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CCDC34 在胃肠道间质瘤中的表达及其与血管生成的关系

2020-05-11支小飞陈思俊华如衡朱建伟

中国普通外科杂志 2020年4期
关键词:细胞株微血管胃肠道

支小飞,陈思俊,华如衡,朱建伟

(南通大学附属医院 普通外科,江苏 南通 226001)

胃肠道间质瘤(GIST)是起源于胃肠道肌层的间叶源性肿瘤,发病率约1~2/10 0000,约占胃肠道恶性肿瘤1%~3%[1]。手术治疗是目前主要的治疗手段,但术后仍有40%~80%的GIST患者出现复发[2]。因此,研究GIST发生机制并寻找有效治疗手段迫在眉睫。GIST发生发展过程极其复杂,涉及多种分子信号通路参与。

卷曲螺旋结构域蛋白34(coiled-coil domaincontaining 34,CCDC34)在1例视网膜和视网膜色素上皮联合错构瘤患者中首次发现,也被称为NY-REN-41,包括373个氨基酸,位于11p14.1染色体上。目前研究发现,CCDC34在膀胱癌[3]、宫颈癌[4]、直肠癌[5]和肝癌[6]等多种肿瘤中过表达,促进其细胞增殖和迁移。Hu等[7]在食管鳞状细胞癌中CCDC34差异表达水平与ESCC组织的淋巴结转移和TNM分期显着相关,且高表达CCDC34患者预后不良。除此之外,他们还发现CCDC34和VEGF之间存在明显的相关性。Qi等[8]研究表明在胰腺癌细胞中沉默CCDC34后通过抑制PI3K/Akt信号通路阻滞肿瘤血管生成等作用。由此可以看出CCDC34在肿瘤血管生成中发挥至关重要的作用。然而,CCDC34在GIST中的表达水平和作用尚不清楚,本研究通过分析GIST组织中CCDC34的表达和微血管密度(microvessel density,MVD)的数量,并在荷瘤鼠模型上探讨其对GIST血管生成的作用及机制,为临床治疗GIST,提供理论参考依据。

1 材料与方法

1.1 标本来源

收集2018年1月—2019年2月我院病理科经外科切除的GIST组织标本84例,患者年龄45~79岁,平均(5 5.2 5±7.2 1)岁;肿瘤位于胃4 8 例,小肠2 0 例,结直肠8 例及胃肠外8 例;组织学分型:上皮样细胞型5例,梭形细胞型71例和混合细胞型8例;32例局部侵犯(浸润消化道壁或邻近脏器);3 1 例有坏死,3 4 例转移(盆腹腔转移1 5 例,肝转移5 例,淋巴结转移4 例);肿瘤最大径0.4~25 cm。另选取30例正常胃肠道黏膜组织作为对照,所有患者年龄4 6 ~7 8 岁,平均(54.16±5.12)岁。

1.2 实验材料

C C D C 3 4 p c D N A 过表达载体(采用的质粒为pLVX-IRES-Hyg)、CCDC34干扰载体(采用pRNAT-u6.2载体),其对应的包装质粒均由广州锐博生物技术有限公司设计和构建;兔抗CCDC34单克隆抗体、兔抗人C D 3 4 单克隆抗体、兔抗人PI3K单克隆抗体、兔抗人p-Akt单克隆抗体、兔抗人VEGF-C单克隆抗体、HRP标记的兔二抗购自英国Abcam公司;蛋白提取试剂盒、BCA试剂盒、DAB免疫组织化学显色试剂盒、发光试剂盒、潮霉素B、遗传霉素购自生工生物工程(上海)股份有限公司;293T和GIST882细胞株购自上海研生实业有限公司。4周龄雄性BALB/c裸鼠,体质量为12~15 g,购买于南京大学模式动物研究所。TransLvTMLentivirus qPCR Titration Kit购自北京全式金生物技术有限公司。Lipofectamine 2000购自Invitrogen公司

1.3 免疫组化检测染色及结果判读

1.3.1 免疫组化检测 经常规石蜡包埋标本,制备5 μm 厚连续切片。3%H2O210 min 阻断内源性过氧化物酶,正常家兔血清室温封闭10 min,加入一抗于4 ℃孵育过夜。次日,PBS 冲洗3 次,生物素化羊抗兔二抗37 ℃孵育30 min,PBS 冲洗3 次,辣根酶标记链酶卵白素37 ℃孵育45 min,漂洗后DAB 显色,苏木素复染封片,中性树脂封片,镜下观察并获得图像。

1.3.2 结果判定 以胞质出现浅黄色至棕褐色者为阳性,染色强度评分标准为基本不着色记0 分,浅黄色记1 分,棕黄色记2 分,棕褐色记3 分;阳性细胞所占比例评分标准为:0%记0 分,1%~25%记1 分,26%~50% 记2 分,51%~75% 记3 分,76%~100% 记4 分。两项指标评分乘积,判定结果如下:阴性为0~3 分、4~12 分为阳性。以不含一抗的标本作为阴性对照。

1.3.3 MVD 计数 肿瘤边缘区微脉管计数采用郭黎姣等[8]的方法。用CD34 标记微血管,先于40 倍光镜下选出3 个微血管着色最密集的区域,然后在200 倍视野下计数微血管。判定结果如下:被抗体染色的细胞或细胞团记为1 个微血管,排除管径>8 个红细胞直径及汇管区血管。MVD 数量为3 个视野的均值。

1.4 CCDC34 干扰/ 过表达GIST882 稳定转染细胞株的建立

1.4.1 CCDC34 过表达GIST882 稳定转染细胞株的建立 具体步骤参照文献[9],将包装质粒1、2 和CCDC34 pcDNA 过表达载体按照5:3:2 比例加入到opti-MEM 中混匀,另用转染试剂PEI 将opti-MEM 预混。室温静置20 min 后,将两者混合。缓慢加入293T 细胞中。分别于24、48 h 收集2 次病毒备用,采用TransLvTMLentivirus qPCR Titration Kit 检测慢病毒的滴度。将获得的病毒感染SKOV3 细胞(MOI=20),采用潮霉素B 进行筛选出CCDC34 过表达GIST882 稳定转染细胞株。

1.4.2 CCDC34 干扰GIST882 稳定转染细胞株的建立 基本操作如1.4.1。最后采用遗传霉素进行筛选出CCDC34 干扰GIST882 稳定转染细胞株。

1.5 动物造模及分组

将无处理的G I S T 8 8 2 及C C D C 3 4 干扰/过表达GIST882细胞株于培养基中培养传代后,调整密度为1×107个/mL,在裸鼠第二乳垫部皮下注射0.2 m L 细胞液,建立6 0 只荷瘤鼠,分为模型组(无处理的GIST882细胞)、CCDC34干扰组(CCDC34干扰GIST882细胞)和CCDC34过表达组(CCDC34过表达GIST882细胞),每组各 20只。在接种部位乳垫处出现质地较硬,肿瘤结节认为造模成功。3周后处死裸鼠,完整切除肿瘤组织。

1.6 Western blot 实验

收集各组细胞/组织裂解,用BCA定量裂解的蛋白,进行SDS-PAGE电泳,转至PVDF膜,用含5%脱脂奶粉封闭。用一抗在室温下孵育2 h、洗膜;用羊抗兔HRP二抗在室温下孵育1 h、洗膜,ECL显影。化学发光系统拍照。

1.7 统计学处理

所有的数据均采用SPSS 21.0软件进行分析。计量资料用均数±标准差(x±s)表示,符合正态分布的计量资料,两组比较采用独立样本t检验,多组比较采用单因素方差分析;计数资料用例数(百分比)[n(%)]表示,组间率的比较采用χ2检验;相关性分析采用Pearson相关分析法,检验水准α=0.05,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 GIST 组织和正常胃肠道黏膜组织CCDC34表达

免疫组化染色显示,CCDC34在GIST组织中的阳性表达率(86.90%,73/84)明显高于正常胃肠道黏膜组织的(16.67%,5/30)(χ2=98.175,P=0.001)(图1)。

2.2 CCDC34 表达与GIST 患者临床病理特征的关联性

CCDC34表达与患者性别、年龄、肿瘤部位、组织学类型等无关(均P>0.05),而与肿瘤的危险度分级、肿瘤大小、肿瘤细胞核分裂象和局部侵犯、坏死和转移有关(均P<0.05)(表1)。

2.3 GIST 组织中的CCDC34 与MVD 计数的相关性

S p e a r m a n 相关分析表明,C C D C 3 4 表达与M V D 计数呈现明显的正相关性(r=0.6 9 5,P<0.001)(图2)。

2.4 转染效率检测结果

与空白对照组比较,CCDC34干扰组GIST882细胞CCDC34蛋白表达水平明显降低(P<0.05)。CCDC34过表达组GIST882细胞CCDC34蛋白表达水平明显升高(P<0.05)。CCDC34的蛋白表达在空白对照组、干扰对照组和过表达对照组无统计学差异(均P>0.05)(图3)。

表1 CCDC34 表达与GIST 患者临床病理特征的关系[n(%)]Table 1 Relations of CCDC34 expression with the clinicopathologic characteristics of the GIST patients [n (%)]

图2 CCDC34 表达与MVD 计数的关系 A:在GIST 组织CCDC34 表达量与MVD 计数值散点图;B:GIST 组织中的CCDC34 与MVD 计数之间的相关性散点图Figure 2 Relationship between CCDC34 expression and MVD count A: Scatter plot of CCDC34 expression levels and MVD counts in GIST tissues; B: Scatter plot of correlation between CCDC34 expression and MVD count in GIST tissues

图3 Western blot 检测转染效率Figure 3 Transfection efficiency detected by Western blot analysis

2.5 各组移植瘤MVD 计数值比较

以C D 3 4 标记的微血管进行M V D 计数值分析,结果显示,与模型组移植瘤M V D 计数(1 8.5 2±3.2 6)比较,C C D C 3 4 过表达组裸鼠移植瘤M V D 计数(2 9.5 6±2.4 9)明显增加(t=11.63,P<0.01);CCDC34干扰组裸鼠移植瘤MVD计数(6.21±1.52)明显降低(t=14.64,P<0.01)(图4)。

图4 各组移植瘤MVD 计数检测(×200) A:模型组;B:CCDC34 过表达组;C:CCDC34 干扰组Figure 4 Detection of MVD counts in the tumor xenografts of each group A: Model group; B: CCDC34 overexpression group; C: CCDC34 interference group

2.6 各组移植瘤组织中PI3K、p-Akt、VEGF-C表达

与模型组比较,C C D C 3 4 过表达组移植瘤组织中P I 3 K、p-A k t、V E G F-C 明显增加(均P<0.05);CCDC34干扰组移植瘤组织中PI3K、p-Akt、VEGF-C明显降低(均P<0.05)(图5)。

图5 各组移植瘤组织中PI3K、p-Akt、VEGF-C 表达比较Figure 5 Comparison of expressions of PI3K, p-Akt and VEGF-C in tumor tissues of each group

3 讨 论

卷曲螺旋(coiled-coil)是一种在蛋白质中鉴定出来的特殊结构基序。该结构基序参与一系列生物学功能,如细胞分裂,基因表达调控,药物传递和膜融合[10]。研究[10-12]表明,含有该结构基序的蛋白质在结直肠癌、胰腺癌等多种肿瘤中异常表达,与肿瘤细胞的迁移,侵袭和转移密切相关,有望成为肿瘤侵袭和转移以及临床判断肿瘤治疗预后的新标志物。CCDC34是卷曲螺旋结构域(CCDC)家族的新成员之一,是与疾病有关的蛋白质编码基因[5,13]。CCDC34的临床意义首先在膀胱癌中被探索,结果表明,CCDC34在膀胱癌中表达上调,通过慢病毒介导的sgRNA敲低CCDC34可以抑制膀胱癌细胞的增殖和迁移,并促进细胞周期保持在G2/M阶段。此外,CCDC34的敲低显着抑制裸鼠中膀胱肿瘤细胞的生长[3]。在食管鳞状细胞癌(esophageal squamous cell carcinoma,ESCC)中,CCDC34差异表达水平与ESCC组织的淋巴结转移和TNM分期显着相关,且CCDC34高表达的患者的总生存率(O S)和无病生存率(DFS)显著低于CCDC34低表达的患者。因此CCDC34表达水平可作为ESCC患者OS和DFS的独立预后因素[7]。本研究首次证明CCDC34在GIST患者中与正常胃肠道黏膜组织相比高表达。然后,分析结果显示,CCDC34表达与患者性别、年龄、肿瘤部位、组织学类型等无关,而与肿瘤的危险度分级、肿瘤大小、肿瘤细胞核分裂象和局部侵犯、坏死和转移密切相关。这与张著学等[14]和李小红等[15]研究结果相似,说明CCDC34有可能参与GIST的侵袭与进展。

目前,已有研究[16-17]表明血管生成对肿瘤的发生,发展和转移至关重要。抗血管生成药物及其类似物的研发应用,为肿瘤的治疗提供了新的方法[18-20]。Qi等[8]研究表明在胰腺癌细胞中沉默CCDC34后可通过抑制PI3K/Akt信号通路阻滞肿瘤血管生成等作用。由此可以看出CCDC34参与胰腺癌血管生成。本研究为了确定在GIST中CCDC34蛋白与肿瘤血管生成之间是否存在联系,先分析MVD和CCDC34之间的关系。与MVD计数呈正相关的结果表明,两者具有正相关关系。这与李泓享等[21]和范晓杰等[22]研究结果相似,提示CCDC34可能通过参与了肿瘤微血管的生成。再通过动物实验发现,与模型组相比,CCDC34干扰组显著降低肿瘤血管生成及PI3K、p-Akt、VEGF-C蛋白表达,而CCDC34过表达组显著提高肿瘤血管生成及PI3K、p-Akt、VEGF-C蛋白表达。本研究与前人研究[23-24]结果相似,由此表明,CCDC34调控PI3K/Akt途径参与胃肠道间质瘤的血管生成。其作用机制为:PI3K信号通路激活后使Akt磷酸化为p-Akt,p-Akt激活内皮型一氧化氮合酶使之磷酸化,产生NO刺激血管舒张和血管形成[25-27]。此外,p-Akt还可通过磷酸化IKKS,降解I-κB,激活NF-κB,从而促进血管生成因子的表达[28-29]。

综上所述,在GIST中过表达CCDC34促进的血管生成,其机制与激活PI3K/Akt信号通路有关,有望成为治疗GIST患者的新靶点。但本研究所得结论只是基于裸鼠动物实验得出,临床中是否具有相同机制还需要进一步探索与研究。

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