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BRIX 蛋白质超家族在结直肠癌发生发展中的作用机制研究进展

2023-01-06陆马乘程聪张烨

山东医药 2022年6期
关键词:核糖体亚基结构域

陆马乘,程聪,张烨

南京医科大学附属无锡市人民医院普外科,江苏无锡214023

结直肠肿瘤(CRC)是最常见的消化系统肿瘤之一[1]。手术和放化疗是CRC 的主要治疗手段,但治疗效果均不佳。分子靶向治疗是一种新兴肿瘤治疗方法,已成为CRC 个体化治疗和综合治疗的一线方案。目前CRC 患者接受靶向药物治疗后常出现耐药。核糖体生物发生可能是一个新的CRC 潜在治疗靶点[2]。BRIX 是KASER 等[3]发现的非洲爪蛙胚胎核糖核蛋白BRIX1 的特征结构域,他们把拥有这个特征性结构域的真核及原核核糖体相关蛋白命名为BRIX 蛋白质超家族,也称为BRIX 结构相关域蛋白(BRIX domain-containing protein,BXDC)。来源于真核细胞的BRIX 蛋白质超家族有5 个,分别为BXDC1(RPF2)、BXDC2(BRIX1)、BXDC3(PPAN)、BXDC4(IMP4)和BXDC5(RPF1)[4]。BRIX 蛋白质超家族通过核糖体生物发生及其相关因子途径、5sRNPMDM2-p53途径和Wnt/β-catenin信号通路等途径参与CRC 的发生发展,目前已有较多相关报道。现就BRIX 蛋白质超家族在CRC 发生发展中的作用机制研究进展综述如下,以期为CRC 靶向治疗药物的开发提供理论依据。

1 BRIX 蛋白质超家族通过调节核糖体生物发生调控CRC的发生发展

核糖体的生物发生与rDNA 的表达有关,而rDNA 表达失控与CRC 的发生发展密切相关[5]。CRC胃肠黏膜细胞的癌变与rDNA 转录活性上调有关[6]。BRIX蛋白质超家族是细胞周期的重要参与因子,其BRIX 结构域被认为是RNA 结合单元,在细胞中可与特定RNA(即rRNA)结合,同时作为一个rRNA 与相关蛋白作用的平台,参与核糖体的合成及组装,影响恶性肿瘤细胞的生长[7]。BRIX 蛋白质超家族可通过参与核糖体大、小亚基的发生及核糖体发生等过程,参与CRC 的发生发展。BRIX1、PPAN、RPF1和RPF2 分别作用于大亚基,是核糖体大亚基合成组装的重要调控因子[8]。IMP4 是真核生物U3 snoRNP 复合物的组成部分,参与18S 前体rRNA加工[7]。

1.1 BRIX 蛋白质超家族通过调节核糖体大亚基发生调控CRC的发生发展

1.1.1 RPF2通过调节核糖体大亚基发生调控CRC的发生发展 RPF2 是参与核糖体大亚基装配的重要因子[4],参与了5sRNP到60s核糖体大亚基前体的组装和成熟。RPF2 拥有两个BRIX 结构域,其C’端的部分与核糖体大亚基结合,而N’端的结构域则与核糖体发生的相关RNA 因子结合,从而在核糖体发生中介导大亚基-RNA因子相互作用,发挥着结合骨架的功能[9]。但RPF2无法单独发挥作用,它需要与核糖体生物发生调节蛋白1(Ribosome Biogenesis Regulator 1 Homolog,Rrs1)结合,组成异二聚体,才能稳定锚定在核糖体大亚基前体上[10]。在真核细胞的生物发生中,RPF2-Rrs1 异二聚体参与5sRNP 与60s 核糖体大亚基前体的结合,使5sRNP 与60s 核糖体大亚基前体组装,调控5sRNP 旋转获得成熟功能结构[11]。另有研究[12]发现,RPF2-Rrs1 异二聚体同时参与大亚基中的25srRNA 加工成熟RPF2 作为TOR 的下游因子,调节核糖体发生,促进细胞增殖,抑制肿瘤细胞凋亡,参与到mTOR 相关的CRC 发生发展中。

1.1.2 BRIX1(BXDC2)通过调节核糖体大亚基发生调控CRC 的发生发展 BRIX1 是第一个被发现拥有BRIX 结构域的BRIX 蛋白质超家族成员,其BRIX结构域可与特定rRNA结合,参与核糖体合成,参与CRC 的发生发展[13]。在酵母菌的核糖体生物发生中,BRIX1 与EBNA1 结合蛋白2(EBP2)共同作用,促进25S rRNA 的成熟及60S 核糖体亚基的组装[14]。BRIX1-EBP2 具有合成杀伤力,二者中任一一蛋白突变,都不会导致细胞核糖体的生物发生功能障碍;但二者同时突变可导致细胞的核糖体生物发生明显受阻[15]。SHIMOJI 等[16]研究发现,EBP2 可以独立于BRIX1 与核糖体前体结合,阻断BRIX1 及EBP2 均可导致核糖体27sA3 pre-rRNA 成熟障碍。因此,BRIX1与EBP2可能作为核糖体大亚基生物发生的关键因子,具有共同的分子作用途径,且EBP2的作用优先于BRIX1,并且两者之间的相互作用,可能是通过Pwp1、Nop2、RPL8 和RPL15[16]等第三方因子介导的间接途径。

1.1.3 PPAN(BXDC3)通过调节核糖体大亚基发生调控CRC 的发生发展 PPAN 首次发现于在酵母菌的胞质中,又被称为第二步剪切因子1(Second-Step Splicing Factor 1,SSF1/SSF2)[17]。PPAN 定位于核仁中,通过特征性BRIX 结构域的σ70功能区特异性结合rRNA,与核磷蛋白(NPM)协同作用于60s 大亚基,阻止60s大亚基的过早剪切引起的核糖体成熟功能障碍[18]。PPAN在核仁还可以与上游结合因子1(Upstream Binding Transcription Factor,UBF1)相互作用,通过调节RNAPolⅠ影响核糖体生物发生[19]。CRC细胞中PPAN 表达上调,上调的PPAN 可通过促进核糖体的生物发生,抑制CRC细胞的凋亡[20]。

1.1.4 RPF1通过调节核糖体大亚基发生调控CRC的发生发展 RPF1(BXDC5)参与核糖体66srRNP构成,是核糖体生物发生的必须因子[21]。RPF1同样含有标志性的σ70功能结构,与特定rRNA结构特异性结合发挥功能。RPF1 是Ras 超家族成员Ran 的下游信号,可通过Kap120 等多条跨Ras 相关核蛋白通路转运到核仁中,参与核糖体的生物发生,参与Ras相关CRC的发生、发展[22]。

1.2 BRIX 蛋白质超家族通过调节核糖体小亚基发生调控CRC的发生发展IMP4(BXDC4)是U3snoRNP 的组成之一,参与核糖体的生物发生[23]。在真核细胞中,组成核糖体小亚基的18sRNA 在核糖体生物发生的早期与组成大亚基的5.8srRNA 以及28srRNA,共同被RNA PolⅠ作为47s pre-rRNA 翻译。然后在90s 核糖体颗粒阶段分离,转运到胞质中修饰成熟并参与小亚基组装。早期研究[24]认为,U3snoRNP 是18srRNA 从90s 核糖体颗粒中分离的必须因子。LEE 等[23-24]进一步研究发现,BIRX 结构域蛋白IMP4 与Us4 样因子IMP3,和Mpp10 特异性结合,U3 snoRNA 通过与90s 核糖体颗粒中rRNA 的特定位置形成杂合双链,切割rRNA 前体的A0、A1和A2位点使18srRNA 分离。而U3 snoRNA 与rRNA的结合,必须有IMP3-IMP4-Mpp10 异三聚体的介导,从而解开两者对应位点的螺旋以及维持杂合后的双链的稳定[25]。其中,IMP4 和IMP3 共同参与第二步U3-ETS 双链的杂合,但第三步U3-18s 双链则仅需IMP3 或IMP4 二者之一参与。同时,IMP4 还参与调控U3 从pre-rRNA 上的解离过程,使18sRNA 可以继续结合辅助因子加工成熟[26]。

肺癌组织中IMP4 参与肿瘤相关的核糖体发生[27]。因此,BRIX 结构域蛋白家族IMP4 可能通参与核糖体生物发生,参与CRC的发生和发展。

2 BRIX 蛋白质超家族通过调节核糖体生物发生合作因子途径、5sRNP-MDM2-p53 途径、Wnt/βcatenin途径等调控CRC的发生发展

Rrs1 是RPF2 在核糖体发生中的合作因子,也是一个肿瘤相关因子[12]。在CRC 组织中Rrs1 表达明显增加,而抑制Rrs1 的表达可以使低分化结直肠癌细胞RKO 和人结直肠腺癌细胞HCT-116 的细胞周期停滞,细胞凋亡比例升高[28]。因而RPF2 很可能通过与Rrs1 的相互作用,参与到CRC 的发生和发展。

EBP2 是BRIX1 在核糖体生物发生中发挥功能的必须因子。但EBP2 可通过多条路径,参与肿瘤发生。Cyclin E/CDK2 是是调节细胞周期的重要通路,在肿瘤组织中高度表达,与CRC 等肿瘤的发生密切相关。而EBP2 可以直接与Cyclin E-CDK2 作用,参与CRC 的发生和发展[29]。EBP2 可以直接与MYC产生正反馈—EBP2帮助MYC在核仁重新定位并抑制MYC 降解,而MYC 可进一步促进EBP2 的合成[30]。因此,EBP2 可以与原癌基因MYC 作用,影响细胞增殖。泛素连接酶系统(UBPs)是有丝分裂的重要组成部分,其中的泛素连接酶FBW7(F-box and WD repeat domain-containing 7)是EBP2 的另一个重要靶点。WELCKER 等[31]研究结果发现,EBP2可以通过调节泛素连接酶FBW7 在核仁中的定位,调节泛素耦联酶2C(E2 ubiquitin-conjugating enzyme UbcH10,UBE2C)的活性。UBE2C是UBPs的重要组成部分,参与调控染色体分裂,同时也是一个原癌基因因子,参与CRC 的发生和晚期转移中发挥重要的作 用[32]。因 此,Fbw7-UBE2C 是BRIX1-EBP2 参与CRC 的一个重要途径。此外,Fbw7 可能与XBP1 存在负反馈,Fbw7的重新定位会影响XBP1的发生[33]。

最新研究[34]发现,XBP1 可通过某种途径抑制CRC 细胞的增殖,并抑制其表达肠上皮干标记物。XBP1 与抑癌因子CHOP(C-EBPζ)密切相关,参与肿瘤相关的内质网应激,影响线粒体凋亡途径、死亡受体途径等多条细胞凋亡途径[35]。EBP2 还可以与人类核仁蛋白(NCL)HNRPU_HUMAN 直接作用,来影响细胞RNA 翻译[36]。BRIX1-EBP2 可以通过细胞周期依赖蛋白、原癌基因、抑癌因子以及核仁蛋白多种途径,参与CRC的发生和发展。

CRC肿瘤组织中NPM存在异常表达[37]。PPAN-NPM 可通过抑制人体细胞中核仁应激P53 途径诱导细胞凋亡,同时还可通过定位于线粒体抑制BAX 诱导的半胱天冬酶(caspase)依赖途径抑制CRC细胞凋亡[38]。

5sRNP 是核糖体大亚基的组成之一,通过RPF2与核糖体大亚基前体结合并成熟。RPF2 的敲除并会让游离5sRNP 在细胞中积累[11],而游离5sRNP 可以通过5sRNP-MDM2-p53途径诱导细胞的凋亡[7,10]。因此结合5sRNP 减少5sRNP 游离,从而抑制游离5sRNP导致的CRC细胞凋亡。

RPL5 的失活是目前肿瘤细胞中最常见的核糖体蛋白缺陷之一。RPL5是一种抑癌因子,可通过影响包括TP53、c-MYC 在内的多种抑癌和促癌通路,在CRC 等多种肿瘤细胞中发挥抑癌作用[39]。有报道[40]指出,RPF2可以与RPL5结合并发挥一定功能。

研究[41]发现,PPAN 可能与CRC 相关通路Wnt/β-catenin 存在反馈信号通路,PPAN 可作为Wnt/β-catenin 的下游因子参与信号传导,同时PPAN 的缺失也可激活Wnt/β-catenin 通路,抑制肿瘤细胞的凋亡。PPAN 还可与G 蛋白耦联受体P2Y11 相互作用,形成PPAN-P2Y11 复合体,与EIF3G 共同作用,参与嗜睡症的发生发展[42]。而EIF3G是一个与CRC高度相关的因子,EIF3G 在CRC Ⅳ期组织中呈高表达,促进CRC细胞的增殖和迁移。

综上所述,BRIX 蛋白质超家族可通过参与核糖体大、小亚基的发生,参与CRC 的发生发展。BRIX蛋白质超家族还可通过核糖体生物发生合作因子途径、MDM2-p53-5sRNP 途径、Wnt/β-catenin信号通路等核糖体外途径,参与CRC的发生发展。

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