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PD−L1过表达在DENV−2诱导血管内皮细胞自噬和凋亡中的作用机制

2021-04-04姚峰朱磊程波杨明刘敏

天津医药 2021年3期
关键词:内皮细胞培养基抗体

姚峰,朱磊,程波,杨明,刘敏

登革病毒(dengue virus,DENV)是引起登革热、登革出血热和登革综合征的病原体,为单正链RNA,属于黄病毒科,主要通过蚊虫(埃及伊蚊或白纹伊蚊)叮咬传播,流行于热带及亚热带地区[1]。DENV分为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ血清型,其中以Ⅱ型登革病毒(dengue virusⅡ,DENV−2)传播最为广泛[2]。血管内皮细胞是DENV引起病变的主要部位之一,DENV可对血管内皮细胞造成损伤[3−4]。研究显示,DENV−2能诱导EAhy926细胞发生自噬[5],通过线粒体途径诱导EAhy926细胞凋亡[6]。但具体的信号机制尚不明确。程序性细胞死亡受体−1配体(programmed death−1 ligand,PD−L1)是肿瘤免疫治疗的靶点之一,且参与细胞自噬活动[7−8]。但PD−L1是否与DENV−2诱导的人血管内皮细胞自噬和凋亡有关尚无定论。本文以EAhy926细胞为研究对象,观察PD−L1过表达在DENV−2影响血管内皮细胞自噬和凋亡中的作用,并探讨其可能的作用机制。

1 材料与方法

1.1 材料EAhy926细胞购自上海研酶生物科技有限公司;DENV−2病毒株购自北京义翘神州科技有限公司。DMEM/F12培养基、磷酸盐缓冲液(PBS)购自美国Hyclone公司;胎牛血清(FBS)、青−链霉素购自美国Gibco公司;自噬蛋白微管相关蛋白1轻链3B(microtubule−associated protein1 light chain3B,LC3B)抗体、B淋巴细胞瘤−2(B−cell lymphoma−2,Bcl−2)抗体、自噬相关蛋白Beclin−1抗体、PD−L1抗体和α微管蛋白(α−Tubulim)抗体购自美国CST公司;羊抗兔辣根过氧化物酶标记的IgG(IgG−HRP)二抗和羊抗小鼠IgG−HRP二抗购自美国圣克鲁斯公司;甘油醛−3−磷酸脱氢酶(GAPDH)抗体购自武汉Bioworld公司;RIPA裂解液、BCA试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司;PD−L1慢病毒载体过表达试剂盒购自上海吉玛公司。SpectraMax M5e多功能酶标仪(美国Molecular Devices公司),Leica DMi8倒置荧光显微镜(德国Leica公司),Accuri C6 Plus流式细胞仪(美国BD公司),E−Gel Imager凝胶成像系统(美国Invitrogen公司)。

1.2 研究方法

1.2.1 细胞培养EAhy926细胞用DMEM/F12培养液(含10%FBS和1%青霉素−链霉素)置于37℃、5%CO2的培养箱中培养至对数生长期用于后续实验。

1.2.2 四甲基偶氮唑盐(MTT)法检测细胞增殖活力收集对数生长期EAhy926细胞,以每孔100μL细胞悬液(0.9×107个/L)接种于96孔板中,过夜培养,次日吸出培养基加入含梯度浓度DENV−2(1×108、2.5×108、5×108、1×109、2×109pfu/L)的无血清DMEM/F12培养基;同时设置对照组和调零孔,对照组在细胞中加入无血清DMEM/F12培养基,调零孔在空白孔加入无血清DMEM/F12培养基。细胞处理24 h和48 h时每孔加入20μL MTT,放入培养箱继续培养4 h后每孔加入150 μL二甲基亚砜,振荡10 min。酶联免疫检测仪于490 nm处测量各孔的吸光度(A)值,计算DENV−2处理组细胞增殖活力(%)=[(ADENV−2−A调零)/(A对照−A调零)]×100%,半数抑制浓度(50%concentration of inhibition,IC50)由Graphpad Prism7.0求得。实验共重复3次。

1.2.3 慢病毒转染法过表达PD−L1蛋白将EAhy926细胞接种至12孔板,细胞生长至50%融合度时转染。加入10 mg/L聚凝胺(polybrene)和10%FBS的DMEM培养基。载有PD−L1的慢病毒液和空载慢病毒液分别稀释50倍,各吸取50μL至细胞中,分别设为转染组和空载对照组。所有慢病毒液均载有绿色荧光标签。同时,以未转染的正常EAhy926细胞作为空白组。各组细胞置于培养箱培养18 h后更换为含10%FBS的DMEM/F12培养基,当细胞生长至90%融合度时以嘌呤霉素进行筛选。荧光显微镜下观察空白组、空载对照组和转染组慢病毒进入细胞情况;蛋白印迹法检测各组PD−L1蛋白表达情况。

1.2.4 蛋白印迹法检测蛋白表达据MTT结果,DENV−2对EAhy926细胞48 h的半数抑制浓度(IC50)为1.2×109pfu/L,为后续实验浓度。DENV−2(1.2×109pfu/L)处理EAhy926细胞12 h、24 h、48 h作为DENV−2 12 h组、DENV−2 24 h组及DENV−2 48 h组,同时设置对照组;另一实验以DENV−2(1.2×109pfu/L)处理空载对照组和转染组48 h。收集各组细胞并提取总蛋白,以BCA试剂盒进行蛋白定量。各组以30 μg上样量进行10%SDS−PAGE,湿转PVDF膜,常温下以5%脱脂牛奶封闭PVDF膜2 h,TBST缓冲液洗膜3次,以LC3B抗体(1∶1 000)、Bcl−2抗体(1∶2 000)、Beclin−1抗体(1∶2 000)、Tubulin抗体(1∶2 000)或PD−L1抗体(1∶1 000)4℃孵育过夜,次日TBST洗膜3次,再加入羊抗小鼠或羊抗兔IgG−HRP二抗(1∶2 000)室温杂交1 h,PVDF膜洗涤3次后以ECL化学发光试剂盒进行显色,凝胶成像仪进行成像。以Tubulin作为内参蛋白,用Image J(v1.8.0)对所有蛋白灰度值进行处理和分析,处理组目的蛋白相对表达量=(处理组目的蛋白灰度值/Tubulin灰度值)/(对照组目的蛋白灰度值/Tubulin灰度值)。

1.2.5 流式细胞仪检测细胞凋亡率分组同1.2.4。处理结束后将细胞用不含EDTA的胰蛋白酶消化细胞,参考文献[9]和说明书进行Annexin V−PI染色,检测细胞凋亡情况。细胞总凋亡率(%)=第一象限百分率+第四象限百分率。

1.3 统计学方法采用Graphpad Prism 7.0软件对数据进行统计处理。符合正态分布的计量数据以x±s表示,2组间均数比较用t检验;多组间均数比较采用单因素方差分析,组间多重比较采用LSD−t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 DENV−2抑制EAhy926细胞增殖与对照组比较,1×108、2.5×108、5×108、1×109、2×109pfu/L DENV−2处理24 h和48 h均可剂量依赖性抑制EAhy926细胞增殖(P<0.01),见图1。DENV−2 24 h和48 h的IC50分别是1.8×109pfu/L和1.2×109pfu/L。

Fig.1 The effect of DENV−2 on the proliferation of EAhy926 cells图1 DENV−2对EAhy926细胞增殖能力的影响

2.2 DENV−2对EAhy926细 胞LC3B、Beclin−1及Bcl−2蛋白表达的影响与对照组比较,DENV−2(1.2×109pfu/L)处理12、24、48 h均可上调EAhy926细胞LC3Ⅱ/LC3I和Beclin−1蛋白表达,下调Bcl−2蛋白表达,呈时间依赖性(P<0.05),见图2、表1。

Fig.2 The effect of DENV−2 on the autophagy in EAhy926 cells图2 DENV−2对EAhy926细胞自噬能力的影响

Tab.1 The expression levels of autophagy-related proteins in four groups of EAhy926 cells表1 各组EAhy926细胞自噬相关蛋白表达水平(n=3,x±s)

2.3 DENV−2对EAhy926细胞凋亡率的影响对照组、DENV−2 12 h组、DENV−2 24 h组及DENV−2 48 h组的EAhy926细胞凋亡率分别为(6.33±0.86)%、(12.05±1.50)%、(19.85±2.26)%、(27.30±0.03)%,呈依次增高趋势(n=3,F=160.000,P<0.05),见图3。

2.4 PD−L1蛋白过表达验证与空白组比较,空载对照组和转染组细胞有较强的绿色荧光。空白组、空载对照组和转染组PD−L1蛋白相对表达水平分别为0.21±0.02、0.19±0.02和1.06±0.09,差异有统计学意义(n=3,F=249.400,P<0.01),其中与空载对照组比较,转染组PD−L1蛋白表达明显上调(P<0.05),空白组和空载对照组细胞差异无统计学意义,见图4。

2.5 过表达PD−L1对DENV−2诱导的细胞凋亡和自噬的影响DENV−2处理48 h后,与空载对照组比较,转染组细胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ和Beclin−1蛋白相对表达水平下降,Bcl−2蛋白相对表达水平上升,细胞总凋亡率下降(P<0.01),见图5、表2。

3 讨论

DENV可引起登革出血或登革综合征,可对血管内皮细胞造成损伤,而血管内皮细胞是DENV引起病变的主要部位之一[3−4]。因此,探讨DENV对血管内皮细胞的影响及相关机制具有重要意义。EAhy926细胞为重组血管内皮永生细胞,具有明显的血管内皮细胞特性,被广泛用于血管内皮细胞的相关基础研究。本研究以DENV−2(1×108~2×109pfu/L)处理EAhy926细胞,发现细胞增殖被抑制并呈剂量依赖性,提示DENV−2可能通过某种信号机制诱导细胞损伤,进而引起增殖抑制或细胞凋亡。

Fig.3 The effect of DENV−2 on the apoptosis of EAhy926 cells图3 DENV−2对EAhy926细胞凋亡的影响

Fig.4 Successful construction of PD−L1 overexpressing in EAhy926 cells图4 成功构建PD−L1过表达EAhy926细胞

Fig.5 The effect of overexpression of PD−L1 on DENV−2 induced apoptosis and autophagy图5 过表达PD−L1对DENV−2诱导的细胞凋亡和自噬的影响

Tab.2 Comparison of the expression levels of autophagy-related proteins and the total apoptosis rate between 2 groups of cells表2 2组细胞自噬相关蛋白表达水平及总凋亡率比较(n=3,x±s)

研究发现,细胞死亡前胞浆中存在大量的自噬体或自噬溶酶体,但自噬细胞缺乏核固缩、核破裂、细胞皱缩、凋亡小体的形成等凋亡的典型特点,因此自噬又称为“Ⅱ型”或“自噬”非凋亡程序性细胞死亡[10−11]。自噬与凋亡程序均可调控细胞死亡[12]。研究认为,自噬与凋亡通路具有一些共用的信号蛋白,因此自噬和凋亡可产生相互影响[13]。激活自噬可以保护心脏免受心肌缺血和缺血后心脏重塑的影响,从而减轻心肌细胞凋亡[14]。另有研究显示,自噬可通过mTOR信号通路抑制高糖诱导的心脏微血管内皮细胞凋亡[15]。因此,自噬参与心血管内皮细胞的凋亡过程。最近的研究显示,DENV−2可诱导细胞间黏附分子−1表达上调和自噬,最终诱导人肝窦内皮细胞凋亡[16]。DENV−2能诱导人血管内皮细胞EAhy926发生自噬[5],并通过线粒体途径诱导人血管内皮细胞EAhy926凋亡[6]。

LC3Ⅱ与LC3Ⅰ是LC3B的2种水解形态,当细胞发生自噬时LC3Ⅱ与LC3Ⅰ蛋白表达比值升高[17]。Beclin−1是自噬关键调控蛋白之一,参与自噬 体 膜 形 成;Bcl−2可 与Beclin−1结 合 并 抑 制Beclin−1的活性,Bcl−2也是经典的凋亡抑制蛋白,其表达下调与细胞凋亡增加有关[18]。本研究增殖实验显示,48 h时DENV−2对EAhy926细胞的IC50为1.2×109pfu/L,由于此时细胞存活和死亡细胞均占50%,有利于观察自噬和凋亡相关指标,因此选取此浓度进行后续实验。本研究结果显示,与对照组比较,DENV−2处理12 h、24 h、48 h均可上调EAhy926细胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ和Beclin−1蛋白表达,下调Bcl−2蛋白表达;流式细胞术结果显示,对照组、DENV−2 12 h组、DENV−2 24 h组 及DENV−2 48 h组 的EAhy926细胞凋亡率呈依次增加趋势,表明DENV−2可能通过调控Bcl−2/Beclin−1通路上调LC3Ⅱ/LC3Ⅰ,进而诱导EAhy926细胞自噬和凋亡,而Bcl−2作为关键蛋白,其表达下调同时导致自噬和凋亡的增强,可能是DENV−2诱导血管内皮细胞损伤的潜在治疗靶点。

PD−L1为PD−1的配体,两者结合所组成的免疫检查点可抑制T细胞的活化及细胞因子的产生[7]。在血管内皮细胞、胰岛细胞以及免疫豁免部位(如胎盘、睾丸和眼睛)等非造血细胞PD−L1表达水平较低[19]。哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,MTORC1)是细胞自噬中的重要调控靶点,其激活能抑制细胞自噬[20]。在肿瘤免疫调控实验中发现,肿瘤细胞固有的PD−L1可促进MTORC1信号激活,从而促进肿瘤细胞生长,使肿瘤细胞自噬活动处于“静息状态”[21]。为观察PD−L1在DENV−2诱导EAhy926细胞自噬和凋亡中的作用,本研究以慢病毒为载体外源性上调EAhy926细胞PD−L1蛋白表达,并以嘌呤霉素筛选了稳定表达的细胞,结果发现,PD−L1过表达后DENV−2对EAhy926细胞LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、Beclin−1及Bcl−2蛋白表达的诱导被逆转,且细胞凋亡明显减少,表明过表达PD−L1能抑制DENV−2诱导的EAhy926细胞自噬和凋亡,而该作用可能与抑制Bcl−2/Beclin−1信号通路有关。

综上所述,DENV−2可能通过Bcl−2/Beclin−1通路上调LC3Ⅱ/LC3I,进而诱导EAhy926细胞自噬和凋亡。PD−L1过表达可逆转DENV−2的上述诱导效应,这可能是DENV−2诱导血管内皮细胞损伤的保护靶点。PD−L1与自噬的相关性研究丰富了PD−L1蛋白的生物学功能,但PD−L1的下游信号靶点还未完全清楚,有待于更多实验验证。

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