌发的影响

饶余倩 黄亚倩 夏龙腾 杨国顺 王美军 刘昆玉 许延帅

DOI：10.13925/j.cnki.gsxb.20230456

摘    要：【目的】寻找阳光玫瑰葡萄理想安全的破眠方法以及探究其破眠机制。【方法】以阳光玫瑰葡萄冬芽为试材，通过研究类休眠阶段和生理休眠阶段不同破眠处理对葡萄萌芽率、成花率和花穗质量的影响，并通过转录组测序筛选可能影响葡萄冬芽萌发的关键基因。【结果】在萌芽前1个月对阳光玫瑰葡萄冬芽进行单氰胺处理、石硫合剂+1-氨基环丙烷羧酸（ACC）处理，均能使萌芽提前，显著提高萌芽率，不影响成花率及花穗质量。通过分析转录组数据，筛选了PYL4、PP2C24、PP2C8、PP2C37、PP2C25、SAPK2等差异表达基因，这些基因可能通过参与激素信号传导、氧化应激等途径影响葡萄芽的萌发。【结论】5 °Bé石硫合剂+0.25 mg·mL-1ACC是阳光玫瑰葡萄打破休眠的一种安全、有效的处理方法。

关键词：葡萄；休眠；萌芽；转录组

中图分类号：S663.1           文献标志码：A            文章编号：1009-9980（2024）05-0897-14

收稿日期：2023-11-02        接受日期：2024-02-17

基金项目：国家自然科学基金项目（32172519）；湖南省自然科学区域联合基金（2023JJ50063）

作者简介：饶余倩，女，在读硕士研究生，研究方向为果树生理与栽培。E-mail：1248780906@qq.com

*通信作者 Author for correspondence. E-mail：yx56@hunau.edu.cn

果 树 学 报 2024，41（5）： 897-910

Journal of Fruit Science

Effects of different bud dormancy breaking treatments on winter bud germination in Shine Muscat grapevines

RAO Yuqian1， HUANG Yaqian1， XIA Longteng2， YANG Guoshun1， WANG Meijun1， LIU Kunyu1*， XU Yanshuai1*

（1College of Horticulture， Hunan Agricultural University/Hunan Engineering and Technology Research Center for Grapes， Changsha 410128， Hunan， China; 2Yongzhou Citrus Scientific Research Institute， Yongzhou 425045， Hunan， China）

Abstract： 【Objective】 This study aimed to find an ideal and effective bud dormancy break method for Shine Muscat grapevines and to explore the gene expression level of bud dormancy break by using H2CN2 and “lime sulfur mixture+ACC”. 【Methods】 By using the winter buds on Shine Muscat grapevines as materials， we studied the effects of different bud dormancy breaking treatments in the endodormancy stage and paradormancy stage on germination rate， flowering rate and inflorescence quality， and examined the possible effects on grape winter buds through transcriptome sequencing， and the key genes that may affect grape winter bud germination were screened through transcriptome sequencing. 【Results】 The winter buds on the isolated canes of the Shine Muscat grape at the endodormancy stage were treated with cyanamide （T1） and “lime sulfur mixture+ACC” （T2） at one month before germination stage. The results showed that with T1 treatment grapevines sprouted earliest， followed by T2 treatment， and finally was the control （CK）. The overall germination speed of each treatment showed a trend of “first-slow-and-then-fast”. In terms of germination rate， the germination rate with T2 treatment was the highest at 85.80%， followed by T1 treatment and CK， with germination rates being 81.48% and 66.05%， respectively. And the germination rates after T1 treatment and T2 treatment were significantly higher than those of the CK. The growth and development dynamics of winter buds on isolated canes were observed， and it was found that the winter buds treated with T1 and T2 all grew 2 to 3 new leaves on March 21， 2022. T1 treatment sprouted the earliest， and T1 and T2 sprouted more neatly; In the Control group， 2 to 3 new leaves grew on April 2， 2022， and the growth was relatively slow and the sprouts were irregular. In August 2022， cyanamide treatment （H2CN2， T1） and “lime sulfur mixture+ACC” treatment （T2） was carried out on the winter buds of Shine Muscat grapevines at the paradormancy stage， and the results showed that with T1 treatment， grapevines sprouted earliest， followed by the CK and T2 treatment. The germination speed with each treatment showed a trend of “first-slow-and-then-fast” as well. The germination rate of T2 treatment was the highest， which was 69.70%， followed by T1 treatment and CK group， with germination rates being 65.66% and 41.41%， respectively. The germination rate of T1 and T2 treatment was significantly higher than that of the CK group. In February 2023， by treating the winter buds of Shine Muscat grapevines at the endodormancy stage with cyanamide （T1） and “lime sulfur mixture+ACC” （T2）， the results showed that the T2 treatment had the highest germination rate of 97.22%， followed by T1 treatment and CK group， with the germination rates being 96.43% and 76.19%， respectively. From 25 days after treatment to the end of counts， the germination rate of T1 and T2 treatments showed significantly higher level than the CK. There was no significant difference in the inflorescence rate between T1 and T2 treatments， and CK. Simultaneously， the length of inflorescence was not influenced as well. The growth status of the canes was observed， and the results showed that， compared with the CK， the leaves grew fastest after the T1 treatment on April 3， 2023， followed by T2 treatment. On April 29， 2023， the leaf growth rate， leaf size， and internode length after T1 and T2 treatments had no significant impact compared with the CK. Six samples at the endodormancy stage （winter buds were collected at 24 h and 72 h after CK， T1 treatment and T2 treatment） and six samples at the paradormancy stage （CK， T1 treatment and T2 treatment were collected at 24 h and 72 h after winter bud） for transcriptome analysis， a total of 4399 differentially expressed genes were obtained by using |log2fold changes|≥1， FDR＜0.01 as the filtering parameters， and 4399 significantly different genes （DEGs） can be divided into 8 clustering groups. Among all the DEGs， in W-CK-72 samples and W-HC-72 samples at the endodormancy stage， 10 genes were annotated as transcription factor coding genes， which were all related to bud germination. The transcription factors of them were up-regulated and 7 transcription factors were up-regulated. In addition， 10 genes were annotated as being involved in the biosynthesis or signal transduction processes of hormones such as auxin， gibberellins， abscisic acid and brassinosteroids. Five genes were related to the ABA signaling pathway， and among them， PYL4 and PP2C25 genes showed up-regulated expression， while PP2C24， PP2C8 and PP2C37 genes had down-regulated expression. The SAPK2 gene that related to the Snrk2 family was down regulated. The remaining differential genes screened were related to oxidative stress， glutathione S-transferase， etc. These candidate genes may affect grape bud germination by participating in hormone signaling， oxidative stress and other pathways. 【Conclusion】 The mixed solution of “lime sulfur mixture+ACC” is a safe and effective agent for breaking the bud dormancy of Shine Muscat grapevines. Genes involved in hormone signaling and oxidative stress may respond to the dormancy release process.

Key words： Grape; Dormancy; Bud break; Transcriptome

葡萄（Vitis vinifera spp.）是多年生落叶藤本植物，栽培历史悠久。中国是葡萄生产大国，2020年我国葡萄产量为1 431.4万t，居世界前列[1]。休眠是落叶果树的典型特征，是植物应对外界环境变化和季节变化的一种生物适应性，是植物生长发育过程中的一个周期性时期[2]。葡萄作为一种典型的落叶果树，萌芽整齐度与产量密切相关[3]。南方地区是近年来发展最快的葡萄产区之一，但在南方地区，由于树形培养管理（1年生枝条的培养）不当和需冷量积累不足，导致萌芽不整齐，造成在后期冬季修剪和盛花期花果管理上更加费时费工等问题。目前，单氰胺虽广泛应用于打破葡萄休眠，但其本身具有很强的毒性，使用过程中需要戴口罩、手套等，操作不便。因此，寻找一种可以有效打破休眠且理想安全的破眠方法尤为重要。

多年生落叶植物芽休眠是一种十分复杂的过程，受到多个通路基因的综合调控[4]。当植物芽开始进入休眠阶段时，可以抵御外界不良的环境条件，暂时停止生长，当外界环境适宜时，植物可恢复正常生长，是一种对植物有利的生物学特征。1987年，Lang[2]等根据休眠的诱因把芽休眠分为内休眠、类休眠和生态休眠三大类，并将休眠的整个过程分为五个阶段：类休眠、类休眠-内休眠、内休眠、内休眠-生态休眠和生态休眠。内休眠（生理休眠，endodormancy）发生在冬季，是由植物内部原发性反应引起的生长停滞现象，这种原发性反应由休眠组织内部信号独自诱导引发[5]。处于内休眠阶段的芽，即使在有利的环境条件下，且没有附近器官的限制，也不能萌动，只有达到一定的低温积累后才能解除休眠。类休眠（paradormancy）是由分生组织外的因子引起的植物生长暂停现象，本质上是一个器官对另一个器官的影响，如芽的顶端优势[6]。处于类休眠阶段的芽，即使在环境条件有利时仍保持休眠，但若除去相邻器官的限制，则休眠结构会迅速恢复生长。生态休眠（ecodormancy）是指冬芽从生理休眠中释放后，由于环境因子限制暂未萌发，环境条件适宜时即可迅速恢复生长的现象[5]。

休眠和萌发是两个连续的生物学过程，芽休眠是温带落叶果树的一种适应机制[5]。葡萄的内休眠需要在经历一定的低温积累后才能自然打破，这种特性称为“需冷量”（chilling requirement），葡萄的需冷量一般需要0～7.2 ℃的低温积累600～1000 h。为使落叶果树能够在低纬度地区正常生长发育，人们通常通过使用氰氨类、硝酸盐类、植物生长调节剂（GA3、6-BA、TDZ等）、大蒜汁、乙烯、破眠剂1号等化学物质来代替部分低温的作用，提早打破休眠，使休眠芽提前萌发。

植物激素在芽休眠的形成与解除过程中发挥重要的调节作用，不同的植物激素以不同的作用方式来诱导和解除芽休眠。ABA对萌芽有显著的抑制作用。在梨[7]、蓝莓[8]等多年生落叶果树中，外源ABA可以促进芽的休眠而抑制芽的萌发。在桃花芽的休眠过程中，ABA含量在生态休眠期逐渐降低并达到最低水平[9]。杨博等[10]研究表明，由PpyERF060、PpyABF3和PpyMADS71构成的互作网络可整合乙烯与脱落酸的信号通路进而调控梨芽休眠进程。玉米分蘖芽发生过程中，叶片与基部茎节中ABA含量较低且呈下降的趋势，当生长停止时，ABA含量上升[11]。在杨树上，转录因子SVL可以通过促进CALS1（胼胝质合酶基因）的表达，抑制赤霉素的合成，控制自然休眠[12]。在桃中，外施GA可以促进桃叶内休眠的解除[13]。梨花芽可能通过下调miR159表达，提高GA含量，促进花芽冬季休眠解除[14]。乙烯对葡萄芽休眠解除起一定的促进作用。在葡萄的研究中发现，外源乙烯处理使葡萄芽的萌发率显著提高，而抑制乙烯合成和信号转导后，葡萄芽的萌发受到抑制，推测乙烯可以作为刺激信号，促进葡萄芽休眠提前解除[15]。Khalil-Ur-Rehman等[16]的研究结果表明，ABA、乙烯、赤霉素、生长素和细胞分裂素均参与了葡萄芽类休眠和内休眠的调控。

笔者对处于两种冬芽休眠阶段（类休眠阶段和内休眠阶段）的阳光玫瑰葡萄冬芽进行不同破眠处理，以未处理作为对照，进行单氰胺涂芽处理和石硫合剂+1-氨基环丙烷羧酸（ACC）涂芽处理。记录和观察处理后阳光玫瑰葡萄冬芽的生长发育动态，并统计其萌芽率、成花率及花穗质量。基于RNA-seq分析，筛选不同休眠阶段阳光玫瑰葡萄冬芽破眠的相关基因，通过对差异表达基因进行KEGG代谢通路分析，探索不同休眠阶段阳光玫瑰葡萄冬芽休眠解除的关键影响基因。

1 材料和方法

1.1 试验材料

试验于2022—2023年在湖南农业大学教学基地内进行，供试品种为4年生阳光玫瑰葡萄。栽培方式为起高垄式根域限制栽培，喷灌方式为微喷。试验所用试剂：石硫合剂（有效成分含量29%，山东东信生物农药有限公司）；单氰胺（有效成分含量50%，宁夏大荣化工冶金有限公司）；1-氨基环丙烷羧酸（ACC，纯度98%，上海源叶生物科技有限公司）。

1.2 试验方法

1.2.1 冬季（内休眠阶段）冬芽破眠处理与样品采集 2022年1月16日，对阳光玫瑰基部留2芽修剪，收集基部起第3节位以上的枝条78根在室外进行埋沙贮藏。于2022年2月28日选取3～11节位（9个冬芽）的枝条在自然条件下进行涂芽处理（表1），每个处理26根枝条。分别在0 h、处理后24 h和72 h收集冬芽。样品收集标准：每个处理随机取4根枝条，收集每根枝条全部的冬芽，并迅速放入液氮中速冻，随后保存在-80 ℃超低温冰箱备用。

2023年2月16日，在6年生“飞鸟”架活体阳光玫瑰葡萄树上重复上述试验，验证结果。

1.2.2 夏季（类休眠阶段）冬芽破眠处理与样品采集 2022年8月13日，将平棚架“一”字形阳光玫瑰采收后的1年生主梢进行摘叶处理，将主梢进行第7节位短截后对其第5～7节位上的冬芽进行不同破眠剂处理（处理方法同表1），每个处理53根枝条。分别在0 h、处理后24 h和72 h收集冬芽。样品收集标准：每个处理随机取10根枝条，每根枝条上取5～7节位上的3个芽，并迅速放入液氮中速冻，随后保存在-80 ℃超低温冰箱备用。

1.2.3 观测指标与方法 以花芽出现明显膨大、鳞片松动、露绿较多作为萌发指标，进行冬芽萌芽率的统计。花穗长度分级标准：一级花穗长度≤3 cm；二级花穗长度为3～10 cm；三级花穗长度≥10 cm。

萌芽率/%=已萌动的冬芽数/调查的冬芽数×100。

成花率/%=有花穗新梢数/已萌动冬芽数×100。

1.2.4 RNA提取、文库构建和转录组测序 将2022年2月28日、3月1日、3月3日和8月13日、8月14日、8月16日收集的冬芽样品（表2）的RNA提取以及转录组测序委托百迈客生物科技有限公司（北京）完成。使用Nanodrop2000（赛默飞，Nanodrop2000）对提取的RNA进行浓度检测，并使用Agient2100，LabChip GX（厂家铂，型号铂金埃尔默LabChip GX）对完整性进行检测。样品检测合格后，进行文库构建：用带有Oligo（dT）的磁珠富集真核生物mRNA，加入Fragmentation Buffer将mRNA进行随机打断；以mRNA为模板，进行逆转录合成第一条cDNA链及其互补链，并经过纯化步骤去除；纯化的双链cDNA再进行末端修复、加A尾并连接测序接头，然后用AMPure XP beads进行片段大小选择；最后通过PCR富集得到cDNA文库。经库检合格后，使用Illumina NovaSeq6000测序平台进行PE150模式测序。

1.2.5 差异表达基因的筛选和分析 首先对样品中Mapped Reads的数目和转录本长度进行归一化处理，根据FPKM值判定基因的相对表达量。不同样本中表达水平存在显著差异的基因称之为差异表达基因（DEGs）。根据不同样品之间表达水平的相对高低，差异表达基因可以分为上调基因（up-regulated gene）和下调基因（down-regulated gene）。使用edgeR软件进行差异分析，将|log2Fold Change|≥1且FDR＜0.01作为差异表达基因的筛选标准。使用百迈客分析平台，导出基因在不同样品中的功能注释和相关代谢通路等信息，差异表达基因基于GO数据库和KEGG数据库进行功能注释并按照生物学过程、细胞组分和分子功能对其富集分析，找出差异基因显著富集的GO term和KEGG term。

1.2.6 数据分析 所有数据的采集和计算均设3个生物学重复。采用Excel整理数据，采用GraphPad Prism8和R语言聚类程序作图；采用SPSS26.0进行单因素ANOVA分析，多重比较采用LSD法。

2 结果与分析

2.1 不同破眠处理对不同休眠阶段葡萄萌芽和开花的影响

不同破眠处理对不同休眠阶段的阳光玫瑰葡萄芽的萌芽率、萌芽速度均会产生一定影响。内休眠阶段进行不同破眠处理后的葡萄离体枝条冬芽萌芽率结果（图1-A）表明，T1处理萌芽最早，其次是T2处理，最后是CK，各处理萌芽整体速度呈先慢后快的趋势。2022年4月10日，T1、T2处理后的萌芽率与CK相比开始出现显著差异，其中T2处理的萌芽率最高。2022年4月15日，T1处理与T2处理的萌芽率分别为81.48%和85.80%，均显著高于CK（66.05%）。类休眠阶段进行不同破眠处理后的葡萄冬芽萌芽率结果（图1-B）表明，T1处理萌芽最早，2022年9月3日，T1、T2处理后的萌芽率与CK相比开始出现显著差异，其中T2处理的萌芽率最高。2022年9月9日，T1与T2处理的萌芽率分别为65.66%和69.70%，均显著高于CK（41.41%）。内休眠阶段进行不同破眠处理后的葡萄冬芽萌芽率结果（图1-C）表明，处理后25 d，T1、T2处理的萌芽率与CK相比开始出现显著差异，2023年4月3日，T1与T2处理的萌芽率分别为96.43%和97.22%，均显著高于CK（76.19%）。

破眠处理后离体枝条上葡萄芽的生长发育动态如图2所示，T1、T2处理的葡萄芽提早解除休眠，均在2022年3月21日出现2～3枚新叶。T1处理在2022年3月15日已经开始萌芽，萌芽开始时间最早，萌芽较为整齐；T2处理的葡萄芽在3月21日左右开始萌芽，萌芽较为整齐。CK的葡萄芽在2022年4月2日出现2～3枚新叶，生长相对缓慢，萌芽不整齐。

破眠处理后葡萄枝条生长状态如图3所示，与CK相比，2023年4月3日，T1处理后的叶片生长速度最快，其次是T2处理。2023年4月29日，T1、T2处理后的叶片生长速度、叶片大小、节间长度与CK相比无显著差异。

为了解不同破眠处理对葡萄花穗的影响，笔者统计了不同破眠处理后所有1年生枝条的成花情况。如图4所示，T1、T2处理对葡萄1年生枝条的成花率相比于CK没有出现显著差异，同时也不影响花序长度。

2.2 转录组测序数据质量分析及序列比对

利用Illuminate平台，完成14个样本的转录组测序。为保证后续分析的准确性，笔者通过对原始数据进行一系列严格的质量控制后得到高质量的Clean Data。经过测序质量控制后，共得到92.92 Gb Clean Data，各样品Clean Data均达到5.89 Gb，Q30碱基百分比在94.21%以上，GC含量为45.72%～47.50%。以上结果表明测序质量较好，可以用于后续的比对分析。通过使用HISAT2将Clean Reads与参考基因组进行比对后发现，各样本的Reads与指定的参考基因组的比对率在85.18%～90.91%（表3）。

2.3 差异表达基因的筛选

以|log2fold changes|≥1、FDR＜0.01为标准筛选差异表达基因。通过差异表达基因韦恩图（图5）分析发现，在内休眠阶段，6个处理中全部共有的差异基因为177个，W-CK-72-vs-W-ACC-72与W-CK-72-vs-W-HC-72有大量相同的差异基因，为3598个；W-CK-24-vs-W-ACC-24和W-CK-72-vs-W-ACC-72共有差异基因536个；W-CK-24-vs-W-HC-24和W-CK-72-vs-W-HC-72共有差异基因2678个；W-CK-24-vs-W-ACC-24和W-CK-24-vs-W-HC-24共有差异基因较少，仅554个。在类休眠阶段，6个处理组中全部共有的差异基因为86个，S-CK-24-vs-S-HC-24和S-CK-72-vs-S-HC-72有大量相同的差异基因，为5796个；S-CK-72-vs-S-ACC-72和S-CK-72-vs-S-HC-72共有差异基因985个；S-CK-24-vs-S-ACC-24和S-CK-24-vs-S-HC-24共有差异基因724个；S-CK-24-vs-S-ACC-24和S-CK-72-vs-S-ACC-72共有差异基因较少，仅283个。

2.4 休眠期间差异表达基因模式变化

笔者研究了不同休眠阶段不同破眠处理后葡萄芽在2个时期的基因表达模式，鉴定的不同时期样本之间的DEGs数量如图6所示。结果表明，在类休眠阶段，T1处理后24 h有3662个基因显著上调，2935个基因显著下调；T1处理后72 h有4375个基因显著上调，3486个基因显著下调；T2处理后24 h有1636个基因显著上调，1301个基因显著下调；T2处理后72 h有1559个基因显著上调，1464个基因显著下调。在内休眠阶段，T1处理后24 h有2780个基因显著上调，1842个基因显著下调；T1处理后72 h有3230个基因显著上调，2071个基因显著下调；T2处理后24 h有661个基因显著上调，1137个基因显著下调；T2处理后72 h有3279个基因显著上调，2218个基因显著下调。

2.5 休眠期间差异基因的聚类分析

表达模式相似的基因通常具有相似的功能，为了解不同休眠阶段不同破眠处理后不同时期芽的差异表达基因的表达模式，笔者利用R语言中的聚类程序对12组样本的显著差异基因进行等级聚类分析（图7）。结果表明，4399个基因被分成8组，最多的一组（Class 8）包含了1161个DEGs，DEGs的表达模式呈现为在W-HC-24样本、W-HC-72样本上调表达，其他样本基本下调表达，这些基因显著富集在转移酶活性，转移氨基酰基以外的酰基、生物合成进程、UPD-糖基转移酶活性、苯丙氨酸解氨酶活性、解氨酶活性等途径。

第二大组（Class 7）包含821个基因，DEGs的表达模式呈现为在S-HC-72样本上调表达，其他样本基本下调表达，这些基因主要富集在光系统Ⅱ、叶绿体类囊体膜、光合作用，光系统Ⅰ的捕光天线复合体、膜的锚固成分、丝氨酸型羧肽酶活性等途径。

第三大组（Class 2）包含633个基因，DEGs的表达模式呈现为在S-CK-24样本、S-CK-72样本、S-ACC-24样本、S-ACC-72样本上调表达，其他样本基本下调表达，这些基因主要富集在响应热休克、响应过氧化氢、响应活性氧、蛋白质复合物寡聚化、蛋白质自聚集等途径。

第四大组（Class 4）包含480个基因，DEGs的表达模式呈现为在W-CK-24样本、W-CK-72样本、W-ACC-24样本上调表达，其他样本基本下调表达，这些基因主要富集在嘌呤核苷跨膜转运蛋白活性、纤维素合酶（UDP?forming）活性、磷脂代谢过程、纤维素生物合成过程、转氨酶活性等途径。

在Class 6中，373个基因在S-HC-72样本、W-ACC-72样本中上调表达，其他样本基本下调表达，这些基因主要富集在通过断裂诱导复制进行DNA双链断裂修复、微小染色体维持蛋白复合物、DNA复制起点结合、单链DNA结合、序列特异性DNA结合等途径。

在Class 3中，350个基因在S-CK-24样本、S-CK-72样本、S-ACC-24样本、S-ACC-72样本、W-CK-24样本、W-CK-72样本、W-ACC-24样本上调表达，其他样本基本下调表达，这些基因主要富集在序列特异性DNA结合、细胞氧化还原稳态、脂质转运、抗氧化活性、氧化还原酶活性、作用于硫基供体等途径。

在Class 5中，309个基因在S-HC-24样本、S-HC-72样本、W-ACC-72样本、W-HC-72样本上调表达，其余样本基本下调表达，这些基因主要富集在呼吸链、分枝酸生物合成过程、锌离子依赖的乙醇脱氢酶活性、S-羟甲基谷胱甘肽脱氢酶活性、甲醛分解代谢过程等途径。

在Class 1中，272个基因在S-HC-24样本中上调表达，其余样本基本下调表达，这些基因主要富集在未折叠蛋白反应、谷胱甘肽转移酶活性、谷胱甘肽代谢过程、内质网未折叠蛋白反应、蛋白质折叠等途径。

2.6 与休眠相关的差异表达基因筛选

在使用不同破眠剂打破葡萄芽休眠的过程中会引起植物体内一系列生理生化变化，同时会诱导破眠相关基因的表达。在内休眠阶段W-CK-72样本与W-HC-72样本相比的差异表达基因中（表4）有10个被注释为转录因子编码基因，其中上调的转录因子有3个，包括MYB4、ERF073、HSF A-4a；下调的转录因子有7个，包括ERF023-like、ERF011-like、TT2、MYB44、HSF C-1、Nuclear transcription factor Y、HSF30。另外，有10个被注释为参与生长素（auxin，AUX）、赤霉素（gibberelli acid，GA）、脱落酸（abscisic acid，ABA）、油菜素甾醇（brassinosteroids，BR）等激素的生物合成或介导的信号转导过程。在ABA信号通路中，PYL4基因上调表达；4个与蛋白磷酸酶2C（PP2C）家族相关的基因被注释，PP2C24、PP2C8、PP2C37均下调表达，PP2C25上调表达；与Snrk2家族相关的SAPK2基因下调表达。其他差异基因与氧化应激、谷胱甘肽S-转移酶等有关。

3 讨 论

生长期和休眠期是葡萄生长发育过程中较为明显的两个时期。在内休眠阶段，通过对葡萄冬芽采取物理或化学等破眠措施可使冬芽提前萌发[6]。前人在不同品种葡萄上均已试验证明单氰胺可以提前打破葡萄休眠[17]，在我国南方地区，萌芽前一个月对葡萄冬芽进行单氰胺处理破眠效果最佳，可明显提高萌芽率，从而在一定程度上能够提高葡萄产量。乙烯是五大植物激素之一，广泛参与到植物生长发育的各个进程中。前人研究表明，植物器官本身能生成乙烯，并提出了乙烯具有促进植物成熟衰老的作用[18]。乙烯是气体，在实际生产中主要使用乙烯利对香蕉[19]、菠萝蜜[20]等进行催熟；浙江、上海地区常用乙烯利对葡萄进行催熟。ACC是乙烯合成的前体，在1-氨基环丙烷-1-羧酸氧化酶（ACC氧化酶，ACO）的氧化作用下生成乙烯[21]。因此，笔者推测ACC可能对芽的萌发有一定的促进作用。

Keilin等[22]在构建单氰胺（HC）诱导表达的EST文库后，利用比较基因组学发现氧化应激、钙信号传导等生化过程中的功能基因可能参与休眠解除过程。Halaly等[23]研究表明，HC和热击（heaat shock，HS）两种方式均可解除生理休眠，触发细胞生化水平暂时性呼吸和氧化应激，诱导CAT、ADH和PDC等相关基因瞬时上调表达，破眠处理还诱导抗坏血酸过氧化物酶、谷胱甘肽还原酶、硫氧还蛋白h、谷胱甘肽S-转移酶和蔗糖合成酶编码基因表达。单氰胺处理休眠芽后，通过释放氰化物抑制有氧呼吸和过氧化氢酶活性，导致细胞缺氧的同时诱导过氧化氢产生，进而导致植物体内活性氧含量升高[24]。Pacey-Miller等[25]报道了葡萄休眠芽中活性氧相关的Cu/Zn超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶、谷胱甘肽硫转移酶、谷胱甘肽还原酶和过氧化氢酶基因表达量升高。在本研究中，MYB、ERF、MADS-box等转录因子都与芽萌发有关，这些转录因子通过共同调控多种途径从而影响葡萄萌芽，其中一些与氧化应激有关，钙信号传导等基因也对葡萄活性氧代谢进行调控。

植物激素与芽休眠密切相关，尤其是ABA和GA在调控芽休眠和萌发的过程中发挥着重要作用。Khalil-Ur-Rehman等[16]认为ABA和GA信号通路作为开关调节葡萄芽休眠。ABA可以促进杨树SVL基因的表达[12]，而内源ABA可通过激活PpyABF3调控梨PpyDAM3的转录，从而调控休眠进程[26]。在梨芽内休眠解除后观察到较低水平的NCEDs表达，PpyCYB8和Ppy707A3的表达上调，同时ABA含量降低[26]。李可等[27]研究表明，外源ABA可抑制蓝莓花芽萌芽。在本研究中，鉴定出与激素合成相关的基因，如GABA转运蛋白1、生长素反应蛋白、生长素抑制蛋白、脱落酸受体、BRI1激酶抑制剂1、蛋白磷酸酶、丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶等可能参与了植物激素信号转导。

本试验对不同休眠阶段的阳光玫瑰葡萄冬芽进行破眠试验，用萌芽率、成花率及花穗质量作为衡量葡萄破眠效果优劣的三个指标。试验结果表明，在类休眠阶段和内休眠阶段，单氰胺处理、石硫合剂+ACC处理均对阳光玫瑰葡萄萌芽产生积极影响，石硫合剂+ACC处理后的萌芽率略高于单氰胺处理，两种处理均能使阳光玫瑰葡萄冬芽萌发时间提前，显著提升植株萌芽率，对后续成花率及花穗长度均无影响，且不会引起药害。在本研究中，还有一些与环境响应相关的差异基因，如热击蛋白（Heat shock protein，HSP）基因、光敏色素（phytochrome）基因、水孔蛋白（aquaporin，AQP）等水分代谢相关的基因、蔗糖合酶（sucrose synthase）等能量与物质代谢相关的基因、细胞周期蛋白（cyclin，CYC）基因、细胞周期蛋白依赖激酶（cyclin-dependent protein kinase，CDK）等细胞发育相关的基因，可能也参与了葡萄芽休眠解除的调控。

4 结 论

5 °Bé石硫合剂+0.25 mg·mL-1ACC处理能提早打破葡萄休眠，且不影响后续成花率及花穗质量，对操作人员较为安全。石硫合剂+ACC的混合溶液是阳光玫瑰葡萄打破休眠的一种安全、理想的药剂。单氰胺处理、石硫合剂+ACC处理均诱导了PYL4、PP2C24、PP2C8、PP2C37、PP2C25、SAPK2等基因的表达，这些基因可能通过参与激素信号传导、氧化应激等反应打破芽的休眠，促进萌芽。

参考文献 References：

[1]   刘凤之. 我国葡萄产业现状与高质量发展方向[J]. 农业知识，2023（10）：10-14.

LIU Fengzhi．Present situation and high-quality development direction of grape industry in China[J]. Agriculture Knowlege，2023（10）：10-14.

[2]   LANG G A. Dormancy：A new universal terminology[J]. HortScience，1987，22（5）：817-820.

[3]   郭松涛，张亚红，李琴，张晓丽，付玉芳，刘帅. 宁夏地区设施葡萄需冷量和需热量研究[J]. 果树学报，2020，37（7）：997-1007.

GUO Songtao，ZHANG Yahong，LI Qin，ZHANG Xiaoli，FU Yufang，LIU Shuai. Chilling and heat requirements of grape cultivars under protected culture in Ningxia area[J]. Journal of Fruit Science，2020，37（7）：997-1007.

[4]   董阳. 转录和蛋白质组学联合分析单氰胺（HC）打破葡萄芽休眠分子机制研究[D]. 南京：南京农业大学，2020.

DONG Yang. Combined transcription and proteomics analysis of molecular mechanism of hydrogen cyanamide （HC） breaking grape bud dormancy[D]. Nanjing：Nanjing Agricultural University，2020.

[5]   樊绍刚，吴胜，朱明涛，余俊，白描，杨国顺. 葡萄冬芽生理休眠机理研究进展[J]. 东北农业大学学报，2019，50（10）：88-96.

FAN Shaogang，WU Sheng，ZHU Mingtao，YU Jun，BAI Miao，YANG Guoshun. Progress research on mechanism of grape bud dormancy[J]. Journal of Northeast Agricultural University，2019，50（10）：88-96.

[6]   LAMELA C S P，REZEMINI F，BACINO M F，MALGARIM M B，HERTER F G，DA SILVEIRA PASA M. Dormancy dynamics of ‘Tannat grapes in warm-winter climate conditions[J]. Agricultural and Forest Meteorology，2020，288/289：108016.

[7]   李建召. 脱落酸及相关激素调控梨芽休眠的分子机制研究[D]. 杭州：浙江大学，2019.

LI Jianzhao. Studies on the molecular mechanism of ABA and related phytohormones-regulated pear bud dormancy[D]. Hangzhou：Zhejiang University，2019.

[8]   安爽，高玉迪，麦迪努尔·玉苏普，潘益娜，邵婉，宗宇，陈文荣，杨莉，郭卫东，李永强. 外源脱落酸抑制蓝莓早花及相关基因表达特性研究[J]. 果树学报，2021，38（3）：325-334.

AN Shuang，GAO Yudi，Maidinuer·Yusupu，PAN Yina，SHAO Wan，ZONG Yu，CHEN Wenrong，YANG Li，GUO Weidong， LI Yonggiang. Research on application exogenous abscisic acid in inhibiting early flowering and associated genes expression characteristics in blueberry[J]. Journal of Fruit Science，2021，38（3）：325-334.

[9]   WANG Q J，XU G X，ZHAO X H，ZHANG Z J，WANG X X，LIU X，XIAO W，FU X L，CHEN X D，GAO D S，LI D M，LI L. Transcription factor TCP20 regulates peach bud endodormancy by inhibiting DAM5/DAM6 and interacting with ABF2[J]. Journal of Experimental Botany，2020，71（4）：1585-1597.

[10] 杨博，魏佳，李坤峰，王程亮，倪隽蓓，滕元文，白松龄. PpyERF060-PpyABF3-PpyMADS71调控乙烯信号通路介导的梨芽休眠进程[J]. 园艺学报，2022，49（10）：2249-2262.

YANG Bo，WEI Jia，LI Kunfeng，WANG Chengliang，NI Junbei，TENG Yuanwen，BAI Songling. PpyERF060-PpyABF3-PpyMADS71 regulates ethylene signaling pathway-mediated pear bud dormancy process[J]. Acta Horticulturae Sinica，2022，49（10）：2249-2262.

[11] DONG Z B，XIAO Y G，GOVINDARAJULU R，FEIL R，SIDDOWAY M L，NIELSEN T，LUNN J E，HAWKINS J，WHIPPLE C，CHUCK G. The regulatory landscape of a core maize domestication module controlling bud dormancy and growth repression[J]. Nature Communications，2019，10：3810.

[12] SINGH R K，MAURYA J P，AZEEZ A，MISKOLCZI P，TYLEWICZ S，STOJKOVI? K，DELHOMME N，BUSOV V，BHALERAO R P. A genetic network mediating the control of bud break in hybrid aspen[J]. Nature Communications，2018，9：4173.

[13] LI S，WANG Q J，WEN B B，ZHANG R，JING X L，XIAO W，CHEN X D，TAN Q P，LI L. Endodormancy release can be modulated by the GA4-GID1c-DELLA2 module in peach leaf buds[J]. Frontiers in Plant Science，2021，12：713514.

[14] 刘瑾航，沈炳荣，李宜轩，梁沁，冯宇，林晓洁，沈茂芬，吴少华，李亮，李永裕. 砂梨miR159家族进化特性及在冬季休眠的表达模式分析[J]. 果树学报，2022，39（11）：2007-2018.

LIU Jinhang，SHEN Bingrong，LI Yixuan，LIANG Qin，FENG Yu，LIN Xiaojie，SHEN Maofen，WU Shaohua，LI Liang，LI Yongyu. Molecular evolution of miR159 family and their expression profiling during dormancy of Pyrus pyrifolia in the winter[J]. Journal of Fruit Science，2022，39（11）：2007-2018.

[15] 施招婉. 葡萄芽休眠解除过程中乙烯合成与信号途径关键基因的筛选与功能分析[D]. 广州：华南农业大学，2022.

SHI Zhaowan. Screening and functional analysis of key genes involved in ethylene biosynthesis and signaling pathways during grape bud dormancy release[D]. Guangzhou：South China Agricultural University，2022.

[16] KHALIL-UR-REHMAN M，DONG Y，FAHEEM M，ZENG J J，WANG W，TAO J M. Expression profiling of ABA and GA signaling cascades regulating bud dormancy in grape[J]. Scientia Horticulturae，2019，246：44-50.

[17] 谭一婷. 单氰胺对不同葡萄品种休眠解除生理特性及综合品质的影响[D]. 太谷：山西农业大学，2021.

TAN Yiting. Effects of cyanamide on physiological characteristics of dormancy release and comprehensive quality of different grape[D]. Taigu：Shanxi Agriculture University，2021.

[18] 黎家，李传友. 新中国成立70年来植物激素研究进展[J]. 中国科学：生命科学，2019，49（10）：1227-1281.

LI Jia，LI Chuanyou. Seventy-year major research progress in plant hormones by Chinese scholars[J]. Scientia Sinica （Vitae），2019，49（10）：1227-1281.

[19] 李芬芳，李奕星，袁德保，洪克前，陈娇. 不同乙烯利浓度及贮藏温度对“南天黄” 香蕉果实后熟品质的影响[J]. 中国南方果树，2022，51（2）：72-77．

LI Fenfang，LI Yixing，YUAN Debao，HONG Keqian，CHEN Jiao. Effects of different concentrations of ethrel and storage temperatures on post-ripening quality of ‘Nantianhuang banana[J]. South China Fruits，2022，51（2）：72-77.

[20] 任雪岩，刘光财，李国鹏，叶春海，丰锋，王俊宁. 乙烯利和1-MCP对菠萝蜜果实中AheAAT和AheERF表达的影响[J]. 中国农业科学，2019，52（21）：3890-3902.

REN Xueyan，LIU Guangcai，LI Guopeng，YE Chunhai，FENG Feng，WANG Junning. Effects of ethephon and 1-MCP on the expression of AheAAT gene and AheERF transcription factors in jackfruit fruit[J]. Scientia Agricultura Sinica，2019，52（21）：3890-3902.

[21] YANG S F，HOFFMAN N E. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants[J]. Annual Review of Plant Physiology，1984，35：155-189.

[22] KEILIN T，PANG X Q，VENKATESWARI J，HALALY T，CRANE O，KEREN A，OGRODOVITCH A，OPHIR R，VOLPIN H，GALBRAITH D，OR E. Digital expression profiling of a grape-bud EST collection leads to new insight into molecular events during grape-bud dormancy release[J]. Plant Science，2007，173（4）：446-457.

[23] HALALY T，PANG X Q，BATIKOFF T，CRANE O，KEREN A，VENKATESWARI J，OGRODOVITCH A，SADKA A，LAVEE S，OR E. Similar mechanisms might be triggered by alternative external stimuli that induce dormancy release in grape buds[J]. Planta，2008，228（1）：79-88.

[24] SUDAWAN B，CHANG C S，CHAO H F，KU M S B，YEN Y F. Hydrogen cyanamide breaks grapevine bud dormancy in the summer through transient activation of gene expression and accumulation of reactive oxygen and nitrogen species[J]. BMC Plant Biology，2016，16（1）：202.

[25] PACEY-MILLER T，SCOTT K，ABLETT E，TINGEY S，CHING A，HENRY R. Genes associated with the end of dormancy in grapes[J]. Functional & Integrative Genomics，2003，3（4）：144-152.

[26] YANG Q S，GAO Y H，WU X Y，MORIGUCHI T，BAI S L，TENG Y W. Bud endodormancy in deciduous fruit trees：Advances and prospects[J]. Horticulture Research，2021，8：139.

[27] 李可，申朦晓，潘炜浩，章诗渲，毛欣烨，尹亚红，李永强，朱友银，郭卫东. 蓝莓C2H2家族基因在花芽休眠解除中的作用初探[J]. 园艺学报，2023，50（4）：737-753.

LI Ke，SHEN Mengxiao，PAN Weihao，ZHANG Shixuan，MAO Xinye，YIN Yahong，LI Yongqiang，ZHU Youyin，GUO Weidong. Preliminary investigation of C2H2 family genes in blueberry flower bud dormancy release[J]. Acta Horticulturae Sinica，2023，50（4）：737-753.