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基于纳米金属-有机骨架UiO-66的Hg(Ⅱ)荧光生物传感器的设计

2019-11-07覃亮徐境荣黄焕李树梅罗楚敏

生物化工 2019年5期
关键词:荧光传感器强度

覃亮,徐境荣,黄焕,李树梅,罗楚敏

(肇庆学院食品与制药工程学院,广东肇庆 526061)

汞(Hg)是一种剧毒非必需元素,具备难降解、易富集的特征,是在生态系统中能完善循环的惟一重金属[1]。2017年10月27日,在世界卫生组织国际癌症研究机构公布的致癌物清单中,汞和无机汞化合物在3类致癌物清单中。

研究发现,汞离子(Hg2+)可以和核酸分子中的胸腺嘧啶(T)发生特异性结合,形成T-Hg2+-T键的复合物,可以显著提高T-T错配的稳定性[2]。2011年,Liu的科研团队首次设计出基于氧化石墨烯(Grapheneoxide,GO)的DNA荧光传感器[3]。虽然基于GO的荧光传感器较传统的Hg2+检测法表现出灵敏度高、检出限低、选择性好、操作简单等优点,但受限于材料生产,存在价格较高的问题[4]。

UiO-66是2008年由挪威奥斯陆大学研究开发的一种基于Zr的金属-有机骨架材料[5],该材料不但具有GO的性能,而且具有合成方法温和、可控性高、孔洞大小可调节的优势,在气体分离、磁共振成像、生物医药、化学传感器等方面具有潜在的应用价值[6-7]。到目前为止,基于UiO-66的Hg2+荧光传感器的研究还尚未见报道。因此,本实验将UiO-66应用于水溶液中Hg2+荧光传感检测技术中,有利于更好地开展新型的检测方法的研究。

1 材料与方法

1.1 实验材料与仪器

本实验所用四氯化锆,对苯二甲酸,苯甲酸,N,N-二甲基甲酰胺,无水乙醇均购于上海麦克林生化科技有限公司,实验所用探针DNA(Probe DNA,P-DNA)片段购自Sangon公司,其中P-DNA以6-羧基荧光素(6-FAM)作为荧光标记物,具体序列如下:

P-DNA: 5' -FAM-TTCTTCTTCGCGTTGTT-3'

D8 ADVANCE X射线衍射仪(德国布鲁克公司)、DTG-60H差热-热重联用仪(日本岛津公司)、JEM-2100F场发射透射电镜仪(日本电子株式会社)、F-7000荧光分光光度计(株式会社日立制作所)。

1.2 UiO-66的合成方法及其表征

1.2.1 UiO-66的合成与纯化

将四氯化锆(ZrCl4)(3.0083 g,0.0129mol),对苯二甲酸(2.1431 g,0.0129mol)和苯甲酸(31.4463 g,0.2575mol)溶于N,N-二甲基甲酰胺(DMF)(170 mL,1.030mol)并置于烧杯中,超声30 min至完全溶解;转移至250 mL聚四氯乙烯内衬的不锈钢反应釜中,120℃反应24 h。得到乳白色混悬液,离心,得白色沉淀;依次加入适量的DMF,无水乙醇各洗涤沉淀物3次,自然干燥后得UiO-66。

1.2.2 场发射透射电镜(FESEM)分析

取干燥的UiO-66置于场发射环境扫描电镜仪的样品台中,观察晶体的表面形貌。

1.2.3 X-射线衍射(XRD)分析

设置管压为40 kV,电流为40 mA,在2θ为5o~60o范围内进行扫描,扫描速度为5o/min。完成数据收集后,使用Origin分析软件将X射线谱图与标准卡片比对,以确定UiO-66是否成功合成。

1.3 UiO-66结合P-DNA的荧光淬灭性能

将2 mL P-DNA的水溶液(含1 μL500μmol/L P-DNA)置于荧光比色皿中,作为待滴定液;将UiO-66混悬配成500 μmol/L(含500μmol/LP-DNA)的溶液为滴定液。将滴定液按体积梯度加入比色皿中,记录体系荧光强度的变化(λex=480 nm)直到荧光淬灭达到饱和,此时得到的复合体系为P-DNA@UiO-66。荧光淬灭效率QE用公式(1)计算。

其中,F0为P-DNA初始荧光强度;FM为加入UiO-66后体系荧光淬灭达到饱和时的荧光强度。

1.4 P-DNA@UiO-66对Hg2+的荧光复苏性能

在上述实验基础上,将稀释后的Hg2+溶液加入到荧光淬灭达到饱和的P-DNA@UiO-66复合体系中,监测荧光强度随时间的变化,确定体系荧光复苏达到饱和时的荧光强度。荧光复苏效率RE用公式(2)计算。

其中,FT为加入Hg2+后复苏达到饱和时的荧光强度。

1.5 荧光各向异性(FA)测定

为了进一步证明化合物与P-DNA之间存在相互作用,设定激发波长为480 nm,测定P-DNA,P-DNA@UiO-66体系,P-DNA@UiO-66+Hg2+体系,P-DNA@Hg2+体系的荧光各向异性值。

2 结果与分析

2.1 UiO-66的FESEM分析

通过场发射环境扫描电镜仪,观察到制备的纳米级UiO-66大小均匀,具有良好的分散性,如图1所示。

图1 本实验制备的UiO-66的FETEM图

2.2 XRD分析

实验结果表明,合成的UiO-66的整体峰型与模拟的UiO-66 XRD衍射峰的位置一致(图2),说明UiO-66晶体制备成功,而且纯度较高。

图2 本实验制备的UiO-66的XRD图

2.3 P-DNA@UiO-66的荧光淬灭性能分析

通过荧光滴定实验,考察了UiO-66对P-DNA的荧光淬灭效果,实验结果如图3所示。

图3 UiO-66的淬灭曲线组合图

通过图3可得知,随着UiO-66悬浊液的加入,P-DNA的荧光强度逐渐减弱。当UiO-66溶液加入的浓度约为15.5μmol/L时,P-DNA的荧光淬灭程度达到饱和。

2.4 Hg2+对P-DNA@UiO-66的荧光复苏性能分析

通过荧光复苏实验,考察了Hg2+对P-DNA@UiO-66的荧光复苏效果,可以观察到体系的荧光强度缓慢复苏,实验结果如图4所示。当Hg2+浓度约为100 μmol/L时,P-DNA@UiO-66体系的荧光复苏强度达到饱和,荧光强度不再发生变化。实验结果表明,P-DNA@UiO-66体系对Hg2+具有有效的检测能力。

图4 荧光复苏曲线组合图

2.5 荧光各向异性测定结果分析

通过荧光各向异性实验,考察了P-DNA、P-DNA+MOF(金属有机骨架)、P-DNA+MOF+Hg2+的荧光各向异性值(FA),实验结果如图5所示。在未加入UiO-66前,P-DNA的FA约为0.078,加入UiO-66后,P+MOF的FA约为0.206,是单独P-DNA存在时的2.64倍。加入Hg2+后,体系FA下降为0.118。

图5 荧光各向异性图

图6 UiO-66在不同环境中的XRD图

从图6可知,UiO-66具有高度的稳定性,因此我们推测其作用机理可能是Hg2+加入后,P-DNA与Hg2+通过亲和作用形成T-Hg2+-T的类似双链结构。由于双链结构与UiO-66表面的亲和力较弱,可以从UiO-66表面游离出来,体系荧光强度上升,其作用机理见如图7所示。

图7 基于UiO-66的Hg2+荧光传感器原理图

3 结论

本文以UiO-66为基础制造Hg2+的荧光生物传感器,研究其复合体系的荧光淬灭和荧光复苏的性能。UiO-66对P-DNA有良好的淬灭效果,当Hg2+存在时,体系荧光强度上升,表明P-DNA@UiO-66体系对Hg2+具有有效的检测能力。

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