生物纳米材料透射电镜样品制备条件研究
2021-11-01厉艳君吴立敏郝玉红
厉艳君, 吴立敏, 周 莹, 陈 鹰, 郝玉红
(上海市计量测试技术研究院,上海 201203)
0 引 言
作为微观结构的一种重要分析表征手段,透射电子显微技术(TEM)以其超高的分辨能力和直观性广泛应用于材料、医学、生物和地质科学等研究领域,具有不可取代的地位[1-4]。对于蛋白、胶束、脂质体等生物纳米材料,由于其主要组成元素是C、H、N、O等,这些元素原子序数低,散射电子能力较弱,与作为背景的碳支持膜之间衬度差异很小,导致其信噪比较低,拍出来的照片对比度小,而且样品易受辐照损伤,难以直接用电镜观测。通常要用染色的方法来增加图像的衬度。
负染色技术最早于1959 年由Brenner 等提出[5-6]。与传统的正染不同的是,样品进行负染时,样品与染液之间不发生反应,故样品本身并不着色。利用样品与染色剂密度的悬殊对比,在电子致密的黑色背景中能反衬出低电子密度的白色样品,形成负反差,故称其为负染色[7]。负染色技术具有操作简单、快速方便,可较好的保存样品结构,使被染样品反差适中、分辨率高,且样品与染液用量少等优点,被广泛应用于病毒、蛋白质晶体、高分子聚合物等的分析[8],是一项十分重要的实验技术。但是,由于染色效果与染色剂的成分、浓度、pH值、染色方式、染液用量、染色时间等息息相关,染色效果具有一定的随机性,常常需要多次尝试才能获得理想的染色效果。为了达到更好的实验效果,不断有人就电子染色的方法进行研究和改进[9-14]。
在提高染色效果的同时,还有通过适当的方法,不用染色,直接观测到样品。如周剑锋等[15]提出了一种无需染色的“负像法”表征聚丙烯酸酯类乳胶的方法。该方法基于丙烯酸酯类聚合物热黏、冷脆的结构特性,通过短时烘烤,直接获得了样品类似负染效果的电镜图片,方便、快捷,同时避免了负染过程中可能引入的假象。Kraft等[16]采用金胶体修饰样品表面,通过观察金勾勒出的轮廓,直接观察到脂肪酸微凝胶的形貌。王素丽[17]利用计算机算法,减少图像中噪声的影响,增强反差,提高图像的衬度。另外,新的电镜技术冷冻电镜技术(Cryo-EM),可以将样品包埋在玻璃态冰中,观察到亲水生物材料在近乎自然状态下的形貌,减少了染色过程中引入的假象。
本文从调节染色条件的最常见的染液选择、碳支持膜的处理、样品浓度、染色时间出发,研究不同条件下可能出现的一些现象,从而有针对性地调节染色条件,为有效利用TEM 表征生物纳米材料提供参考依据,得到更真实可靠、满足分析要求的高质量照片。
1 实验部分
1.1 试剂与设备
试剂:脂质体(Drmercola),磷钨酸(北京中镜科仪),醋酸双氧铀(Electron Microscopy Sciences)。
仪器:辉光放电仪(ELCO easiGlowTMGlow Discharge,Ted Pella,USA),场发射透射电子显微镜(TECNAI G2,FEI,USA)。
1.2 实验方法
脂质体分散液的配制:称取1 g脂质体,加入9 mL双蒸水后,超声20 min 使充分分散,用滤膜过滤后待用。
醋酸双氧铀染液的配制:称取1 g醋酸铀晶体,加入99 mL双蒸水后,在黑暗中放置30 min,充分溶解后用滤膜过滤,得到1%的醋酸铀水溶液,放在棕色瓶中待用。
负染操作的主要步骤如图1 所示。将适合浓度的脂质体样品溶液滴在碳支持膜上,停留一段时间后用滤纸将多余溶液吸除,再滴加去离子水洗漂洗,用滤纸吸干,并迅速滴上染液,使染液与支持膜上的样品颗粒充分接触,然后用滤纸将多余染液吸除,将样品室温干燥待用。
图1 负染基本流程图
2 实验结果与讨论
2.1 不同染液对染色的影响
分别用1%浓度的醋酸双氧铀和磷钨酸对脂质体进行染色,寻找合适的区域拍照,得到结果如图2 所示。用醋酸双氧铀与磷钨酸染色都可以在样品上找到背景为黑色,颗粒为白色的区域,颗粒轮廓清晰,反差明显,两种染液都能获得较好的染色效果。磷钨酸染色的样品,碳膜上染色区域染液沉积厚度过渡较平缓,碳膜完整;用醋酸双氧铀染色的样品,染色区域较多,对比度较明显,但碳支持膜易破裂。醋酸双氧铀溶液见光易分解[18],不易保存,需要现用现配,具有一定的放射性和毒性,且试剂价格昂贵。磷钨酸染液配制简便,易于存储。在染色效果差不多的情况下,采用磷钨酸溶液进行染色。
图2 不同染液染色后的TEM图
2.2 碳膜处理方式对染色的影响
将磷钨酸水溶液直接滴在碳支持膜上,在染色区域可以看到如图3(a)所示的白色颗粒。由图3(a)可见,即使是没有样品的铜网,经过染色,也会出现大量的白色球形颗粒。这些颗粒,可能是染液和碳膜表面接触在碳膜上形成的纳米气泡。研究表明,在固液界面之间,有纳米气泡存在[19-21]且纳米气泡主要在疏水表面富集。长时间放置在空气中的碳支持膜,就是一个光滑的疏水表面,当磷钨酸水溶液滴在上面时,在碳-水界面上很可能聚集一些纳米气泡,即图3(a)所观察到的白色颗粒。这种白色球形颗粒,与很多生物纳米材料经染色后的形貌非常相似,极易与样品混淆,在实际应用中应尽量避免。把碳支持膜放入辉光放电仪放电30 s后,再滴加磷钨酸水溶液,观察铜网,可以看到染色区域中的白色颗粒大大减少,如图3(b)所示。该结果说明,增加碳支持膜的亲水性,可以减少这种假象的产生。在碳支持膜上先滴一滴乙醇溶液润湿,再滴加磷钨酸水溶液进行染色,电镜观察发现,染色区域白色颗粒也明显减少,如图3(c)所示。用辉光放电或者乙醇润湿,都能增加碳膜的亲水性,减少在纳米气泡在碳膜表面的聚集,从而减少在染色过程中出现白色球形颗粒。因此,滴加样品前,最好对碳支持膜进行亲水化处理,避免一些因为界面气泡而产生的假象。同时,对于分散在水溶液中的纳米生物材料样品,碳膜亲水化处理也能帮助样品更均匀地分散在支持膜上。
图3 不同碳膜处理方式染色后的TEM图
2.3 样品浓度对染色的影响
将浓度为1%的维C脂质体分散液滴在碳支持膜上,用磷钨酸染色后,形貌如图4(a)所示,样品形貌非常杂乱,看不出颗粒的具体形态。可能是样品浓度过高,颗粒难以有效分散,在碳膜上团聚堆叠,染液无法与样品充分接触,染色后选择性地显示出部分轮廓线,无法观察到样品的真实形貌。稀释10 倍以后,浓度为0.1%的脂质体分散液染色后形貌如图4(b)所示,样品分散较好,较少发生变形,颗粒轮廓清晰,数量较多,分布适宜,由图像可以分析脂质体的形态、粒径大小及分布状况。稀释100 倍以后,浓度为0.01%的脂质体分散液染色后形貌如图4(c)所示,样品分散好,颗粒轮廓清晰,但是数量很少,一个视野下只能找到几个颗粒,没有代表性。样品过稀,沉积在支持膜上的样品数量过少,无法在一个视野中获得足够数量的颗粒,这就导致实验随机性太高,对形貌与粒径分布分析缺乏代表性和说服力,而且加大电镜拍照寻找颗粒的难度。不同的样品所需要的浓度是不一样的,这与样品颗粒的粒径大小、表面电荷、分散性等都有关系,在实验中针对具体的样品可根据拍摄情况进行相应的调整。
图4 不同浓度样品染色后的TEM图
2.4 染色时间对染色的影响
染色时间过短,在铜网上只能找到很少的染色区域,可供观察的区域很少,染色区域没连续的黑色背景区域,只在颗粒附近有很淡的灰色,染色效果有点类似于“正染”,很多颗粒未显示出来,一个视野中看到的颗粒过少,如图5(a)所示。染色时间过长,染液沉积过厚,碳支持膜多处破裂,可供观察区域也少,且碳膜破裂引起碳膜卷曲,引起颗粒变形,影响观察的真实性,如图5(c)所示。同时,过厚的染液沉积也会模糊颗粒边界,使图片不清晰。适当的染色时间,才能获得合适的染色区域,得到衬度明显,轮廓清晰的电镜图片,如图5(b)所示。
图5 不同染色时间染色后的TEM图
3 结 语
1%浓度的醋酸双氧铀和磷钨酸染液都能对脂质体染色,获得较好的染色效果。对碳膜进行亲水化处理可以避免一些因为界面气泡而产生假象的同时,让样品能更好地在支持膜上分散。适合的样品浓度,才能获得理想的样品分布;适当的染色时间,才能获得合适的染色区域,得到衬度明显,轮廓清晰的电镜图片。