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羧甲司坦L-精氨酸盐的合成及其对支气管上皮细胞的保护作用

2022-05-09吴建兵张奕华黄张建

中国药科大学学报 2022年2期
关键词:精氨酸探针浓度

贾 健,吴建兵,张奕华,黄张建

(中国药科大学新药研究中心,南京 210009)

慢性阻塞性肺疾病(chronic obstructive pulmo‑nary diseases,COPD)是一种常见的慢性气道疾病,具有高发病率、致残率和致死率的特点[1-4]。据报道我国20 岁及以上成人COPD 患病率为8.6%,40 岁以上人群患病率高达13.7%,提示我国COPD发病率呈现高态势[5-7]。吸烟是造成COPD 最主要的原因,80% ~ 90%的COPD 患者都与吸烟密切相关[8-10]。

羧甲司坦(carboxymethylcysteine,CMC)是临床常用的黏痰溶解药。临床研究发现,应用CMC可明显减少COPD 患者病情急性加重并延长发作间歇[11-12]。CMC 治疗COPD 的疗效不仅与其黏液溶解性有关,更多地与其抗氧化、抗炎作用相关[13]。CMC 还可通过抑制促炎因子白细胞介素1β、白细胞介素6 及肿瘤坏死因子α 等的生成,减少炎性介质的释放,减轻体内的炎性反应[14-16]。遗憾的是,CMC 化学结构中的两个羧酸基导致该药物对消化道有刺激作用,可引起胃部不适、恶心、呕吐、肠胃道出血等不良反应。

L-精氨酸(L-arginine,L-Arg)是一种半必需氨基酸,可被内源性NOS 代谢为NO 和瓜氨酸,在维持气道张力和功能方面起着重要作用。值得一提的是,只有L-精氨酸才能作为NOS 的底物释放NO,而D-精氨酸不具有产生NO 的能力[17-18]。NO缺乏也被证明是COPD、哮喘和囊性肺纤维化患者肺功能恶化的原因之一[19-21]。在胃肠道系统中,NO 可通过抑制胃酸分泌、促进胃黏液分泌、调节黏膜血流量等发挥胃肠道保护作用[22-27]。传统非甾体抗炎药(NSAIDs)具有严重胃肠道不良反应,而NO 供体型NSAIDs(NO-NSAIDs)如阿司匹林L-精氨酸盐、NO-阿司匹林、NO-布洛芬等不仅具有强效的抗炎、镇痛作用而且具有NO 介导的胃肠道和心血管保护作用[28-33]。

基于上述背景,本研究设计、合成了一种CMC的L-精氨酸盐化合物(CMCA),并测试了CMCA 的理化性质及其在人支气管上皮细胞(16-HBE)中抗氧化、抗凋亡和NO释放的作用。

1 实验部分

1.1 试剂与仪器

羧甲司坦(成都西亚化工股份有限公司,Lot:20200710);L-精氨酸[梯希爱(上海)化成工业发展有限公司,Lot:22RPO];商用卷烟(万宝路红标);16-HBE 细胞系、DCFH-DA 活性氧检测试剂盒、Annexin V-APC/7-AAD 细胞凋亡检测试剂盒、DAF-FM DA 一氧化氮检测试剂盒(江苏凯基生物技术股份有限公司);6 孔培养板(美国Corning Costar 公司);AV-500 核磁共振仪(德国Bruker 公司);MAT95XP 型高分辨质谱仪[赛默飞世尔科技(中国)有限公司];X-4 精密显微熔点测定仪(北京福凯仪器有限公司);pH 计[梅特勒-托利多(中国)有限公司];FACS Calibur流式细胞仪(美国Becton-Dickinson公司)。

1.2 CMCA的制备与表征

CMCA 的合成途径如路线1 所示,将L-精氨酸(1.74 g,10 mmol)溶于蒸馏水5 mL 中,逐量加入CMC(1.79 g,10 mmol)始终保持反应液为澄清状,于室温25 ℃下搅拌2 h,向反应液中滴加无水乙醇50 mL,开始时滴速稍快,至有白色晶体析出时减慢滴速,滴毕,搅拌0.5 h,抽滤,用少量乙醇洗涤滤饼,40 ℃真空干燥,得白色CMCA结晶3.20 g,收率约90.7%。mp 203.8 ~ 205.2 ℃;UV(H2O)λmax211.5(lg ε 3.717)nm;IR(KBr,ν):918.6,1 223.9,1 380.0,1 690.7,3 336.9,3 438.0 cm-1;MS(m/z):175[M2+H]+,178[M1-H]-;1H NMR(500 MHz,D2O):δ1.86 ~1.66(2H,m),2.04 ~1.91(2H,m),3.11(1H,dd,J1= 14.6,J2= 8.5 Hz),3.23(1H,d,J=14.8 Hz),3.31(2H,t,J= 6.6 Hz),3.39(2H,s),3.84(1H,t,J=5.7 Hz),3.98(1H,d,J=6.6 Hz);13C NMR(125 MHz,D2O):δ175.38,172.13,170.66,52.20,51.61,38.37,34.83,31.33,25.39,21.75。

Scheme 1 Synthetic route of carboxymethylcysteine L-arginate(CMCA)

1.3 香烟烟雾提取物(cigarette smoke extract,CSE)的制备及模型的建立

香烟烟雾溶液的制备方法如文献所述[34]。在真空烧瓶中每25 mL PBS 使用一支香烟燃烧5 min以生成CSE-PBS 溶液。再使用0.22 μm 孔径的过滤器过滤CSE 溶液,以去除细菌和大颗粒。然后将烟雾溶液的pH 调节至7.4,其溶液设为100%CSE,并在每次实验中稀释至所需浓度。

本研究采用16-HBE 细胞系建立CSE 模型,参照文献方法[35]所述,将受试药物与16-HBE 细胞预孵育1 h 后,加入10%CSE 继续孵育18 h。每组实验重复进行3次。

1.4 DCFH-DA荧光探针检测细胞内活性氧含量

DCFH-DA 是一种被广泛用于检测ROS 的荧光探针。用PBS 洗涤细胞1 次(离心200 r/min,5 min)收集并调整细胞浓度为每毫升1× 106个细胞,按照1∶1 000 用无血清培养液稀释DCFH-DA,使终浓度为10 μmol/L。细胞收集后悬浮于稀释好的DCFH-DA 中,37 ℃细胞培养箱内孵育20 min。每3~5 分钟颠倒混匀一下,使探针和细胞充分接触,用无血清细胞培养液洗涤细胞3 次,以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。用流式细胞仪检测(λEx=488 nm;λEm=530 nm)细胞内的活性氧。

1.5 Annexin-V APC/7-AAD双染法检测细胞凋亡

将对数生长期的16-HBE 细胞接种到6 孔板中,次日,待细胞贴壁后,根据组别设置相应的含药培养基,同时设立阴性对照组。药物作用18 h后,用0.25%胰酶(不含EDTA)消化收集细胞,用PBS 洗涤细胞两次(离心200 r/min,5 min)调整细胞浓度为每毫升5×105个,加入结合缓冲液500 μL悬浮细胞,加入Annexin V-APC 5 μL 混匀后,再加入7-AAD 5 μL 混匀,室温、避光、反应5 ~ 15 min。使用流式细胞仪检测细胞凋亡情况。

1.6 DAF-FM DA荧光探针检测细胞内NO含量

DAF-FM DA 是一种可用于检测细胞内低浓度NO 的荧光探针。将细胞消化、计数、配制成浓度为每毫升5 × 104个细胞的细胞悬液,接种到六孔板中,次日,待细胞贴壁后,根据组别设置加入相应的含药培养基,同时设立阴性对照组。加药18 h 后,用0.25%胰酶消化收集细胞,用PBS 洗涤细胞1 次(离心200 r/min ,5 min)收集并调整细胞浓度为每毫升1 × 106个。按照1∶1 000 用无血清培养液稀释DAF-FM DA,使终浓度为5 μmol/L,细胞收集后悬浮于稀释好的DAF-FM DA 中,37 ℃细胞培养箱内孵育20 min,每3 ~ 5 分钟颠倒混匀一下,使探针和细胞充分接触。用无血清细胞培养液洗涤细胞3 次,以充分去除未进入细胞内的DAF-FM DA;用流式细胞仪检测(λEx= 495 nm;λEm=515 nm)细胞内NO 的情况。

1.7 统计学处理

计量数据以平均数±标准差(±s)表示,P<0.05 认为有显著性差异。两组间统计学差异采用Tukey's 检验,多组间数据使用单因素方差分析(One-Way ANOVA)分析检验。所有分析和绘图均使用统计软件GraphPad Prism 8。

2 结 果

2.1 CMCA改善CMC的理化性质

将CMC 与CMCA 配制成为1 mg/mL 的水溶液,使用pH 计测试二者pH,结果如表1 所示,CMCA 改善了CMC 自身的强酸性。以脂水分配系数lgP作为评价指标,采用分配系数(正辛醇-水)摇瓶法试验,结果如表1 所示,CMCA 的亲水性较CMC好。

Table 1 pH and lg P of CMC and CMCA(± s,n = 3)

Table 1 pH and lg P of CMC and CMCA(± s,n = 3)

CMC:Carboxymethylcysteine;CMCA:Carboxymethylcysteine L-arginate

Compd.CMC CMCA pH 2.18±0.67 4.22±0.25 RSD 30.47 5.92 lg P-1.47±0.09-2.03±0.31 RSD-6.05-15.05

2.2 CMCA 抑制CSE 引起的16-HBE 细胞内的ROS积聚

首先,本研究测试了CMCA 清除CSE 诱导16-HBE 细胞内ROS 的能力,以证明其抗氧化作用。如图1 所示,10%CSE 刺激18 h 后,16-HBE 细胞内产生大量ROS(P<0.001)。通过给予1×10-4mol/L CMC 或L-精氨酸治疗后,与模型组相比ROS 的生成明显减少。采用不同浓度的CMCA 治疗后ROS的生成也显著降低,并呈现剂量依赖性关系,其中1×10-4mol/L 的CMCA 组ROS 蓄积程度最低,且低于等摩尔浓度的CMC 组(P<0.001),与1 × 10-4mol/L L-精氨酸组相比无显著性差异。

Figure 1 Effect of CMCA on cigarette smoke extract(CSE)-induced reactive oxygen species(ROS)generation in 16-HBE cells(± s,n = 3)

2.3 CMCA抑制CSE引起的16-HBE细胞凋亡

CMCA 抑制CSE 引起的16-HBE 细胞凋亡情况见图2,10%CSE 刺激18 h 后,导致16-HBE 细胞大量凋亡(P<0.001)。通过给予1 × 10-4mol/L CMC或1×10-4mol/L L-精氨酸治疗后,与模型组相比细胞凋亡情况明显好转。采用不同浓度的CMCA 治疗后能剂量依赖性的抑制细胞凋亡,其中1 × 10-4mol/L CMCA 治疗效果最佳,优于1 × 10-4mol/L CMC 组(P<0.001)和1 × 10-4mol/L L-精氨酸组(P<0.001)。

2.4 CMCA促进16-HBE细胞内NO的生成

为了验证NO 在16-HBE 细胞中发挥的作用,进一步研究了16-HBE 细胞内NO 的含量情况(图3),10% CSE 刺激后,16-HBE 细胞内NO 含量明显降低(P<0.001)。通过给予1×10-4mol/L CMC 治疗后,细胞内NO 含量显著性增加(P<0.001)。给予1 × 10-4mol/L CMCA 治疗后,细胞内NO 含量增加,显著多于模型组和1 × 10-4mol/L CMC 组(P<0.001)。

3 结果与讨论

香烟烟雾中含有醛类、尼古丁类、氰化物、氧自由基、焦油等大量有害成分,可直接对气道和肺组织造成损伤,产生并释放TNF-α、IL-8 及IL-6 等炎症介质,促进气道炎症,是导致COPD 最主要的原因。CSE 从香烟烟雾中提取并溶于细胞培养基中,被广泛用于体外研究中[36-38]。支气管上皮细胞在协调COPD 病理进程中起着关键作用,刺激物首先与之接触引起气道和肺部的炎症反应,释放各种炎症介质和细胞因子,进而导致疾病加重和各种相关症状的产生[39]。本研究采用10%CSE 诱导支气管上皮细胞系16-HBE 病变,以模拟体外COPD 损伤。结果表明,模型组ROS 大量积聚,细胞发生明显凋亡,提示造模成功。

Figure 2 Effect of CMCA on CSE-induced 16-HBE cells apoptosis(± s,n = 3)

实验结果表明,CMCA 显著改善了CMC 本身的强酸性,从而可能减轻对消化道的刺激作用。此外,在等物质的量浓度下CMCA 较CMC 或L-精氨酸有着更好的清除ROS 和抗细胞凋亡的能力,并且呈现浓度依赖性关系,提示在体外CSE 诱导的细胞损伤模型中CMCA 较CMC 有着更好的治疗效果。

随后使用DAF-FM DA 荧光探针检测细胞内NO 的含量,考察CMCA 细胞保护作用是否依赖于NO。研究发现,模型组较对照组NO 含量显著下降,可能是由于10%CSE 的加入,使细胞内自身的NO 与CSE 刺激产生的ROS 进一步反应生成NO2、N2O3和ONOO-等其他活性氮形式,无法被荧光探针所检测。CMC 的加入,减轻细胞内炎症和抗氧化应激损伤,恢复细胞内部分NO 含量(P<0.001vs模型组),而CMCA给药后细胞内NO含量进一步增加(P<0.001vsCMC 组)。以上提示NO 对CSE诱导的细胞损伤可能具有保护作用。

总之,本研究合成的CMCA 较CMC 具有更优的理化性质,在体外CSE 诱导的细胞损伤模型中较CMC 有着更好的清除ROS 和抗细胞凋亡的作用。此外,CMCA 还可能降低应用CMC 带来的胃肠道不良反应,改善患者的依从性,较CMC具有更广泛的应用前景,值得深入研究。

Figure 3 Effect of CMCA on CSE-induced NO concentration in 16-HBE cells(± s,n = 3)

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