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长寿花叶片愈伤组织诱导及组培技术体系的建立

2022-06-23刘金霞杨鑫宇宋丹张红艳闫芬芬

塔里木大学学报 2022年2期
关键词:丛生高浓度培养基

刘金霞,杨鑫宇,宋丹,张红艳,闫芬芬*

(1塔里木大学园艺与林学学院/南疆特色果树高效优质栽培与深加工技术国家地方联合工程实验室,新疆,阿拉尔 843300)

(2昆玉市大漠田园农业发展有限公司,新疆,昆玉 848116)

长寿花(Kalanchoe blossfeldiana)是景天科伽蓝菜属多年生肉质草本花卉,原产马达加斯加岛[1]。其植株矮小,株型紧凑,叶片翠绿、花朵密集、花色丰富,花期从12月开至次年5月,是市场畅销的盆栽观赏花卉[1]。长寿花不仅耐旱性强,养护管理容易,而且应用广泛,装饰效果好,特别适用于微型盆栽及花坛布置等室内外栽培,是新疆乃至西北地区花卉市场的主角,具有良好的市场前景[2]。长寿花传统的繁殖方法有扦插繁殖和播种繁殖,但这些方法繁殖率低,受环境影响大,且容易导致病毒的积累、使品种退化,进而影响长寿花的产量和品质,严重制约种苗的商品化生产[3-4]。采用组织培养的方法不仅可以提高长寿花的繁殖系数,实现规模化生产,而且也可以实现脱毒处理,目前该方法已成为现代化种苗繁育的主要方式[5]。苏惠等[6]利用长寿花的叶柄、茎段和茎尖进行组织培养,并获得相应的培养配方。孙新政等[7]通过对白色长寿花茎段外植体进行了初代诱导、增殖、生根及移栽的研究发现,茎段培养可以作为离体繁殖长寿花的重要途径。高建莉等[8]研究证明以长寿花叶片作为外植体诱导愈伤组织,其诱导时间比用叶柄和茎段短7 d。孙利娜[9]研究得出长寿花嫩叶片的最佳分化培养基为MS+6-BA 3.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L,可缩短组培时间。本研究以红色和黄色的重瓣长寿花成熟叶片为外植体,通过离体叶片诱导愈伤途径研究成熟叶片的灭菌处理、叶片愈伤组织、不定芽及不定根的诱导技术。通过离体组织培养的方法繁殖高质量长寿花,提高长寿花繁殖系数,以期建立重瓣长寿花组培技术体系,为西北地区长寿花组培苗工厂化生产提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 试验材料

试验材料来自塔里木大学园艺实验站盆栽长寿花成熟叶片,红色品种为‘阿朱诺’,黄色品种为‘日出’。

1.2 试验方法

1.2.1 外植体灭菌处理

取健壮、成熟的红色和黄色重瓣长寿花叶片,流水冲洗数次,脱脂棉反复擦拭除尘后,在超净工作台内将叶片剪成1.0 cm2正方形小块进行灭菌处理。先用75%乙醇溶液消毒30 s,再加入1%次氯酸钠溶液灭菌处理[10],其中红色重瓣长寿花叶片分别设置3个灭菌时间处理:6 min、8 min、10 min;黄色重瓣长寿花叶片分别设置3个消毒时间处理:5 min、7 min、9 min。最后无菌水冲洗3次,将灭菌后的叶片切成约1 cm×1 cm的小块接种于MS培养基上,每瓶放置5小块,每个处理接种10瓶,重复50次。7 d后调查污染率、褐化率及叶片诱导状态[11]。

1.2.2 愈伤组织的诱导

将灭菌后1 cm2的成熟叶片接种在不同激素配比的诱导愈伤组织培养基中(表1),每瓶放置5块,每个处理水平接种6瓶,重复30次。25 d后观测并记录愈伤组织生长及增殖的情况。

表1 叶片愈伤组织诱导的激素配比处理 mg/L

1.2.3 不定芽的诱导

将培养28~35 d后生长状况良好的黄绿色愈伤组织切成小块,接种到不同激素配比诱导丛生芽的培养基上(表2),每瓶放置3小块,每个处理水平接种5瓶,重复15次。接种35 d后进行芽增殖系数统计。

表2 不定芽诱导的激素配比处理 mg/L

1.2.4 不定根的诱导

待不定芽生长至2~3 cm时,将健壮的单株芽苗切下转接至不同生根诱导培养基中(表3),每瓶放置3株,每个处理接种5瓶,重复15次,培养室中正常培养。25 d后调查并记录根的生长状况。

表3 不定根诱导的激素配比处理 mg/L

1.3 数据处理

采用WPS Office软件对试验数据进行分析。

2 结果与分析

2.1 不同灭菌时间对长寿花叶片灭菌效果的影响

由表4可知,红色重瓣长寿花成熟叶片在1%的次氯酸钠溶液消毒处理时间为10 min时,叶片诱导成功率最高,为64.0%,污染率最低,为26.0%,主要为细菌污染。黄色重瓣长寿花叶片在次氯酸钠灭菌处理9 min时,叶片诱导成活率最高,为60.0%,污染率最低,为28.0%,均为细菌污染。两个花色成熟叶片在1%的次氯酸钠溶液灭菌处理6~7 min时污染率达52%,灭菌时间为5 min时污染率极高,为82.0%。另外,随着灭菌时间增加,叶片褐化程度明显,由于叶片切割材料过小,伤口周围褐化程度较高。因此认为,长寿花成熟叶片最佳的灭菌方式为75%酒精消毒30 s,再用1%的次氯酸钠溶液消毒9~10 min,无菌水冲洗3次为宜。

表4 不同灭菌时间对长寿花叶片灭菌效果及外植体成活率的影响

2.2 不同激素配比对长寿花叶片愈伤组织诱导的影响

由表5可知,不同激素浓度配比对长寿花外植体愈伤组织诱导的能力不同。激素配比为MS+6-BA1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L时对红色和黄色的重瓣长寿花叶片愈伤组织的诱导效果最佳,红色重瓣长寿花叶片诱导率达到80.0%,叶片形成的愈伤组织状态为向上卷曲膨大、嫩绿色、细密、瘤状的突起,诱导分化明显。黄色重瓣长寿花叶片诱导率为86.7%,在此培养基下,叶片形成的愈伤组织为嫩绿色、细密、有瘤状伤口,诱导分化明显。另外,高浓度的6-BA要比低浓度的诱导效果好,6-BA浓度相同时,高浓度的NAA更利于愈伤组织的形成和分化。

表5 不同激素配比对长寿花外植体愈伤组织诱导的影响

2.3 不同激素配比对愈伤组织诱导不定芽的影响

2.3.1 不同激素配比对长寿花叶片愈伤组织诱导不定芽的影响

由表6可知,不同激素浓度配比对长寿花丛生芽诱导的能力不同,其中MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L为最佳激素配比。在此激素诱导下,长寿花愈伤组织诱导丛生芽的效果最好,其中红色长寿花的增殖系数为2.93,黄色长寿花的增殖系数为2.87,且诱导出的丛生芽多、芽体肥大、长势旺盛,培养后期芽体不会变黄。6-BA浓度相同时,IBA浓度越高,诱导增殖系数越小;IBA浓度相同时,6-BA浓度越高,诱导增殖系数越大,因此认为高浓度的6-BA和低浓度的IBA对丛生芽诱导的效果更好。但是不同浓度的NAA对丛生芽诱导效果的影响不大。两种花色重瓣长寿花在相同激素浓度配比下诱导效果差异不明显,可见不同花色外植体对丛生芽诱导的差异不明显。

表6 不同激素配比对长寿花愈伤组织诱导不定芽的影响

2.3.2 不同诱导时间对丛生芽诱导的影响

在最佳激素配比条件下,诱导时间不同。丛生芽诱导效果不同(图1)。在诱导时间为0~30 d时,A2、A3、A4对丛生芽诱导率均呈上升趋势,但诱导效果存在差异。相同时间下,A2诱导率最高,A3次之,A4最低,因此培养时间小于30 d时,三种激素配比对丛生芽诱导能力为A2>A3>A4。诱导时间为30~60 d时,A2丛生芽诱导率呈下降趋势,芽体逐渐由嫩绿色变为黄绿色,个别出现畸形,在培养60 d时大多数已变为淡黄色或者白色。而A4丛生芽诱导率仍呈上升趋势,叶片愈伤组织诱导出的丛生芽颜色一直为绿色的球茎,因此当培养时间大于40 d时,三种激素配比对丛生芽诱导的能力为A4>A3>A2。

图1 不同诱导时间对丛生芽影响变化曲线

2.4 不同激素配比对长寿花不定根诱导的影响

由表7可知,不同激素浓度配比对长寿花不定根的诱导率不同。当1/2MS培养基中加入0.3 mg/L的IBA时,长寿花不定根诱导的效果最佳,其中红色重瓣长寿花的诱导率达到80.0%,黄色重瓣长寿花的诱导率达到73.3%。此培养基下诱导出的生根苗粗壮、长势状态好,根长为2~3 cm。NAA浓度相同时,IBA浓度越高,诱导率越高,因此高浓度的IBA有利于根的形成与分化。

表7 不同激素配比对长寿花不定根的诱导

2.5 长寿花叶片不同诱导时期发育动态变化

叶片培养7~14 d后,红花叶片切口处形成白色或淡黄色愈伤组织(图2A),21 d后由淡黄色转变为黄绿色,部分叶片边缘为红色(图2B)。7~14 d黄花叶片切口处形成白色愈伤组织(图2C),21 d后由白色转变为黄绿色,部分为黄白色(图2D)。将已经初步诱导35 d的愈伤组织进行不定芽的诱导分化,接种诱导7 d后,愈伤组织增殖加快并明显由淡黄色转变为黄绿色,部分出现芽点(图2E),14 d后愈伤组织转变为绿色,芽点陆续分化为绿色小芽(图2F),35 d后形成丛生芽(图2G)。待不定芽生长至2~3 cm时,将健壮的单株芽苗切下转接至生根培养基中,14 d后形成不定根(图2H),25 d后生长为健壮的无性苗(图2I)。

图2 长寿花叶片不同诱导时期发育动态变化

3 讨论

我国是盆栽花卉生产和消费大国,但是多数中高档花卉种苗从国外进口,其中长寿花多从丹麦引进[12],我国自主育种技术和工厂化育苗体系亟待提高。通过叶片诱导愈伤组织的形成,可实现快速建立组培无性快繁技术体系,提高植物的繁殖系数[13]。在本研究过程中发现,不同花色组织培养快繁技术差异不大,且叶片切割成较小的材料,伤口周围褐化程度较高。通过叶片诱导的愈伤组织为叶片原生质体培养、原生质体融合、遗传转化创造了良好的受体材料,为生物工程技术奠定了理论基础[14]。

植物激素种类和配比对愈伤组织的诱导、不定芽的分化以及不定根的诱导起十分重要的作用。马群等[15]研究发现2,4-D的浓度对诱导芽数的影响较大,当浓度为1.0 mg/L时,诱导的丛生芽芽数多、无失绿现象,而当浓度为1.5 mg/L时,芽数少、有部分失绿现象。本研究发现,高浓度的6-BA和高浓度的NAA更有利于长寿花愈伤组织的形成,6-BA较高时,诱导芽数较高。高浓度的6-BA和低浓度的IBA更有利于丛生芽的诱导,在6-BA 1.0 mg/L和IBA 0.1 mg/L激素配比下,长寿花丛生芽的增殖系数可达2.9,且丛生芽多,芽体肥大,长势旺盛。激素配比为1/2MS+0.3 mg/L时对丛生芽形成不定根的诱导能力最佳,高浓度的IBA有利于不定根的形成与分化。

不同的培养时间对激素的诱导能力存在影响,诱导时间为0~30 d时,高浓度的6-BA和低浓度的IBA更有利于丛生芽的诱导。诱导时间为30~60 d时,在MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L培养基条件下丛生芽诱导率呈下降趋势,芽体逐渐由嫩绿色变为黄绿色,个别出现畸形,在培养60 d时大多数芽体已变为淡黄色或者白色。而在MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 1.0 mg/L培养下丛生芽诱导率呈上升趋势,叶片愈伤组织诱导出的丛生芽颜色一直为绿色的球茎,茎段愈伤组织诱导出的丛生芽为黄绿色且后期叶片不发黄,因此培养时间为40~60 d时,高浓度的6-BA和高浓度的IBA更有利于长寿花不定芽的诱导。

4 结论

本研究以成熟叶片为外植体,筛选出用1%的次氯酸钠溶液消毒9~10 min灭菌处理最佳。最佳叶片诱导愈伤组织培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,最佳不定芽诱导培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L。最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.3 mg/L。初步通过叶片诱导愈伤组织途径建立长寿花组培快繁技术体系,为后续优良品种快繁和工厂化育苗奠定基础。

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