活性酵母对湖羊生长性能、血液指标的影响

■ 张 惠 魏宗友 王栋麟 程 鹏 高俊玲 全英凯

（1.安佑生物科技集团股份有限公司，江苏 太仓 215437；2.太仓市农业农村科技服务中心，江苏 太仓 215299）

在动物集约化生产中，饲喂高精料饲粮可满足反刍动物快速生长对营养物质的需求。然而精料比例或饲粮能量水平过高会增加反刍动物发生亚急性瘤胃酸中毒的风险[1]，造成脂多糖、组胺和D-乳酸等异常代谢产物在瘤胃中大量积累，这些异常代谢产物会破坏瘤胃环境，使瘤胃上皮屏障功能受到损伤，从而影响动物生理健康以及生长性能[2]。

酵母在反刍动物养殖生产中有着广泛应用，是天然的绿色饲料添加剂，能够增加采食量、维持反刍动物瘤胃内pH 稳定[3]、预防瘤胃酸中毒、提高生长性能[4]，还可以增加反刍动物的免疫功能[5]。马苗苗[6]研究活性干酵母对湖羊养分消化、瘤胃发酵和微生物区系的影响，结果表明，饲喂0.6 g/（d·头）的酵母对瘤胃微生物的影响最佳。柳思强[7]的研究表明，肉牛在低营养水平（NEmf：5.11 MJ/kg，CP：12%）饲粮下添加4 g/（d·头）的活性干酵母，可产生与高营养水平（NEmf：5.87 MJ/kg，CP：13.05%）饲粮相近的生产性能。林静[8]研究活性干酵母对荷斯坦泌乳牛生长性能、瘤胃发酵和细菌群落的影响，结果表明，饲粮中每头牛添加5 g/d 的活性酵母，可改善荷斯坦泌乳牛瘤胃发酵功能，提高采食量和泌乳性能。

因此，试验向育肥期湖羊饲粮精料中添加一定剂量的活性酵母，旨在探究其对湖羊生长性能、血液指标的影响，为活性酵母在反刍动物饲料中的合理使用提供参考依据。

1 材料与方法

1.1 试验设计

选取60 日龄体重20 kg 左右体况良好的育肥期湖羊40 只，随机分成4 组：对照组（无酵母添加）、A 酵母组（添加A 酵母1.5 g/kg）、B 酵母组（添加B 酵母1.5 g/kg）以及C酵母组（添加C酵母1.5 g/kg）。每个处理组设5 个重复（圈），每个重复2 只羊，试验期30 d，预饲期7 d。

1.2 试验材料

A、B、C 3种酿酒酵母分别是由3家不同的公司提供，其中A、B 酵母活菌数≥2.00×1010CFU/g；C 酵母活菌数≥1.50×1010CFU/g。

1.3 试验饲粮及饲养管理

试验在苏州太仓某羊场进行，肉羊饲粮精、粗料均由该羊场提供，饲粮精料、粗料配方如表1、表2 所示。每个羊圈的设备和条件一致，全程自由饮水。每天先喂精料后喂粗料，精料饲喂量为粗料的1/10，粗料自由采食。驱虫、消毒及免疫等按羊场正常管理方法进行。

表1 肉羊饲粮精料配方（%）

表2 肉羊饲粮粗料配方（%）

1.4 测定指标

1.4.1 生长性能

日增重：分别于试验第0 天、第30 天清晨喂料前以栏为单位对试验羊进行空腹称重，试验期间记录死淘羊体重、参与试验天数，用以计算试验过程中每栏羊的日增重。

日增重=（栏末重－栏初重+死淘羊末重）/（栏剩余只数×试验总天数+死淘羊参与试验天数）

日采食量：记录每栏加料数据，并记录试验结束时每栏的剩料量。计算平均日采食量。精料和粗饲料的采食量都要记录。

日采食量=（第一次加料重+第二次加料重+……+最后一次加料重-剩料重）/（栏剩余羊只数×试验天数+死淘羊试验天数）

料重比=日采食量/日增重

1.4.2 血液指标

于试验结束当天每组选取5 只羊（每个重复选取1 只），用真空采血管采取颈静脉血5 mL，3 000 r/min离心5 min，将分离后的血清-20 ℃保存，用于血清生化指标检测。

血清中GSH-Px 和SOD 活性，IgA、IgM 和MDA 含量，T-AOC 等，都按南京建成生物工程研究所有限公司提供的试剂盒进行检测。

1.5 统计分析

试验数据采用SPSS 24.0 版本软件，以单因素方差分析（one-way ANOVA）进行统计分析，Duncan’s法进行均值的多重比较。结果以“平均数±标准差（Mean±SD）”表示，P＜0.05表示差异显著。

2 结果与分析

2.1 生长性能

由表3 可知，A 酵母组的日采食量和日增重均高于对照组，B 酵母组的日采食量低于对照组但日增重高于对照组，C 酵母组的日采食量和日增重均低于对照组，但差异均不显著（P＞0.05）。料重比方面，C酵母组高于对照组，A酵母组和B酵母组则低于对照组，但无显著性差异（P＞0.05）。

表3 活性酵母对湖羊生长性能的影响

2.2 血液指标

由表4可知，B酵母组和C酵母组的GSH-Px活性均高于对照组，分别提高48.2%和17.6%，而A 酵母组的GSH-Px 活性则低于对照组，降低了26.5%，但均无显著性差异（P＞0.05）；而B 酵母组显著高于A 酵母（P＜0.05）。A酵母组MDA 含量高于对照组，但差异不显著（P＞0.05），B 酵母组和C 酵母组的MDA 含量显著低于对照组（P＜0.05），且B 酵母组的MDA 含量最低。相比于对照组，A 酵母组的SOD 含量较低，而B 酵母组和C 酵母组则较高，其中B 酵母组的SOD 含量最高，但均不显著（P＞0.05）。3 个处理组的T-AOC 相比于对照组均有所降低，其中C 酵母组最低且显著低于对照组（P＜0.05）。对于免疫球蛋白的影响，3 个处理组中IgA 和IgM 的含量与对照组相比均有所提升，其中B 酵母组IgA 含量最高，比对照组高31.28%，C 酵母组的IgM 含量最高，相比对照组高29.8%，但差异均不显著（P＞0.05）。

表4 活性酵母对湖羊血液指标的影响

3 讨论

3.1 饲料添加活性酵母对育肥期湖羊生长性能的影响

采食量和增重是评价动物生长发育是否良好的综合性、也是常用指标，这在一定程度上反映了育肥期湖羊的生长性能。诸多研究表明，活性酵母能够在动物生产中提高动物的生产性能，Geng 等[9]在高精料中添加活性酵母饲喂肉牛的影响研究中发现，添加活性酵母可以显著提高其生长性能和产肉性能。杨云天[10]的研究结果表明，持续添加酵母60 d，关中奶山羊的平均日增重显著提高。

试验结果表明，与对照组相比，饲粮精料中添加1.5 g/kg A、B 和C 酵母，对湖羊的日采食量和日增重均无显著影响，可能与饲喂酵母的剂量及时间有关。该结果与Deters[11]等在饲粮中添加14 g/（头·d）或28 g/（头·d）的活性酵母，对育肥牛的生长性能没有显著影响一致。

3.2 饲料添加活性酵母对育肥期湖羊血清抗氧化指标的影响

T-AOC 能够反映机体清除活性氧和一氧化氮合酶的总能力，是评价动物机体抗氧化能力的综合指标，GSH-Px、SOD 是动物体内两种主要的抗氧化物酶，二者协同作用清除机体活性氧，防止脂质过氧化作用，在一定的范围内，其活性越高表示机体清除氧化自由基的能力越强[12]。MDA 作为生物膜中多不饱和脂肪酸遭受自由基攻击产生的最终产物，其含量的高低可以间接反映机体氧化损伤的程度[13]。动物机体处于健康状态时，活性氧的产生与去除是处于一个动态平衡的状态，一旦动物机体处于氧化应激状态下，氧自由基大量产生会打破动态平衡，不仅会影响细胞代谢，严重时还会导致自身代谢疾病的发生[14]。

本试验结果表明，除A 酵母组外，B、C 酵母组血清中的GSH-Px和SOD活性均高于对照组，且MDA含量均显著低于对照组，说明在饲粮精料中添加一定量的活性酵母能够提高湖羊机体的抗氧化能力，该结果与肖旭[15]在仔猪以及Jia 等[16]在育肥羊上的试验结果相一致，这可能是由于活性酵母优化了动物肠道菌群从而提高了动物机体的抗氧化能力，但具体的作用机理则需要更进一步的研究。

3.3 饲料添加活性酵母对育肥期湖羊血清免疫指标的影响

免疫球蛋白是指具有抗体活性或化学结构与抗体分子相似的球蛋白，是评价机体健康状况的重要指标，对机体抵抗疾病和维持自身健康状况具有重要意义[17]。动物体内的IgA 能够对机体呼吸道、消化道等局部黏膜免疫起作用，IgM 则作为动物体内分子质量最大的免疫球蛋白，具有调节免疫、激活补体、杀菌和凝集的作用。

试验中，相比于对照组，A、B和C酵母组的IgA 和IgM 均有所提高，该结果与王泳杰等[18]试验结果一致。该结果说明添加合适的活性酵母能够促进免疫球蛋白的分泌，从而提高育肥期湖羊的免疫力。其原因可能在于一方面酵母细胞可以通过酶解生成β-葡聚糖和甘露聚糖，可以释放抑菌活性物质，抵抗病原微生物[19]，另一方面提高了动物血液中抗体水平，刺激了机体的体液免疫应答，从而使IgA、IgM 和免疫球蛋白G（IgG）等含量增高[20]。

4 结论

饲粮精料中添加1.5 g/kg 的活性酵母，能够提高湖羊的抗氧化能力和免疫能力，但不同酵母产品间效果存在差异，生产运用上最适添加量也有待进一步的研究。