鳖甲煎丸含药血清对肝癌干细胞的抑制作用及潜在调控机制研究
2022-05-30谢杨益林洪升孔茵芝潘爱萍李明芬
谢杨益,林洪升,孔茵芝,潘爱萍,李明芬*
(1.广西中医药大学,南宁 530200;2.广西中医药大学第一临床医学院,南宁 530021;3.广西中医药大学第一附属医院,南宁 530021)
肝癌是全球第四大癌症相关死亡原因,发病率呈不断上升趋势[1-2]。到2025 年,每年将有超过100 万人受到肝癌的影响[3]。目前,手术切除和肝移植是治疗早期肿瘤最有效的方法。肝癌起病隐匿,肿瘤进展迅速,大多数肝癌患者在确诊时为中晚期,失去手术根治性治疗的机会。肝癌的五年总生存率仅为30%~40%[4]。肿瘤干细胞具有自我更新、分化和产生新肿瘤的能力[5]。肝癌干细胞的存在与肝癌的发生、进展、复发和耐药密切相关[6]。中药能通过多机制和多层面抑制肝癌的发展。研究[7]发现,肝癌干细胞是中医药治疗肝癌的重要靶点。鳖甲煎丸出自汉代名医张仲景的《金匮要略》,现多应用于肝纤维化、肝硬化、肝炎、肝癌等肝病治疗中,疗效显著[8]。本课题组的前期实验也发现,鳖甲煎丸可抑制肝癌细胞增殖[9],但对于肝癌干细胞的研究尚未见报道。本研究通过免疫磁珠分选肝癌干细胞,制备鳖甲煎丸含药血清干预肝癌干细胞,分析信使RNA(messenger RNA,mRNA)表达谱变化,进一步探讨鳖甲煎丸治疗肝癌的作用机制,以期为针对肝癌干细胞的靶向治疗提供新思路。
1 实验材料
1.1 实验细胞 人肝癌细胞株SMMC-7721,受赠于广西中医药大学生化教研室。
1.2 实验动物 SPF 级SD 雄性大鼠,购于广西医科大学动物实验中心,体质量(201.38±17.57)g,生产许可证号:SYXK(桂)2013-0005。所有操作都在国家实验动物使用标准和伦理要求下进行。
1.3 实验药品 鳖甲煎丸,购于武汉中联药业集团股份有限公司,国药准字Z42020772。
1.4 实验试剂 胎牛血清,美国Gbico 公司;DMEM细胞培养基,美国Gbico公司;CCK-8试剂盒,日本同仁公司;免疫磁珠分选系统,德国Miltenyi公司;人CD133-PE 流式抗体,德国Miltenyi 公司;细胞总RNA 提取试剂盒RNeasy Mini Kit,德国Qiagen 公司。
2 方法
2.1 细胞培养 采用含10%胎牛血清的DMEM 培养基,将细胞置于37 ℃、5% CO2条件下静置培养。
2.2 鳖甲煎丸含药血清及空白对照血清制备 用生理盐水将鳖甲煎丸溶解配制成混悬液,鳖甲煎丸成人临床剂量为3 g/60 kg,大鼠给药剂量按成人剂量20 倍配制为1 g/kg。大鼠适应性饲养7 d 后,按10 mL/kg灌胃给药,分别予等量鳖甲煎丸混悬液和生理盐水灌胃,每天2 次,连续3 d。第4 天给药2 h 后,大鼠腹腔注射戊巴比妥钠麻醉,腹主动脉取血,静置2 h 以上,4 ℃条件下3 000 r/min 离心15 min,分离并混合同组血清。将血清置于56 ℃水浴箱中灭活30 min 后,再使用0.45 μm 和0.22 μm 微孔滤膜过滤除菌,获得鳖甲煎丸含药血清及空白对照血清,置于-20 ℃冻存[10]。
2.3 免疫磁珠分选CD133+细胞群 收集1×107个细胞,重悬于100 μL 缓冲液中。向细胞悬液中加入20 μL CD133 抗体和10 μL 免疫磁珠,轻轻混匀后,4 ℃避光孵育15 min。离心洗涤细胞后用500 μL 缓冲液重悬,加到分选柱上,滤过细胞悬液,再加入500 μL 缓冲液将分选柱洗2 遍。从磁场中取出分选柱,加入1 mL缓冲液,收集此次细胞悬液,即为CD133+细胞。
2.4 流式细胞术检测细胞CD133 表达 收集细胞,用磷酸缓冲盐溶液(PBS)洗涤后重悬,调整细胞密度为每毫升1×106个。每管加入100 μL 细胞悬液,再向管中加入5 μL 人CD133-PE 流式抗体,混匀,室温避光孵育10 min。加入PBS 至500 μL,轻轻混匀,用流式细胞仪检测。
2.5 CCK-8 法检测细胞增殖能力 在96 孔板中每孔加入100 μL 浓度为每毫升2×104个的细胞悬液,每组设3个复孔,在培养箱中预培养24 h。给培养板换液(含10%胎牛血清或鳖甲煎丸含药血清或空白对照血清的DMEM 培养基),在培养箱中培养24、48、72、96 h。向每孔加入10 μL CCK-8 溶液,在培养箱中培养2 h,用酶标仪测定在450 nm 处的吸光度(OD)。
2.6 Transwell 侵袭实验检测细胞侵袭能力 取对数生长期的细胞,PBS 洗涤,调整细胞密度为每毫升1×106个用无血清培养基重悬。取600 μL 含10%胎牛血清的DMEM 培养基加入24 孔板下室,将Transwell小室置于24 孔板内,分别在上室中加入100 μL 细胞悬液,放入培养箱中培养24 h。取出小室,弃去培养基,将小室用PBS 洗2 遍后,4%多聚甲醛固定30 min,然后用0.1%结晶紫染色10 min,PBS 洗2 遍后风干,在高倍显微镜下选取5 个视野观察细胞并计数。
2.7 总RNA 收集 将细胞用含10%鳖甲煎丸含药血清或空白对照血清的DMEM 培养基培养24 h,按照试剂盒说明书提取细胞总RNA,检测RNA 样品的浓度和纯度。
2.8 差异表达mRNA 分析 全细胞转录组分析由深圳海一时代基因有限公司完成,测序平台为Hiseq 2500 SE 50。通过DEGseq 差异分析软件,以差异倍数≥2和P-value≤0.05 的条件筛选差异表达的mRNA。
2.9 生存分析 Kaplan-Meier Plotter 数据库将GEO、EGA 和TCGA 数据库中患者的基因表达数据和生存信息进行整合,评估常见肿瘤患者中各种基因表达水平与临床结果的相关性[11]。使用 Kaplan-Meier Plotter 数据库评估Wnt 信号通路相关差异mRNA 在肝癌中的预后价值。
2.10 统计学方法 实验数据应用SPSS 20.0 软件,采用独立样本t检验进行统计学处理,以均数±标准差()表示。所有实验重复3 次。
3 结果
3.1 肝癌干细胞的分离与鉴定 通过免疫磁珠法分选出CD133+肝癌干细胞进行培养,采用流式细胞术检测CD133 表达。与肝癌细胞比较,肝癌干细胞中CD133+细胞所占比例明显增高,达到86.6%,见图1。采用CCK-8 法检测肝癌干细胞的增殖能力,Transwell 侵袭实验检测肝癌干细胞的侵袭能力,结果显示肝癌干细胞的增殖和侵袭能力均明显提高,见图2,图3。
图1 肝癌细胞与肝癌干细胞的CD133 表达比较
图2 肝癌细胞与肝癌干细胞的增殖能力比较
图3 肝癌细胞与肝癌干细胞的侵袭能力比较
3.2 鳖甲煎丸含药血清对肝癌干细胞增殖能力的影响 肝癌干细胞经鳖甲煎丸含药血清干预后进行CCK-8 实验,发现细胞增殖能力明显受抑制,与空白对照血清组比较差异有统计学意义,见图4。
图4 鳖甲煎丸含药血清对肝癌干细胞增殖能力的影响比较
3.3 差异表达mRNA 分析 对鳖甲煎丸含药血清和空白对照血清2 组样品进行mRNA 差异分析,发现部分差异mRNA 属于Wnt 信号通路,包括Wnt 家庭成员1(WNT1)、鸟苷酸结合蛋白1(GBP1)、连环蛋白β1(CTNNB1)、VANGL 平面细胞极性蛋白2(VANGL2)、刺细胞平面细胞极性蛋白1(PRICKLE1)和丝裂原活化蛋白激酶8(MAPK8)。与空白对照血清组相比,这些基因在鳖甲煎丸含药血清组中均表达下调。
3.4 Wnt 信号通路相关差异mRNA 生存分析 通过Kaplan-Meier Plotter 数据库评估Wnt 信号通路相关差异mRNA 表达与肝癌患者预后的相关性,结果显示,WNT1、GBP1、PRICKLE1 高表达组的总生存期明显短于低表达组(P<0.05),CTNNB1、VANGL2、MAPK8 表达与肝癌患者预后的相关性无统计学意义(P>0.05),见图5。
图5 Wnt 信号通路相关差异mRNA 表达和肝癌患者总生存期的关系
4 讨论
肿瘤干细胞能够使肿瘤细胞自我更新,维持细胞增殖[12-14]。研究[15-17]表明,肿瘤干细胞是肿瘤复发、转移和耐药的关键因素之一。许多细胞表面蛋白,如CD133、CD44、上皮细胞黏附分子与CD90,已被确定为肝癌干细胞可靠的生物标志物[18-20]。CD133 在维持肝癌干性中起着关键作用。研究[21]表明,从Huh7细胞株中分离的CD133+细胞显示出更高的增殖和致瘤能力。CD133+细胞群有助于肝癌的化学抗性和放射抗性[22]。本课题组通过免疫磁珠法分选出CD133+肝癌干细胞进行培养,并采用流式细胞术检测细胞CD133 表达,采用CCK-8 法和Transwell 侵袭实验检测肝癌干细胞的增殖和侵袭能力。结果显示,分选出的肝癌干细胞中CD133+细胞所占比例达到86.6%,且肝癌干细胞的增殖和侵袭能力较肝癌细胞均明显提高,可用于后续实验。
为了检测鳖甲煎丸对肝癌干细胞生长的抑制作用,本研究采用CCK-8 法检测用含10%鳖甲煎丸含药血清的DMEM 培养基培养,对肝癌干细胞增殖的影响。结果发现,细胞增殖能力明显受抑制,与空白对照血清组对比,差异有统计学意义,验证了鳖甲煎丸对肝癌的有效治疗作用。为了进一步明确其作用具体机制,本研究进行转录组学分析,发现鳖甲煎丸含药血清干预肝癌干细胞后,部分差异表达mRNA 属于Wnt信号通路,包括WNT1、GBP1、CTNNB1、STBM、PRICKLE1 和JNK,提示Wnt 信号通路可能参与鳖甲煎丸对肝癌干细胞的抑制作用。
突变诱导的Wnt/β-catenin 信号激活是人类肿瘤中常见的驱动事件,持续的Wnt/β-catenin 途径激活赋予肿瘤细胞自我更新生长特性,并与治疗耐药性相关[23]。多项研究表明,Wnt 通路在肝癌进展中扮演重要角色,Wnt/β-catenin 信号通路的关键信号分子异常激活,可促进肝细胞的恶性转化、肝癌转移与耐药以及肝癌干细胞的自我更新[24]。研究[25]发现,蛋白酪氨酸激酶2 通过激活Wnt 信号增强肝癌干细胞性状,导致肿瘤复发和索拉非尼耐药。ATP-柠檬酸裂解酶通过影响β-catenin 的稳定性调节Wnt 信号通路,促进肝癌细胞的干性特征、迁移和侵袭能力[26]。鳖甲煎丸抑制肝癌干细胞增殖的药理作用,可能与其下调Wnt信号通路分子的表达水平有关。对Wnt 信号通路相关差异mRNA 进行生存分析发现,WNT1、GBP1、PRICKLE1 高表达组的肝癌患者总生存期明显短于低表达组,提示这3 个基因可能在肝癌发生发展中发挥了重要的作用,是潜在的肝癌预后生物标志物和治疗靶标。
综上所述,本研究证实,鳖甲煎丸能够抑制肝癌干细胞增殖,其抑制作用可能与下调Wnt 信号通路分子的表达水平有关。今后将结合体内实验进一步验证,为阐明鳖甲煎丸的抗肝癌效应及其药理作用提供实验依据。