胞外聚合物和信号分子对厌氧氨氧化污泥活性的影响

张亚超,张 晶,侯爱月,周荣煊,梁东博,张 凯,刘 阳,李 军*

胞外聚合物和信号分子对厌氧氨氧化污泥活性的影响

张亚超1,张 晶1,侯爱月2,周荣煊1,梁东博1,张 凯1,刘 阳1,李 军1*

(1.北京工业大学建筑工程学院,北京市水质科学与水环境恢复工程北京市重点实验室,北京 100124；2.中规院(北京)规划设计公司,北京 100825)

为了探究胞外聚合物(EPS)对厌氧氨氧化颗粒污泥活性的影响,分别向厌氧氨氧化颗粒污泥中投加30mg/L的总胞外聚合物(IN-EPS),松散结合型胞外聚合物(LB-EPS)和紧密结合型胞外聚合物(TB-EPS).结果表明,3种EPS均可提高厌氧氨氧化颗粒污泥的活性.对于添加了IN-EPS,LB-EPS和TB-EPS的实验组,厌氧氨氧化颗粒污泥的氨氮去除速率分别增加了6.68%,10.5%和19.29%,厌氧氨氧化菌的生长速率分别增加了18.25%,21%,16.3%. 三维荧光光谱法分析发现3种EPS的组成基本相同,以芳香族蛋白质和可溶性微生物产物为主.对EPS中的高丝氨酸内酯类(AHLs)信号分子进行检测,发现EPS中含有3种信号分子,分别是C4-HSL,C6-HSL和C10-HSL,外源投加这3种AHLs到厌氧氨氧化颗粒污泥中,结果发现C4-HSL和C6-HSL可以提高厌氧氨氧化颗粒污泥的活性和生长速率,这是EPS可以提高厌氧氨氧化菌活性的原因.

厌氧氨氧化；胞外聚合物；高丝氨酸内酯类信号分子

在厌氧氨氧化过程中,NH4+-N作为电子供体被氧化,NO2--N作为电子受体被还原,可节省63%的耗氧量和100%的外加有机碳源,以及80%~90%的污泥产生[1-2],可使脱氮成本大大降低.厌氧氨氧化工艺作为一种应用前景广阔的生物脱氮技术,已经吸引了国内外学者的广泛关注.

许多学者通过添加催化剂来提高厌氧氨氧化细菌的活性.并且发现在厌氧氨氧化细菌活性提高(文字接排)的过程中,EPS的含量也在逐步增加[3-4].但是关于EPS的研究多集中于EPS对厌氧氨氧化污泥絮凝能力和表面特性的影响,关于EPS对厌氧氨氧化污泥活性的影响的研究仍然较少.EPS是一种由细胞分泌,位于细胞外的高分子聚合物,对于污泥性能有着重要影响[5],根据EPS的分离难度,可以将其分为溶解性EPS(S-EPS)和结合型EPS(B-EPS),而B-EPS又可以进一步被分为松散结合型EPS (LB-EPS)和紧密结合型EPS(TB-EPS)[6].Guo等[5]发现,同时接种反硝化污泥(DS)和厌氧氨氧化污泥的反应器可以快速启动,原因是DS-EPS对厌氧氨氧化污泥的活性有促进作用,但EPS中促进厌氧氨氧化污泥活性的有效成分,以及具体的促进机制尚不明确[7].

EPS的分泌受到AHLs类信号分子的影响[8], AHLs类信号分子是由革兰氏阴性菌分泌的一种信号分子,合成后扩散转移至细胞外并进行积累,当环境中的AHLs浓度积累到一定阈值时,会再次进入细菌体内诱导相关基因的表达[9-12],从而对菌群的生态关系和生理行为进行调控,表现出单个细菌无法表现出的生理功能和调节机制[13].AHLs对厌氧氨氧化细菌的调控会间接地影响反应器的脱氮性能和污泥性质[8].研究[14-15]发现AHLs可以提高厌氧氨氧化菌的活性.但具体调节机制尚不清楚[16].

EPS存在于生物聚集体的内部及表面,而且AHLs和EPS的提取方法相似[17],因此推测EPS中可能含有AHLs,添加EPS有可能会提高厌氧氨氧化菌的活性.目前关于各类EPS的研究多集中于PN和PS的含量以及PN/PS对厌氧氨氧化污泥沉降性能的影响.本研究探究了EPS对污泥活性的影响,并对EPS中AHLs种类和浓度,以及AHLs对污泥活性的影响进行了探究.

据此,本研究从厌氧氨氧化颗粒污泥中分别提取IN-EPS,LB-EPS和TB-EPS,通过批次实验探究了3种EPS对厌氧氨氧化颗粒污泥活性的影响.并通过三维荧光光谱法测试定了EPS的组成,通过气相色谱串联质谱法测定了3种EPS中AHLs的种类和浓度,探究了EPS对厌氧氨氧化污泥活性的影响机理.本研究为提高厌氧氨氧化污泥活性提供了一个新的思路,为厌氧氨氧化工艺的实际应用提供了一定的理论支持.

1 材料与方法

1.1 EPS和AHLs的提取方法

用于提取EPS和AHLs的厌氧氨氧化颗粒污泥取自已稳定运行1a的UASB反应器.目前对于EPS的分类,最普遍的是根据提取方法和和分离的难易程度,采用加热法[18]提取厌氧氨氧化污泥胞外聚合物,称为总胞外聚合物IN-EPS.LB-EPS和TB-EPS的提取方法参考[19].因为提取方法的不同,IN-EPS并不等于LB-EPS和TB-EPS的简单加和,因此分别分析3种EPS对厌氧氨氧化颗粒污泥活性的影响.

信号分子的提取方法.从EPS中提取:将提取到的EPS用0.22μm的微孔滤膜再次过滤,将获得的滤液用等体积的乙酸乙酯进行萃取,用旋转蒸发仪(上海亚荣,RE-52A)将萃取之后的乙酸乙酯在40℃的条件下旋转蒸发,用1.5mL甲醇重新溶解溶剂提取物,保存在-20°C的条件下等待分析.分别从厌氧氨氧化菌和上清液中提取AHLs,提取方法参考文献[16].

1.2 批次实验

批次实验在500mL的血清瓶中进行,血清瓶表面进行避光处理以防止光和细菌的生长.向血清瓶中添加微量元素,矿物质和合成废水(NH4+-N浓度为80mg/L-NO2--N与NH4+-N的浓度比为1.32),用1mol/L的HCl和NaOH调节溶液的pH值为7.5.将25g厌氧氨氧化颗粒污泥用缓冲溶液(1.3mmol/ LNa3PO4, 2.7mmol/L NaH2PO4, 6mmol/L NaCl, 0.7mmol/L KCl;pH=7)清洗3次之后加入到血清瓶中,血清瓶中厌氧氨氧化颗粒污泥的SS和VSS分别为3.735g/L和2.241g/L.投加EPS前,将厌氧氨氧化颗粒污泥进行为期3d的培养,活性稳定后再进行EPS的投加. EPS的总量用PN,PS和DNA的总和来表征[20].

将实验分为对照组,IN-EPS组,LB-EPS组和TB-EPS组.除此之外,为了排除EPS对基质的降解作用,将3种EPS分别投加到只含有合成废水的血清瓶中,不添加厌氧氨氧化污泥.将不同体积的EPS加入到血清瓶中,使血清瓶中的EPS浓度均为30mg/L,添加EPS浓度为0mg/L的为对照组.合成废水中的NH4+-N和NO2--N消耗完全为一个周期,在每个周期的开始(0)和结束时(1)测量厌氧氨氧化颗粒污泥的VSS,用来计算比生长速率:

=(1-0)/(0×)

表1 AHLs的气质联用分析条件

用胶塞塞紧瓶口,氮气吹脱10min以保证缺氧环境,将所有的血清瓶放置于恒温培养箱中连续培养3d,温度为35℃,转速为110r/min每2h用注射器取样一次,过滤后测定NH4+-N, NO2--N, NO3--N浓度.外源投加AHLs的试验中,C4-HSL,C6-HSL和C10-HSL的投加浓度均为1mg/L,其他步骤与外源投加EPS的步骤相同.每组实验重复3次,实验结果取平均值.

1.3 分析方法

1.3.1 气相色谱串联质谱法(GC-MS)分析信号分子 信号分子的分析采用气相色谱质谱联用仪(GC-MS QP2010,日本岛津),GC-MS由气相色谱(GS)和质谱检测器(MS)两部分组成,该技术利用气相色谱的分离能力让混合物中的组分分离,并用质谱鉴定分离出来的组分(定性分析)及精确的量(定量分析).具体分析分析方法为:柱子:DB-5MS (Thermo1Scientific,30m0.25mm0.25μm),进样口250 ℃,载体为高纯氦气,流量为1.5mL/min,分流比为10.升温程序:120℃保持2min,以10℃/min升至300 ℃保持3min.离子源220℃,接口280℃,选择离子扫描,定量离子均为143.

在总离子流图(TIC)中,不同的保留时间对应的峰位表示不同物质,峰面积表示对应物质的含量.各种信号分子的峰位对应的保留时间如表1所示.

表2 不同峰位表示的荧光有机物

1.3.2 三维荧光光谱分析(3D-EEM)胞外聚合物 3D-EEM检测采用荧光光谱仪(F-700,日本日立),设置激发波长(x)为200~400nm,每次增加5nm,发射波长(m)为240~600nm,波长增幅间隔2nm,激发光和发射光的狭缝宽度为5nm,扫描速度为1200nm/ min. 同等条件下,以超纯水为空样品,消除拉曼散射及背景噪音.利用EEM对EPS进行扫描,主要产生5个荧光生色团:芳香族蛋白质Ⅰ类(Aromatic ProteinⅠ),芳香族蛋白质Ⅱ类(Aromatic ProteinⅡ),富里酸类(Fulvic acid-like),可溶性微生物产物类(Soluble microbial by-product-like),腐殖酸类(Humic acid- like),其特征峰值分别分布在区域Ⅰ,Ⅱ,Ⅲ,Ⅳ,Ⅴ.如表2.三维荧光图谱中,不同的荧光峰位表示不同的物质,荧光强度越强,荧光物质的浓度越高.

1.3.3 其他分析方法 采用蒽酮-H2SO4法和Bradford法测定EPS中多糖和蛋白质的含量,DNA采用二苯胺法进行测定(标准物质为2-脱氧-D-核糖),其中EPS总量为PS,PN与DNA之和[20], NH4+-N浓度采用纳氏试剂光度法,NO2--N采用N-(1-萘基)-乙二胺光度法,NO3--N采用麝香草酚光度法.VSS和SS的测定采用标准方法[21].

2 结果与分析

2.1 3种EPS对厌氧氨氧化颗粒污泥活性的影响

氨氮去除速率能直接反映厌氧氨氧化的反应速率,因此对厌氧氨氧化颗粒污泥的氨氮去除速率进行分析,结果如图1a所示.对照组的氨氮去除速率从64.86mg/(L·d)增加至71.14mg/(L·d),增加了9.6%. IN-EPS组的氨氮去除速率从72.57mg/(L·d)增加至84.38mg/(L·d),增加16.28%. LB-EPS组的氨氮去除速率从69.90mg/(L·d)增加至83.95mg/(L·d),增加了20.10%. TB-EPS组的氨氮去除速率从70.11mg/(L·d)增加到了90.37mg/(L·d),增加了28.89%.添加了EPS的实验组,氨氮去除速率的增幅明显高于对照组.这说明3种EPS均可以提高厌氧氨氧化颗粒污泥的活性.只添加EPS和合成废水的实验组,氨氮去除速率基本为0mg/(L·d),因此可以排除EPS对氨氮的降解作用.

本研究同时分析了外源投加EPS对厌氧氨氧化颗粒污泥活性的影响.结果如图1b所示.对照组的比厌氧氨氧化速率(SAA)值从37.25mg NH4+-N/ (gVSS·d)增加至44.04mg NH4+-N/(gVSS·d),SAA值增加了18.22%. TB-EPS组的SAA值从41.79mg NH4+-N/(gVSS·d)增加至54.22mg NH4+-N/(gVSS·d), SAA值增加了29.75%,是对照组的1.63倍.IN-EPS组和LB-EPS组的SAA值的增幅均大于对照组,其中IN-EPS组的SAA值增加了18.42%,LB-EPS组的SAA值增加了21.84%,这说明外源添加3种EPS均可以提高厌氧氨氧化细菌的活性.

本研究同时发现外源投加EPS会影响厌氧氨氧化菌的生长速率(图1c).对照组的细菌生长速率为0.0021h-1.而EPS组的细菌生长速率均高于对照组,其中,IN-EPS组的细菌生长速率从0.0021h-1增加至0.0025h-1,增加了18.25%.LB-EPS组的细菌生长速率从0.0020h-1增加至0.0024h-1,增加了21%. TB-EPS组的细菌生长速率从0.0023h-1增加至0.0026h-1,增加了16.3%.这说明EPS的投加将会提高厌氧氨氧化细菌的生长速率,进而提高厌氧氨氧化菌的氮去除速率.

郭静[22]研究发现,在厌氧氨氧化反应器的启动过程中,厌氧氨氧化菌的活性和EPS的分泌量呈正相关,但关于EPS对细菌活性的影响,没有做进一步的分析.本研究通过外源投加的形式,证明了EPS可以提高厌氧氨氧化细菌的活性和生长速率,这说明EPS不仅对于厌氧氨氧化污泥的絮凝能力和表面性质有着重要影响,同时对厌氧氨氧化细菌的活性和生长速率也有着重要的作用.

2.2 EPS的组成分析

如图2所示,IN-EPS的浓度为220.19mg/L,其中PN的浓度为114.66mg/L,占EPS总量的52.07%,PS的浓度99.71mg/L,占EPS总量的45.28%,DNA的浓度最低,只有5.82mg/L. TB-EPS的浓度为254.27mg/L,其中PN的浓度为158.53mg/L,占EPS总量的62.35%,PS的浓度为89.19mg/L,占EPS总量的35.08%. LB-EPS在3种EPS中的浓度最低,为92.48mg/L,其中PN的浓度为57.01mg/L,占EPS总量的61.66%,PS的浓度为35.47mg/L,占EPS总量的38.34%.在3种EPS中,PN所占的比例最高,其次是多糖和DNA.

三维荧光光谱分析结果如图3,IN-EPS在Ⅰ区,Ⅱ区,Ⅳ区出现了荧光强度,在Ⅰ区和Ⅳ区出现了荧光峰位,这说明IN-EPS主要由芳香族蛋白质Ⅱ类和可溶性微生物产物组成. LB-EPS和TB-EPS荧光强度的范围较窄,荧光强度分布情况相似,荧光强度主要集中在Ⅰ区和Ⅳ区,分别代表芳香族蛋白质Ⅰ类和可溶性微生物产物.以上结果表明,厌氧氨氧化污泥的3种EPS主要由芳香族蛋白质和可溶性微生物产物组成. PN在各类EPS中所占的比例最高,这与Bradford法的测试结果相同,大量的PN可能来源于细胞死亡后的释放,细胞的分泌以及EPS中含有大量胞外酶所致[23].

图2 3种EPS中PN,PS和DNA的含量

Guo等[5]探究了5种污泥(活性污泥,硝化污泥,反硝化污泥,高氯酸盐还原污泥, S-驱动型高氯酸盐还原污泥)的EPS对厌氧氨氧化细菌活性的影响.结果发现反硝化污泥和高氯酸盐还原污泥可以提高厌氧氨氧化菌的活性.对5种污泥的EPS的成分分析后发现,反硝化污泥和高氯酸盐污泥的EPS的PN含量在100mg/L以上,分别占EPS浓度的56%和74%,这与本研究的结果相似.而S-驱动型高氯酸盐还原污泥,活性污泥和硝化污泥中PN的含量分别为0.31mg/L,0.68mg/L和47.14mg/L,只占到EPS总量的0.72%,1%和40%. Guo等[5]由此推测EPS中的PN起到了提高厌氧氨氧化细菌活性的作用,但是仍需要进一步的研究证明.本研究将EPS中的AHLs进行提取之后,将EPS重新投加到厌氧氨氧化颗粒污泥中,结果发现3种EPS均不能提高厌氧氨氧化细菌的活性,而外源投加AHLs可以提高厌氧氨氧化菌的活性,因此推测AHLs是EPS中提高厌氧氨氧化菌活性的物质.具体分析见2.3.AHLs类信号分子可以提高厌氧氨氧化菌的活性[24],本研究利用GC-MS法,对厌氧氨氧化污泥的3种EPS(IN-EPS,LB-EPS, TB-EPS)中可能存在的AHLs的种类和浓度进行了分析,以期对各类EPS影响厌氧氨氧化菌活性的机理做进一步的解释.

2.3 EPS中AHLs类信号分子的分析

目前对于厌氧氨氧化污泥EPS成分的分析主要集中于PN,PS和DNA的含量.关于EPS中AHLs的种类及浓度的报道仍然较少.本次研究检测了EPS中的AHLs的种类和浓度,并从厌氧氨氧化菌以及上清液中提取AHLs进行对比验证.

通过GC-MS法对厌氧氨氧化菌,EPS和上清液中的C4-HSL,C6-HSL,C8-HSL,C10-HSL和C12- HSL进行检测.检测结果如图4所示.IN-EPS,LB- EPS和TB-EPS中检测到了3种AHLs类信号分子.分别为C4-HSL,C6-HSL和C10-HSL.其中C6-HSL的浓度最高,在IN-EPS,LB-EPS和TB-EPS中的浓度分别达到了167μg/L,78μg/L和122μg/L.其次是C10-HSL,在3种EPS中的浓度分别为37.85μg/L, 27.29μg/L和28.6μg/L.C4-HSL在3种EPS中的浓度最低,分别为17.5μg/L,18.05μg/L和50.45μg/L.以上结果证明了EPS中存在AHLs的猜想.为了探究AHLs类信号分子在EPS中的作用,将提取完AHLs的3种EPS重新投加到厌氧氨氧化颗粒污泥中.同时为了进一步验证AHLs对厌氧氨氧化细菌活性的影响,分别向厌氧氨氧化颗粒污泥中投加C4-HSL, C6-HSL和C10-HSL,观察厌氧氨氧化颗粒污泥活性的变化.

图4 厌氧氨氧化菌,EPS和上清液中信号分子的浓度

采用GC-MS法对提取过AHLs的EPS进行检测,结果如图5所示,不同的保留时间对应不同种类的AHLs, 不同种类的EPS在相应的保留时间处检测不到波峰,这说明EPS中已经不存在AHLs. 同时,三维荧光光谱法分析(图6)发现,提取AHLs后,EPS的其他成分并未发生明显变化,仍以芳香族蛋白质和微生物产物为主.

将C4-HSL,C6-HSL,C10-HSL和提取完AHLs的3种EPS投加到厌氧氨氧化颗粒污泥中,结果如表3所示.对照组的SAA值从37.75mg NH4+-N/ (gVSS·d)升高到了44.04mg NH4+-N/ (gVSS·d),升高了16.66%.提取完AHLs的IN-EPS组,LB-EPS组和TB-EPS组的SAA值分别升高了16.60%,13.33%和17.17%,与对照组相比,SAA值基本没有提升.

这说明在没有AHLs的情况下,EPS中的其他成分并不能提高厌氧氨氧化菌的活性.为了进一步验证AHLs对厌氧氨氧化细菌活性的作用,向厌氧氨氧化颗粒污泥中添加AHLs类信号分子,结果如表3所示,C4-HSL组和C6-HSL组的SAA值分别提升了20.38%和22.50%,分别是对照组的1.62倍和1.51倍.这说明C4-HSL和C6-HSL是EPS中提升厌氧氨氧化菌活性的重要物质,Liu等[5]发现外源投加C4-HSL和C6-HSL可以提高厌氧氨氧化菌的氮去除速率,这与本研究的发现一致.而添加C10-HSL的实验组的SAA值仅提升了15.69%,与对照组相比,SAA值没有提升.近来的研究[16]也发现,并不是所有的AHLs类信号分子都可以提升厌氧氨氧化菌的活性,Zhang等[24]研究发现,外源投加C12-HSL并不能提高厌氧氨氧化菌的活性.本研究发现外源投加C10-HSL不能使厌氧氨氧化菌的活性升高.

图5 EPS中AHLs的浓度(提取完AHLs后)

本研究同时分析了AHLs对生长速率的影响.结果发现,提取完AHLs的3种EPS和C10-HSL均不能提高厌氧氨氧化菌的生长速率.

而C4-HSL组和C6-HSL组的厌氧氨氧化菌的生长速率分别增长了23.81%和19.05%.Tang等[16]研究发现,C6-HSL可以提高厌氧氨氧化菌的生长速率,从而提高其氮去除表现,这与本研究的结果一致.另外本研究同时发现C4-HSL可以提高厌氧氨氧化菌的活性和生长速率.IN-EPS,LB-EPS和TB-EPS中均可检测出C4-HSL和C6-HSL, 正是因为C4-HSL和C6-HSL的存在,外源投加这3种EPS可以提高厌氧氨氧化菌的生长速率和细菌活性.

对厌氧氨氧化菌以及上清液中的AHLs进行检测发现.厌氧氨氧化菌中的C4-HSL,C6-HSL,C8- HSL, C10-HSL和C12-HSL的浓度分别为21.18μg/ L,2463.9μg/L,19.14μg/L,51.16μg/L,34.88μg/L.而上清液中只检测出了C4-HSL和C6-HSL两种信号分子,浓度分别为11.4μg/L和29.78μg/L. C4-HSL和C6-HSL在厌氧氨氧化菌,EPS和上清液中的浓度较高,而2.3中已经证明外源投加C4-HSL和C6-HSL可以提高厌氧氨氧化菌的活性,因此推测C4-HSL和C6-HSL是提高厌氧氨氧化细菌活性的重要信号分子,其他信号分子对厌氧氨氧化细菌的作用仍需要进一步的研究.AHLs的浓度在厌氧氨氧化菌,EPS和上清液中逐渐减少,这是因为AHLs在EPS和上清液中的传质能力和稳定性不同[16].由于群体感应现象的发生与AHLs的浓度有关,因此对于厌氧氨氧化菌而言,被EPS包裹的生物聚集体内部群体感应现象更易发生.而上清液中的AHLs浓度较低,生物聚集体之间的群体感应现象会因此减弱.

表2 EPS(无AHLs)和AHLs对厌氧氨氧化菌活性和生长速率的影响

3 结论

3.1 外源投加IN-EPS,LB-EPS,TB-EPS可以提高厌氧氨氧化菌的生长速率和细菌活性,从而提高厌氧氨氧化菌的氮去除速率.添加IN-EPS,LB-EPS和TB-EPS可将厌氧氨氧化菌生长速率分别增加18.25%,21%,16.3%.将厌氧氨氧化颗粒污泥的氨氮去除速率分别增加6.68%,10.5%和19.29%.

3.2 AHLs是提升厌氧氨氧化活性的重要物质.将提取完AHLs的EPS重新投加至厌氧氨氧化颗粒污泥中,厌氧氨氧化颗粒污泥的活性并没有提升.

3.3 外源投加C4-HSL,C6-HSL和C10-HSL到厌氧氨氧化颗粒污泥中,结果发现只有C4-HS和C6-HSL可以提高厌氧氨氧化菌的生长速率和细菌活性,这是EPS可以提高厌氧氨氧化菌活性的原因.

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Effect of extracellular polymers and signal molecules on the activity of ANAMMOX sludge.

ZHANG Ya-chao1, ZHANG Jing1, HOU Ai-yue2, ZHOU Rong-xuan1, LIANG Dong-bo1, ZHANG Kai1, LIU Yang1, LI Jun1*

(1.College of Architecture and Civil Engineering, Beijing University of Technology, Beijing 100124, China；2.CAUPD Beijing Planning & Design Consultants Co., Beijing 100825, China)., 2019,39(10)：4133~4140

In order to investigate the effect of extracellular polymers (EPS) on the activity of anaerobic ammonium oxidation (ANAMMOX) granular sludge, a certain concentration (30mg/L) of integral extracellular polymers (IN-EPS), loosely bound extracellular polymers (LB-EPS) and tightly bound extracellular polymers (TB-EPS) were added to ANAMMOX granular sludge, respectively. The results indicated that all of the aforementioned EPS could improve the activity of ANAMMOX granular sludge. With regard to the test group including IN-EPS, LB-EPS or TB-EPS, the ammonia nitrogen removal rate of ANAMMOX granular sludge had an increase of 6.68%, 10.5% and 19.29% respectively, while the growth rate of ANAMMOX bacteria increased by 18.25%, 21% and 16.3% respectively. The compositions of three EPSs were basically identical, which is mainly consisted of aromatic proteins and soluble microbial products through three-dimensional fluorescence spectroscopy. And three kinds of acylated homoserine lactones (AHLs) signal molecules in EPSs: C4-HSL, C6-HSL and C10-HSL were found. Additionally, we discovered that C4-HSL and C6-HSL could improve the activity and growth rate of ANAMMOX particles through adding the above EPSs to ANAMMOX granular sludge. This interpreted why EPS could improve the activity of ANAMMOX granular sludge.

anaerobic ammonium oxidation (ANAMMOX)；extracellular polymers (EPS)；acylated homoserine lactones (AHLs)

X703

A

1000-6923(2019)10-4133-08

张亚超(1993-),男,河北邢台人,北京工业大学硕士研究生,主要从事厌氧氨氧化脱氮研究.

2019-03-22

水体污染控制与治理科技重大专项(2017ZX07103-001)

* 责任作者, 教授, jglijun@bjut.edu.cn