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牛出血性败血症的流行病学、诊断和防控措施

2023-07-30辛启明

中国动物保健 2023年5期
关键词:牛体败血症出血性

辛启明

(夏河县曲奥乡畜牧兽医工作站 甘肃甘南 747199)

近年来,无论是在家庭散养还是规模化养殖,牛出血性败血症的发病数量及发病程度皆呈上升趋势,该病在发病季节、病牛品种及年龄上皆没有显著特征,做好流行病学诊断和防控措施分析很有必要。

1 牛出血性败血症的流行病学诊断

1.1 病原诊断

牛出血性败血症的病原为巴氏杆菌,主要存活于牛体呼吸道当中,革兰氏染色呈阴性,菌体两端呈钝圆状,中间部分微微凸起,该菌很容易受到外界环境的影响,本身抵抗能力很差[1]。诸如在高温状态下便可迅速死亡,以光照直射20~30 min 也会死亡,在空气环境中通常最多能存活2~3 d,在血液中则会存活5~10 d,大多数消毒药剂皆可以将其消灭。病牛、带菌牛及其排泄物是最为主要的传染源,病牛食用过的饲料、饮水以及使用过的一应用具同样也会带有病菌,病菌可通过伤口、呼吸道消化道等途径侵入其他牛只体内,传播渠道多元。此外,在温差较大、圈内环境较差、空气流通不畅、饲料养分不均衡等情形下,很容易引起牛群应激,致使牛体抗病水平大减,此时出现出血性败血症的概率将会更高。一旦感染病原,如果牛只本身抗病水平较高,则遭受病症侵扰的概率较低,反之,如果牛只本身抗病水平较低,即便只有少数病原也容易出现较为严重的病症,对此,牛场人员在平时的饲喂中要有意识地以多种手段强化牛体体质。

1.2 临床症状

大多数病牛在发病后状态不振、反应缓慢、呼吸不畅,进食量大减,常常卧倒在地,粪便稀薄且有明显的异味,牛体多个器官及部位皆会出现大小不一的出血点,基于实际症状的差异,可将病牛细化为三类。具体如下:

1)水肿型,病牛四肢、头、胸等部位皆出现水肿问题,呼吸不畅或者伴有咳嗽,牛口处时常流有白色黏液,双眼发红变肿,结膜出现炎症问题,粪便较为稀薄,病程大多会持续2~3d,直至病牛由于呼吸受阻或身体虚脱而死亡。

2)肺炎型,病牛呼吸不畅,干咳问题十分突出,有些病牛还会伴有呕吐,牛体温度高达42 ℃,鼻腔中时常流有脓性黏液,对其加以听诊可察觉其胸部出现明显的浊音,双眼肿大,时常流泪;通常病程可延续3~10 d 左右,病症更为严重的病牛还会排出血便、呼吸衰竭、头颈前移等一连串症状,最终会因为牛体虚脱而死亡,这一类型也是临床实践中最为普遍的病牛类型。

3)败血型,病牛体温可迅速升高至41~42 ℃,神态沉郁,牛体虚弱,呼吸受损且伴有时不时的干咳,鼻中流有带血丝的黏液,直接拒绝进食,反刍行为中断,腹部异常疼痛,粪便中常出现血丝,发病时间可达2~3 d,病牛最后死亡。

1.3 病理学变化

病死牛的诸多脏器器官皆有显著的败血症变化,可发现程度不一的充血、出血问题,切开其咽喉以及颈前处肿大硬挺的皮肤后,流有许多颜色淡黄的浑浊液体,同时皮下组织也被血液状内容物浸润。打开病死牛的胸腔后,其中存有诸多纤维素性渗出物,病变最为明显的是肺脏部位,肺脏组织表层还会附着一层纤维素性薄膜,去掉薄膜之后,可以看到在脏器上面长有诸多较小的出血点。发病时间有差异,病死牛的肺脏病变也存有差异,小叶间淋巴管有所加宽,淤血严重,心叶、尖叶处也有许多出血点,膈叶处还有坏死的病灶,切开肿胀的肺脏组织,切面呈现为大理石纹路[2]。上呼吸道黏膜肿大异常,于黏膜表层还能观察到大量脓性分泌物,颈前淋巴结受到炎症影响肿大充血,颜色变化为紫红色,此外,肝、肾、脾脏也皆有程度不一的肿大问题。

1.4 实验室诊断

基于病牛的病程长短、病症表现可以就具体的患病情况做出初步诊断,然而要想得到更为确切的诊断结果,还需依靠更为严谨科学的实验室诊断,可以收集病牛的病变组织,依靠染色镜检开展细致的观察。于镜检过程中,可以观察到革兰氏阴性染色的小杆菌,将病料在培养基上接种,然后放在恒温环境中加以培养,24 h之后可以发现颜色呈灰白、形状呈圆形的小菌落。通过提取、分离操作,可以获取到革兰氏阴性染色的小杆菌,将病料仔细粉碎之后,依托于离心处理程序可以制成悬浊液,将液体以腹腔注射的形式注射至小鼠体中,做好后续观察。如果在注射完24 h 后,发现小鼠已经死亡,并且小鼠皆表现出显著的败血症病症,收集到的病料通过染色镜检,得到同上述诊断相似的结果,则可以确诊为出血性败血症。

2 牛出血性败血症的防控措施分析

2.1 药物防治

考虑到这一疾病发病迅速且危害性大、致死率高,一旦察觉到有相似病症的病牛后,便要立即启动严谨规范的诊断流程,秉持及早发现、及早诊治的原则加以处理,选用高敏抗生素,于病牛一开始发病时便给以药物治疗。针对那些病情尤为严重,治愈概率较小的病牛,则要当断则断,及时放弃,在诊治的同时,对于病牛所在的养殖环境也要立即加以充分消杀,以免周围残余病菌继续传染给其他牛只。在病牛的治疗方面,可以选用丁胺卡那霉素注射液,以肌注形式给病牛注射,用量为0.1 mL/kg·bw,注射频次保持2 次/d,接连用药3 d 便可见疗效[3]。另外,对发病牛肌肉注射青霉素钾320万IU/头,旨在将机体中的病原菌灭活;无法正常饮食的病牛,需要补充机体营养,可静脉注射葡萄糖;降温、镇痛可肌注10% VC、安痛定;心力衰竭的病牛,为促进机体康复,可静脉注射氢化可的松、安钠咖。对未发病牛可肌注青霉素320 万IU/头+10% VC 20 mL/头。在药物搭配方面必须格外谨慎,将具备协同功效的药物加以配伍应用,能强化疗效、降低用量、缩减开支,将相互拮抗的药物搭配在一起,则会影响药效的发挥,致使病程延长,引发诸多损失。

2.2 免疫接种

做好上述处理后,可确保大多数病牛尽快痊愈,将疫情蔓延趋势控制住,平时也需紧抓接种事宜,现阶段,疫苗接种依然是最为有效的疫病预防方式,若是牛场病牛频发出血性败血症,便要为牛只接种牛多杀性巴氏杆菌病灭活疫苗[4]。一般接种后的2 周时间内便可生成有效抗体,继而大大提升防控成效,通常于每年的春秋时节需分别接种一次,可以帮助牛只规避疾病高发期,但在接种时,必须注意剂量的控制:对于体重低于100 kg 的牛只,接种剂量为4 mL,对于体重高于100 kg 的牛只,接种剂量为6 mL,在接种时特别要注意不能同时接种其他疫苗。还需重申的一点是,疫苗接种并不是万能的,牛场人员在牛只接完种之后必须观察牛只的状态表现,以免牛只应激反应过度,若是察觉有牛只存在异常状态,必须及早妥善处理。

2.3 引种管理

强化引种管理和外源隔离,在具备相应条件的前提下,牛场应当施行全进全出、自繁自养的养殖模式,尽可能地规避病源的侵入,此举在防范外来病原侵入,保证牛群的稳定性方面效力显著。若是不具备相应条件,必须自外地引种,则要一毫不苟地依循各项流程做好检疫处理,事先进行全面调查,明确种源地未出现出血性败血症疫情,做到规范引种,严格检疫。在牛只入场之前便要做好一应准备,引入之后需隔离在专门的牛圈,一应用具皆要单独存放、单独清洁,注意观察引入牛只的状态表现,必须确保无异常后方可继续混养。相关部门也需强化检疫,拟定详细的管理规划,强制检疫机构就那些外来引入的猪只加以全面检疫,判断猪只有没有携带病菌,未达到检疫要求的猪只,则需即刻施以必要的防范处理措施,避免其流入市场。

2.4 消毒管理

日常的消毒清洁亦不可落下,牛圈各处要加以充分消杀,84 消毒液、石灰、氢氧化钠溶液皆是较好的药剂选择,尤其是各个角落,饲槽、水槽等用具也不能略过,不忽视每一处细节,方能自根源上将病菌的蔓延渠道一一斩断。平时注意定期更换消毒药剂,此举是为了防范病菌生成抗药性,影响到药效的发挥,若是遇到疾病高发期则要加大消毒频次,在配备消毒药剂时,要一丝不苟地依循药物说明开展。为避免疾病自外传入,尽可能实行封闭化养殖模式,闲杂人员不允许入场,一定要入场时需逐一依循相应的消毒流程做好处理之后方可入场,同时也要避免各个牛圈的饲养人员的随意走动。牛场内还要配备专门的消毒室、更衣室,相应人员在进入牛圈之前务必要消好毒、淋好浴、换好衣,做好准备后方可进入,场区道路方面要将净、污两道分离,避免存在交叉问题。

3 结语

总而言之,要想切实提高牛出血性败血症防治成效,便需一丝不苟做好流行病学诊断,然后基于诊断结果按部就班就一应处理、治疗事宜做好,为并参照上文提及的治疗方法将一应治疗要点一一落实到位。以期以更具针对性、更为全面化的治疗措施加快病牛的康复进程,平时的养殖中也要免疫接种、环境维护、养殖管理等多方面切入提前加以应对,尽量避免牛出血性败血症的暴发,为牛只供以更为适宜、稳定的养殖环境。

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