普通野生稻绿色组织特异表达启动子的克隆与鉴定

赵志强薛满德黄珂张静文龙艳裴新梧袁潜华

（1. 海南大学热带农林学院，海口 570228；2. 中国农业科学院生物技术研究所，北京 100081）

普通野生稻绿色组织特异表达启动子的克隆与鉴定

赵志强1薛满德2黄珂1张静文2龙艳2裴新梧2袁潜华1

（1. 海南大学热带农林学院，海口 570228；2. 中国农业科学院生物技术研究所，北京 100081）

绿色组织特异表达启动子可调控外源基因只在受体作物的绿色组织中定点、高效地表达。以普通野生稻为实验材料，克隆了绿色组织特异表达启动子OrGSP，构建OrGSP和GUS基因融合的表达载体，转入拟南芥中鉴定功能。启动子OrGSP长度为825 bp，含有基本的转录起始元件TATA-box和CAAT-box，以及光响应元件TCCC-motif、Sp1、G-box、I-box、GA-motif和as-2-box等。转基因拟南芥GUS组织化学染色结果表明，启动子OrGSP调控GUS基因只在绿色组织中特异表达。GUS活性测定结果显示，叶和茎中的GUS活性比根中明显提高。普通野生稻中克隆的启动子OrGSP为绿色组织特异表达启动子，可为作物分子育种提供新的调控元件。

启动子；绿色组织特异表达；普通野生稻

启动子是基因的重要组成部分，它就像“开关”，调节着下游基因的活性。启动子是指位于结构基因5′端上游的一段DNA序列，它与 RNA 聚合酶作用后开始基因表达的转录过程。RNA聚合酶只有和启动子结合才可以开始基因的转录过程，启动子是基因转录调控重要的顺式作用元件［1］。

绿色组织在植物的生长发育过程中起着重要的作用。光合作用是植物的重要生理过程，植物的叶片是光合作用的场所，植物利用叶片中的叶绿素等光合色素，在可见光的照射下，将二氧化碳和水转化为有机物，并释放出氧气。蒸腾作用也发生在植物的叶片组织，蒸腾作用促进植物从根系吸收水分和矿质元素，同时降低植物叶片的叶面温度。植物的茎是植物体内物质运输的主要通道，植物叶片制造的有机物通过茎输送到植物体的各部分，同时根部吸收的水分和无机物也通过茎运输到植物的不同部位。植物的绿色组织也是病虫侵害的主要部位。绿色组织特异表达启动子的克隆，能够使外源基因在受体作物中定点、高效地表达［2］。

普通野生稻（Oryza rufipogon）是亚洲栽培稻（Oryza sativa）的近缘祖先种，具有丰富的遗传多样性，是栽培稻改良的重要种质资源［3］。本研究从普通野生稻基因组中克隆了绿色组织特异表达启动子OrGSP，并构建表达载体转化拟南芥验证其功能，为作物分子育种提供了新的调控元件。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 植物材料 普通野生稻（由本实验室保存），拟南芥哥伦比亚生态型。

1.1.2 载体与菌株 pBinGlyRed3-35S-GUS载体（由本实验室保存），pEASY-T1 Simple克隆载体（Transgen Biotech），农杆菌EHA105，Trans-T1 Phage Resistan化学感受多态细胞（Trans Biotech）。

1.2 方法

1.2.1 OrGSG基因表达模式的验证 在本实验室前期构建的普通野生稻cDNA文库中筛选到1个FPKM值在苗期叶中远大于根的基因（苗期叶：3682.44033；苗期根：2.214723825），命名为OrGSG。分别提取普通野生稻苗期的根、叶和成熟期的根、茎、叶的总RNA，反转录成cDNA。以cDNA文库中预测的OrGSG基因的CDS序列为模板，设计引物（FP：5′-TTCACCAGCTTCACT CGCC-3′，RP：5′-ATCGAAACCGAAGTCTCCC-3′）。通过RTPCR，验证OrGSG基因在苗期的根、叶和成熟期的根、茎、叶中的表达模式，选用OsActin（No.AB047313）作为内参基因（FP：5′-TTGTGTTGGACTCTGGTGATG-3′，RP：5′-AAGCTCGTAGCTCTTCTCCAC-3′），设置26、28和30循环数梯度。

1.2.2 OrGSG基因启动子的克隆及序列分析 将 OrGSG基因的CDS序列在NCBI（https://www. ncbi. nlm.nih.gov/）数据库进行Blast比对，得到OrGSG基因的CDS序列比对上的粳稻染色体以及基因。OrGSG基因的启动子命名为OrGSP。比对上的完整基因ATG起始密码子A碱基下游部分序列和上游部分序列为克隆OrGSP启动子的模板，OrGSP启动子扩增引物（FP：5′-ATCTCAT GAAGTTTAGCTTGCCG-3′，RP：5′-GAAGACGATGAAATAGATGGGTG-3′）。 使用 PlantCARE在 线 软 件（http://bioinformatics.psb. ugent.be/we）分析启动子的特征元件。

1.2.3 OrGSP-GUS表达载体的构建 用加接头的引 物（FP：5′-ACGCGTAAGGGGATCC ATCTCAT GAAGTTTAGCTTGCCG-3′，RP：5′-GATCTACCATG AATTCGAAGACGATGAAATAGATGGGTG-3′）从普通野生稻基因组DNA中克隆带接头序列的OrGSP启动子，其中GGATCC为Bam HI酶切位点，GAATTC为EcoRI酶切位点。将OrGSP启动子和pBinGly-Red3-35S-GUS表达载体骨架进行重组，得到OrGSPGUS融合的pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体。

1.2.4 拟南芥遗传转化及分子鉴定 利用冻融法将pBinGlyRed3-35S-GUS和 pBinGlyRed3 -OrGSP-GUS表达载体转化到根癌农杆菌EHA105中，其中含35S启动子的pBinGlyRed3-35S-GUS表达载体作为对照。将这两种表达载体通过农杆菌介导的蘸花法转化拟南芥。pBinGlyRed3-35S -GUS和pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体都含有红光标记基因，分别转化拟南芥后收获成熟的T0代种子，在绿光灯下，用红色眼镜挑选种子，各挑选显示红色的转基因T0代种子20粒，记为20个株系。当T1代幼苗一个月后取叶片提取基因组DNA，在启动子区域和GUS基因编码区设计引物进行PCR扩增验证。其中转pBinGlyRed3-35S-GUS表达载体T1代幼苗PCR鉴定引 物 为（FP：5′-gtaagg gatgacgcacaatcc-3′，RP：5′-ggtcgtgtagattttcaccgg-3′）， 转 pBinGlyRed3- OrGSP -GUS表达载体T1代幼苗PCR鉴定引物为（FP：5′-cagtacggatgcaatgtgtgt-3′，RP：5′-cag cttgctttcgtaccactt-3′）。

1.2.5 转基因拟南芥的GUS组织化学分析 转基因阳性拟南芥T1代种子取一部分在1/2MS培养基上培养。分别取4 d、7 d、14 d、21 d的拟南芥进行GUS染色分析，GUS染色方法见Zhou等［4］；转基因阳性拟南芥T1代种子再取一部分在培养基质（珍珠岩：蛭石：拟南芥种植专用土体积比1∶1∶2）中培养，待其开花后，取其根、茎、叶、花、荚果进行GUS染色分析。

1.2.6 转基因拟南芥的GUS活性分析 选5个株系的T1代转基因阳性拟南芥种子，在培养基质中培养。一个月后分别取苗期的根和叶，待拟南芥开花后取成熟期的根、茎和叶，进行GUS活性检测，GUS活性检测方法见文献［5］。

2 结果

2.1 OrGSG基因表达模式验证与序列分析

通过RT-PCR验证OrGSG基因在不同发育时期的根、茎、叶的表达模式，结果（图1）表明该基因在幼苗的叶中表达，在根中不表达，在成熟期的茎和叶中表达，在根中不表达。

图1 OrGSG基因表达模式的循环数梯度RT-PCR验证

OrGSG基因的CDS序列99%比对到粳稻9号染色体26810号基因上的16288855到16289372位置。26810号基因长度为2 947 bp，可以编码265个氨基酸，预测功能为可以合成捕光叶绿素a/b结合蛋白。

图2 启动子OrGSP的PCR产物电泳结果

2.2 启动子OrGSP的克隆与序列分析

以普通野生稻基因组 DNA 为模板，扩增OrGSG基因的启动子序列，扩增出 1 条约 825 bp的条带（图2），与预期大小一致。

启动子OrGSP长度为825 bp，与比对上的栽培稻序列相似性为100%。对启动子OrGSP序列的顺式作用元件分析，结果（表1）显示，该启动子的正链以及互补链上存在着多种顺式作用元件，包括决定着转录的起始和方向的核心启动子元件TATA-box和在调控基因转录效率中发挥着重要作用的基本顺式作用元件CAAT-box；6种光响应元件，如TCCC-motif、Sp1、G-box、I-box、GA-motif和 as-2-box，其中as-2-box还是茎特异表达元件；2种激素诱导元件，如水杨酸诱导元件TCA-element和赤霉素诱导元件GARE-motif；1种胁迫防御元件TC-rich repeats。

2.3 pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的构建

将OrGSP启动子替换pBinGlyRed3-35S-GUS表达载体上的35S启动子，构建绿色组织特异表达的表达载体pBinGlyRed3-OrGSP-GUS（图3，图4）。

2.4 转基因拟南芥T1代幼苗PCR检测

转 pBinGlyRed3-35S-GUS和 pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的拟南芥T0代红色种子各取20粒，在培养基质中培养一个月后，取T1代幼苗取叶片进行PCR鉴定。从图5和图6可知，转pBinGlyRed3-35S-GUS表达载体的拟南芥T1代有13个株系（泳道1、2、3、4、5、7、8、9、11、16、18、19和20）扩增出大小约为850 bp的片段，为阳性株系；转pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的拟南芥T1代有15个株系（泳道1、2、3、4、5、6、7、8、11、12、13、14、15、17、19）扩增出大小约为850 bp的片段，为阳性株系。

2.5 转基因拟南芥的GUS染色分析

分别对转pBinGlyRed3-35S-GUS和pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的阳性拟南芥T2代株系进行GUS染色，染色材料为：4 d、7 d、14 d和21 d时的幼苗整株和成熟期的拟南芥根、茎、叶、花和果实。结果（图7，图8）显示：幼苗期时，转pBinGlyRed3-35S-GUS表达载体的拟南芥植株在4 d、

7 d、14 d和21 d时所有组织中均可以染出颜色，转pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的拟南芥植株在4 d、7 d、14 d和21 d时的根部染不出颜色，其余组织中可以染出颜色；成熟期时，转pBinGlyRed3-35S-GUS表达载体的拟南芥的根、茎、叶、花和角果中都能染出颜色，转pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的拟南芥的根、花和角果染不出颜色，茎和叶中可以染出颜色。这就表明OrGSP启动子在幼苗期和成熟期时都可以调控GUS基因在绿色组织中表达，OrGSP启动子为绿色组织特异表达启动子，OrGSP调控的基因OrGSG为绿色组织特异表达基因。2.6 转基因拟南芥GUS活性检测

表1 启动子OrGSP顺式作用元件预测

图3 pBinGlyRed3-35S-GUS表达载体图谱

图4 pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体图谱

图5 转pBinGlyRed3-35S-GUS拟南芥T1代幼苗PCR检测

图6 转pBinGlyRed3-OrGSP-GUS拟南芥T1代幼苗PCR检测

图7 幼苗期转基因阳性拟南芥GUS染色

图8 成熟期转基因阳性拟南芥各组织GUS染色

转pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的T2代阳性拟南芥苗期叶中的GUS活性远比根中高，经计算，叶中活性约为根中活性的256倍；在成熟期时，转pBinGlyRed3-OrGSP-GUS表达载体的T2代阳性拟南芥茎和叶中的GUS活性远远比根中高，经计算，茎中活性约为根中的310倍，叶中活性约为根中的325倍（图9）。

图9 启动子OrGSP在转基因阳性拟南芥不同组织中的GUS活性检测

3 讨论

植物绿色组织特异表达启动子的克隆，可以为植物基因工程提供调控元件，使外源基因能在受体作物中定点、高效表达。近年来，在水稻［6-9］、棉花［10］、马铃薯［11］、裂叶牵牛［12］、拟南芥［13］、玉米［14］、番茄［15］等多种植物中克隆出绿色组织特异表达启动子。普通野生稻是亚洲栽培稻的祖先种，广泛分布于东南亚、南亚以及我国的南方地区，具有丰富的遗传多样性［16］，但对普通野生稻绿色组织特异表达启动子的研究还未见报道。

本研究从本实验室前期构建的普通野生稻cDNA文库中筛选到一个绿色组织特异表达基因OrGSG。该基因的CDS序列99%比对到粳稻9号染色体26810号基因上的16288855到16289372位置。26810号基因长度为2 947 bp，功能预测为可以合成捕光叶绿素a/b蛋白。捕光叶绿素a/b结合蛋白与光合色素所形成的色素蛋白复合体（LHC）是一类吸收、传递光能并引起光合作用的光反应的色素蛋白复合体。色素蛋白复合体（LHC）在维持叶绿体囊状结构薄膜结构，调节光系统I和光系统II之间激发能的分配以及适应不同环境等方面都起着重要的作用［17］。捕光叶绿素a/b结合蛋白基因的启动子之前报道为绿色组织特异表达启动子［18］，李为民等［19］从金华中棉中克隆得到捕光叶绿素a/b结合蛋白基因Gacab转录起始位点上游1 009 bp的启动子GacabP，构建GacabP和GUS基因融合的表达载体转化烟草，GUS组织化学分析发现，GacabP调控GUS基因在转基因阳性烟草的叶片表达，表明GacabP是一个叶特异表达启动子。

本研究克隆了普通野生稻绿色组织特异表达启动子OrGSP，长度为825 bp，其正链及互补链上有多种顺式作用元件，除含有决定转录的起始和方向的核心启动子元件TATA-box和在调控基因转录效率中发挥着重要作用的基本顺式作用元件CAAT-box外，还存在一些与光反应、激素诱导和胁迫防御相关的顺式作用元件。转OrGSP和GUS基因融合的表达载体的T2代阳性拟南芥GUS组织化学分析表明OrGSP为绿色组织特异表达启动子。转基因拟南芥植株的GUS活性检测结果显示，在苗期和成熟期时，绿色组织中的GUS活性都比根中明显提高。

植物的绿色组织是病虫侵害的主要部位，稻瘟病、纹枯病和白叶枯病主要发生在水稻的绿色组织中［20-22］。Cai等［8］将水稻绿色组织特异表达启动子PD540与cry1AC基因融合的表达载体转化水稻，结果显示，转基因阳性水稻不仅在抗稻纵卷叶螟上有着明显的优势，而且水稻胚乳中检测不到cry1AC的表达，说明该启动子在转基因抗虫水稻的培育和和转基因生物安全方面有着重要的应用价值。Yang等［23］利用合成型绿色组织特异表达启动子pGreen和合成型抗虫基因融合表达载体转化水稻，结果表明，转基因阳性水稻对水稻二化螟和棉铃虫有着良好的抗性。

4 结论

本研究克隆了普通野生稻的启动子OrGSP，在拟南芥中验证了功能，该启动子为绿色组织特异表达启动子。

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（责任编辑 李楠）

Cloning and Functional Analysis of Green Tissue-specific Expression Promoter of Common Wild Rice（Oryza rufipogon Griff.）

ZHAO Zhi-qiang1XUE Man-de2HUANG Ke1ZHANG Jing-wen2LONG Yan2PEI Xin-wu2YUAN Qian-hua1
（1. College of Tropical Agriculture and Forestry，Hainan University，Haikou 570228；2. Institute of Biotechnology，Chinese Academy of Agricultural Sciences，Beijing 100081）

Green tissue-specific expression promoter，which makes the exogenous gene express efficiently in green tissues of receptor crop. The green tissue-specific promoter OrGSP was cloned from Oryza rufipogon，and the fusion vector of OrGSP and GUS gene was constructed and transferred into Arabidopsis thaliana in order to identify the function of the promoter. Bioinformatics analysis shows that the length of 825 bp of OrGSP，contains the basic transcription initiation elements TATA-box and CAAT-box，and light responsive elements TCCC-motif，Sp1，G-box，I-box，GA-motif and as-2-box，etc. The GUS histochemical staining of transgenic Arabidopsis thaliana shows that OrGSP regulates the expression of GUS gene only in green tissue，and the GUS activity in leaf and stem is significantly higher than in roots. The promoter of Oryza rufipogon，OrGSP，is a green tissue-specific promoter and the results can provide new regulatory elements for crop molecular breeding.

promoter；green tissue-specific expression；common wild rice

10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2017-0443

2017-01-16

国家转基因重大专项（2016ZX08011-001），国家自然科学基金项目（31560188）

赵志强，男，硕士研究生，研究方向：植物生物技术与种质创新；E-mail：zzq19900317@126.com

裴新梧，研究员，研究方向：植物基因工程；E-mail：peixw@mail.caas.net.cn

袁潜华，研究员，研究方向：作物栽培、农业生物技术；E-mail：qhyuan@163.com