甘肃高山细毛羊母羊妊娠后期补饲效果研究

张昌吉，张勇，郭武君，张利平，滚双宝

(甘肃农业大学动物科学技术学院, 甘肃 兰州 730070)



甘肃高山细毛羊母羊妊娠后期补饲效果研究

张昌吉，张勇，郭武君，张利平，滚双宝*

(甘肃农业大学动物科学技术学院, 甘肃 兰州 730070)

根据甘肃高山细毛羊母羊妊娠后期营养缺乏状况，配制出中等能量中等蛋白质补饲料 Ⅰ、低能量高蛋白质补饲料 Ⅱ和高能量低蛋白质补饲料 Ⅲ 3种补饲料。选择健康、体重相近的妊娠后期母羊60只，随机分为A、B、C、D 4组，每组15只，每个重复1只羊，A、B、C组为试验组，分别补饲饲料Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ；D组为对照组，按牧民传统方式饲养，试验期共68 d。试验结果表明，A、B、C补饲组母羊平均日增重分别为102、109和114 g/d；A、B、C补饲组羔羊初生重分别为4.09、3.91和 4.40 kg，均显著高于对照组。补饲料Ⅲ对试验羊血清葡萄糖(glucose)、甘油三酯 (triglyceride)和尿素氮(blood urea nitrogen)浓度有显著影响(P<0.05)；补饲料Ⅱ对试验羊血清总蛋白(total protein)、谷草转氨酶(aspartate transaminase)浓度有显著影响。补饲组试羊瘤胃液总氮、瘤胃液蛋白氮含量显著高于对照组(P<0.05)且A组显著高于其他各组，B组瘤胃液尿素氮浓度显著高于其他各组(P<0.05)。试验组瘤胃液挥发性脂肪酸(volatile fatty acid)浓度和丙酸摩尔比显著高于对照组(P<0.05)；试验组瘤胃液中乙酸/丙酸显著低于对照组(P<0.05)。3种补饲料对试验羊瘤胃液pH和瘤胃液氨态氮影响均不显著(P>0.05)。

甘肃高山细毛羊；妊娠后期；补饲；生产性能；血清生化指标;瘤胃内环境

甘肃高山细毛羊是我国培育成的第一个高原型细毛羊品种[1]，主要分布在祁连山高寒牧区。肃南县是甘肃高山细毛羊的主产区，2012年存栏68.99万只[2]。产区海拔高、枯草期长，加之草场退化，草地产草量不断下降[3]。季节性繁殖的甘肃高山细毛羊，妊娠期从放牧地获得的营养物质极为有限，不足部分必须通过额外的营养物质加以补充。研究表明，胎儿生长与发育的90%是在妊娠后两个月完成的，这个时间段母羊营养需求非常旺盛[4]，所以本研究在甘肃高山细毛羊妊娠后两个月进行补饲。根据甘肃高山细毛羊母羊冬季采食量的测定结果和妊娠期营养需要量的研究结果，妊娠母羊冬季干物质缺乏量为0.73 kg/d，代谢能缺乏量为7.78 MJ/d，粗蛋白质缺乏量为106.92 g/d，钙、磷和食盐缺乏量分别为5.83～6.95 g/d、3.90～4.79 g/d和5.39～13.02 g/d，缺乏部分必须通过适当的方式加以补充。

1 材料与方法

1.1 甘肃高山细毛羊补饲料配制

利用肃南牧区周边容易购得的原料，设计出补饲料配方Ⅰ。在补饲料Ⅰ的基础上，适当调整能量和蛋白质水平，配制成低能高蛋白质补饲料Ⅱ和高能低蛋白质补饲料Ⅲ，3种补饲料配方及营养水平如表1所示。补饲料精料压制成颗粒，颗粒直径6 mm，长度10～12 mm，由张掖龙腾饲料有限公司代加工；苜蓿干草铡短后按量饲喂。

1.2 试验设计、时间与地点

选择健康、体重相近的经产妊娠后期母羊60只，编号并随机分为A、B、C、D 4组，每组15只,每个重复1只羊。A、B、C组为试验组，D组为对照组。于2015年1月10日至2015年3月18日，在甘肃省肃南县康乐乡典型牧户家进行为期68 d放牧补饲试验。

1.3 试验羊饲养管理

A、B和C组试验羊分别饲喂补饲料Ⅰ、补饲料Ⅱ和补饲料Ⅲ，补饲量按秋季放牧采食量扣除冬季采食量后的不足部分，即0.73 kg DM/d(风干样约0.84 kg/d)；D组随其他大群母羊由牧户按传统的方式自行饲喂。每天早晨9:00至下午17:00放牧并自由饮水，于早晨出牧前和下午归牧后试验组分圈补饲。为了使试验羊适应补饲料，按循序渐进的方式逐渐增加补饲量， 即试验开始的第1～2天， 按照每天标准补饲量的1/3补饲；第3～4天按照标准补饲量的1/2～2/3补饲；第5～61天按标准量补饲，早晨出牧前和下午归牧后等量补饲。补饲标准按表2所示进行。

表1 甘肃高山细毛羊妊娠母羊补饲料 组成及营养水平(风干基础)Table 1 Supplement feed composition and nutritive levels of Gansu Alpine Fine-wool sheep ewes (dry basis)

表2 甘肃高山细毛羊妊娠母羊每日补饲量Table 2 The standard of supplement of Gansu Alpine Fine-wool sheep ewes g

1.4 样品采集

1.4.1 血液采集 试验中期(2015年2月10日)和试验末期(2015年3月10日)，分别从每组试验羊中随机挑取6只，于清晨饲喂前，用不抗凝的一次性真空采血管在颈静脉处采取血样50 mL，并由兰州长风医院血液检验科，采用全自动生化分析仪测定。

1.4.2 瘤胃液采集 试验结束当天晨饲2 h后，分别从每组试验羊中随机挑取6只，采用口腔导管法抽取瘤胃液50 mL，测定即时pH值并立即投入液氮罐带回实验室于-70 ℃保存待测瘤胃液代谢参数和挥发性脂肪酸(volatile fatty acid，VFA)，测定方法参照文献[5-8]。

1.5 测定指标

1.5.1 母羊体重和羔羊初生重 试验开始(2015年1月10日)和结束时(2015年3月18日)，对试验羊及对照组羊空腹称重并记录，分别记录各组羔羊初生重。

1.5.2 血清生化指标 试验中期(2015年2月10日)和试验末期(2015年3月10日)分别采集血液，测定血清生化指标，包括葡萄糖(glucose, GLU)、尿素氮(blood urea nitrogen, BUN)、胆固醇(cholesterol，CHO)、甘油三酯(triglyceride, TG)、总蛋白(total protein, TP)、白蛋白(albumin, ALB)、谷草转氨酶(aspartate transaminase, AST)和谷丙转氨酶(alanine aminotransferase, ALT)等，测定方法参照文献[5-8]。

1.6 数据分析

采用SPSS 19.0统计软件，对数据采用单因素方差分析，结果以平均值±标准误(mean±SE)表示。

2 结果与分析

2.1 补饲对妊娠母羊体重变化及羔羊初生重的影响

试验期间妊娠母羊日增重和羔羊初生重结果如表3所示。从表3可以看出，补饲试验开始前和补饲试验结束时，4组试羊的体重差异不显著，但试验结束时试验组羊的平均体重均高于对照组的。妊娠母羊日增重，B组(114 g/d)>C组(109 g/d)>A组(102 g/d)>D组(95 g/d)，试验B组母羊日增重显著高于A组和C组(P<0.05)，极显著高于D组(P<0.01)，A、C两组母羊日增重显著高于D组(P<0.05)，但A、C两组间差异不显著(P>0.05)。羔羊初生重，C组(4.40 kg)>A组(4.09 kg)>B组(3.91 kg)>D组(3.37 kg)，试验C组显著高于A组和B组(P<0.05)，A、B两组羔羊初生重显著高于D组(P<0.05)，但A、B两组间差异不显著(P>0.05)。

2.2 补饲对妊娠母羊血清生化指标的影响

妊娠母羊试验中期和末期的血清生化指标统计分析结果见表4。试验中期C组羊血清GLU显著高于其余3组(P<0.05)；试验末期，A、B两组显著高于D组，但A、B两组间差异不显著；C组显著高于A、B两组(P<0.05)。试验中期，4组试羊BUN差异不显著，试验末期A、B、C 3组均显著高于D组(P<0.05)，但3个试验组间无显著差异(P>0.05)。试验中期和末期，4组试羊血清CHO组间差异均不显著。试验中期，4组试羊血清TG含量组间差异不显著，试验末期C组显著高于A、B、D组(P<0.05)，但A、B、D组间差异不显著(P>0.05)。试验中期血清TP含量，A、B两组显著高于D组，A、B两组间差异不显著；试验末期B组显著高于A、C和D组，A、C组亦显著高于D组。血清AST含量，试验组显著高于对照组(P<0.05)，ALT含量，整个试验期各组组间均无显著差异(P>0.05)，但试验组有高于对照组的趋势。

表3 补饲对妊娠母羊日增重和羔羊初生重的影响Table 3 Effect of supplementary feeding on daily gain of Gansu Alpine Fine-Wool Sheep ewes and birth weight of lambs

注：同行不同字母代表差异显著(P<0.05)。下同。

Note: Different letters in a row indicate significant differences (P<0.05). The same below.

表4 补饲对妊娠羊血清生化指标的影响Table 4 Effect of supplementary feeding on serum biochemical indexes of Gansu Alpine Fine-wool sheep ewes

2.3 对瘤胃液代谢参数的影响

补饲对瘤胃液代谢参数的影响如表5所示，补饲对瘤胃液VFA的影响如表6所示。从表5可以看出，瘤胃液pH组间差异不显著(P>0.05)；瘤胃液总氮含量A组显著高于B组和C组(P<0.05)；瘤胃液氨态氮组间差异不显著(P>0.05)；瘤胃液尿素氮B组显著高于A组和C组(P<0.05)，A、C、D组间差异不显著(P>0.05)；瘤胃液蛋白氮，A组显著高于B、C、D组(P<0.05)，B、C、D 3组间差异不显著(P>0.05)。从表6可以看出，总VFA浓度各试验组显著高于对照组(P<0.05)；乙酸和丁酸摩尔比各组间差异不显著(P>0.05)；丙酸摩尔比A、B、C组显著高于对照组(P<0.05)，A、C两组间差异不显著(P>0.05)；乙酸/丙酸对照组显著高于试验组(P<0.05)，A、C两组间差异不显著(P>0.05)。

表5 补饲对瘤胃液代谢参数的影响Table 5 Effect of supplementary feeding on metabolic parameters of rumen fluid

表6 补饲对妊娠母羊瘤胃VFA的影响Table 6 Effect of supplementary feeding on rumen VFA of pregnant ewes

注：同列不同字母表示差异显著(P<0.05)。

Notes: Different letters in the same column mean significant difference atP<0.05 level.

3 讨论

3.1 补饲对甘肃高山细毛羊妊娠母羊体重和初生羔羊重的影响

据宫旭胤[5]对肃南牧区典型牧户的调查，大多牧户产羔前1月才对体况较差的母羊适当补饲，补饲料也以燕麦(Avenasativa)草，或价格低廉的玉米秸、青贮料，或肃南周边玉米(Zeamays)制种后的下脚料为主，很少使用配合饲料，两户典型牧户4月份产羔初生重平均分别为(3.09±0.57)和(3.06±0.52) kg；李成[6]对进入冬草场放牧妊娠羊，以少量饲料进行补饲，结果补饲组羔羊初生重平均为(3.28±0.56) kg，而不补饲组只有(3.12±0.52) kg。比较而言，当地牧民在产前1个月随意补饲，羔羊初生重均低于本试验对照组牧户在产前2个月补饲的效果，远低于本试验补饲组的羔羊初生重[本试验对照组羔羊初生重(3.37±0.08) kg，试验组最低(3.91±0.21) kg，最高(4.40±0.24) kg]。充分说明科学合理地补饲对甘肃高山细毛羊妊娠后期母羊体况的保持和胎儿的生长发育更有良好促进的作用。

本试验中，由于补饲料代谢能和粗蛋白质水平不同，妊娠母羊日增重和羔羊初生重存在一定的差异：按甘肃高山细毛羊妊娠后期营养缺乏量配制的补饲料Ⅰ，对母羊日增重和胎儿的发育均有良好的效果；按高蛋白质低能量配制的补饲料Ⅱ，更有利于母羊的日增重，而羔羊初生重稍逊于其他两试验组；按高能量低蛋白质水平配制的补饲料Ⅲ，不但母羊日增重效果优于补饲料Ⅰ，而且羔羊初生重表现最好。如果妊娠母羊所需的营养得不到充分的供给，导致母羊体内营养消耗过度，影响到胎儿的健康发育，表现为羔羊初生重低，羔羊断奶成活率低，营养性疾病发病率高，母羊生产能力下降。母羊补饲对胎儿正常生长发育、羔羊初生重、羔羊断奶重、羔羊繁殖成活率、羔羊后期的肥育等方面有直接的影响，在现有的技术条件下，给妊娠期母羊补饲营养物质较全面的补充料，使满足母羊怀孕阶段的营养需要，同时满足胎儿生长发育时的养分需要，为发展效益型养羊业提供了有效的途径。

可见，本试验使用的3种补饲料对甘肃高山细毛羊妊娠母羊繁殖均能起到良好的作用，且补饲料Ⅲ的效果更为明显，可在甘肃肃南牧区冬季母羊妊娠期推广应用。

3.2 补饲对甘肃高山细毛羊妊娠母羊血清生化指标的影响

血清生化指标受年龄、性别、生理状况、生活环境、营养水平、测定方法、采食和运动等很多因素的影响，可间接反映出羊的生长状况和健康状况，还可为补饲料配制和动物饲养提供依据。比如根据血清中GLU含量可以看出体内能量代谢的情况；根据TP含量便可衡量体内蛋白代谢情况，等等。但正常的血清生理生化指标有相对的稳定性，如果这些指标的变动有异常，意味着动物机体新陈代谢和生理病理发生变化。

GLU是重要的能量物质，正常情况下，GLU含量在肝脏的调节下是恒定的，GLU供给机体能量，对动物体内的组织、器官，特别是中枢神经的正常生理活动起着供能和营养作用，过高过低都是不利的[7]。孙国虎等[8]报道，随着日粮中能量水平的提高，绵羊血液中的GLU含量上升。本研究中，试验组的GLU含量均高于对照组，表明补饲料的能量水平与血糖浓度正相关，试验末期GLU含量较中期高，并且3种补饲料的摄入也使得血清GLU含量较高，可能是妊娠后期，机体自身和胎儿发育能量需求增大，能量和蛋白补充摄入使GLU顺利合成，其含量升高，这与巩峰等[9]研究认为正常浓度范围内高产动物GLU浓度高于低产动物，本试验研究结果与其一致。

TP和ALB浓度可体现机体对蛋白质的消化吸收和分解代谢情况，血液中TP和ALB的变化，可以反映肝脏的功能以及机体的能量代谢和免疫功能状况，因为大部分血清蛋白质均由肝脏合成，当肝细胞受损时，血清蛋白质合成就会减少，尤其是ALB会明显减少。补饲使得试验羊过瘤胃蛋白质增加，增加了蛋白质代谢，血清中TP和ALB含量得到的提高，增强了动物体的免疫能力[10-12]。本试验中期血液TP和ALB浓度各组间无显著差异，充足的碳水化合物进一步保证了蛋白质的消化与利用，说明合理的补饲可以显著增加绵羊血液中TP和ALB含量，有利于机体对蛋白质的吸收和利用。

血清BUN为蛋白质代谢后产物。钟诚等[13]研究表明，血清尿素氮BUN除与采食蛋白质的量有关外，还与蛋白质中可消化蛋白质的利用率有关。 BUN含量可以间接反映饲料的蛋白含量水平，也可较为准确地反映动物蛋白质代谢和氨基酸平衡利用状况[14]；Stanley 等[15]研究表明，血清尿素氮含量与日粮中含氮物质总量、蛋白质的利用率等有关，当日粮中含氮物质增多或蛋白质利用率降低时均可引起血清尿素氮含量升高。李改英等[16]认为血清BUN是机体氮代谢的一个重要指标，浓度高说明体内蛋白分解代谢增强，氮沉积减少或肾功能异常，浓度低说明氮的利用率高。本试验中期，试验羊血清BUN含量和对照组差异不显著(P>0.05),说明甘肃高山细毛羊妊娠母羊在不同补饲条件下可以进行自身的调整使血浆BUN库保持一个稳定的状况。本试验各组羊血清BUN含量在2.81～3.99 mmol/L范围内，总体上处于一个比较低的水平，说明氮的利用率高，可能主要用于胎儿的生长。

TG和CHO是血液脂肪的组成部分，都与能量代谢有关，其含量高低可以反映脂类的吸收和代谢情况，而且血清CHO的含量还影响着性激素、维生素D3(VD3)和肾上腺皮质激素的合成[10,17]。本试验中，随着补饲料中代谢能的降低，妊娠母羊血液中TG和CHO含量有所下降，这与王安奎等[18]的研究结果一致。施琼等[19]用不同能量和蛋白水平的日粮对母牛进行补饲，发现牛血清中TG含量，高能高蛋白、高能低蛋白和低能高蛋白日粮摄入组均显著高于低能低蛋白日粮摄入组，同时还发现血清中TG含量随日粮能量水平的升高而增加，说明不同营养水平日粮可对绵羊血清TG产生显著影响，本试验与这些结果基本相同。葛汝方等[20]认为若肝细胞长期受损或营养长期过剩，会导致血液中CHO 和TG含量上升，不利于动物体的生长代谢。本试验中，不同阶段TG和CHO含量基本稳定，试验末期略微高于试验中期，这可能是补饲料的能量、蛋白水平处在一个比较好的水平，如果能量和蛋白过高反而会引起机体自身的代谢不适，CHO含量降低不利于能量贮存[9]；许会芬等[21]对西农萨能羊进行补饲，发现日粮能量水平可显著增加血清中TG、CHO含量，本试验结果与其一致。

AST、ALT是主要分布在肝脏、骨骼肌、肾脏、心肌等组织中，催化氨基酸与酮酸之间氨基转移的一类酶，在氨基酸的分解与合成中起重要作用。正常情况下，血液中AST和ALT的含量低且基本恒定，其活性的高低反映了蛋白质合成和分解代谢的情况[22-25]。但是，当上述组织细胞受损时，则会导致这两种酶的活性升高[26]。本研究各试验各组间AST和ALT的含量无显著差异，但均高于对照组，说明补饲料中蛋白水平增高，血清中蛋白含量也随之增高，从而AST和ALT的活性也有所增加，保证了蛋白质的正常代谢，这与冷静等[27]的研究结果相一致。

3.3 补饲对甘肃高山细毛羊瘤胃液代谢参数的影响

瘤胃液总氮包括氨氮、尿素氮、菌体蛋白氮、饲料中可溶解蛋白氮及唾液蛋白氮等[28]。饲粮中的含氮类营养物质进入反刍动物瘤胃后，在瘤胃微生物的降解作用下，分解成为寡肽、游离氨基酸及氨等，同时瘤胃微生物也能在能量供应充足条件下充分利用降解的游离氨基酸和氨等合成菌体蛋白[29]。反刍动物瘤胃液中氨态氮、尿素氮和蛋白氮含量对反刍动物瘤胃内环境变化有很重要的意义[30]。韩璐璐等[31]在不同蛋白梯度水平(7.5%～19.0%)的日粮对反刍动物瘤胃发酵影响的研究中，发现粗蛋白含量为16%时对瘤胃发酵效果最好。万发春等[32]发现，日粮在维持需要的基础上再提高20%的能量水平，会对瘤胃代谢造成明显的抑制作用。本试验A组瘤胃液总氮含量显著升高(P<0.05)，可能与A组补饲料精粗比和能氮比合适有关。

瘤胃中微生物合成作用增强，氨氮浓度低，蛋白氮升高，导致瘤胃壁吸收的氨降低，肝脏合成的尿素氮降低。瘤胃液氨态氮含量各处理组间差异不显著(P>0.05)，A组、B组与C组氨氮的含量在12.04～13.65 mg/dL范围之内变动，与孙玉国等[33]试验报道瘤胃液氨氮含量在6.48～26.13 mg/dL范围内的试验结果一致。瘤胃液蛋白氮包括饲料蛋白氮中可溶解部分、微生物蛋白及唾液蛋白氮[34]。本试验中，B、C、D处理组间瘤胃液蛋白氮差异不显著(P>0.05)。A组瘤胃液蛋白氮含量高于B、C、D组瘤胃液蛋白氮含量。主要原因是A组微生物合成作用增强，故瘤胃液蛋白含量较高。瘤胃液中尿素氮的含量对瘤胃氮代谢有重要作用，其主要来源是饲粮和瘤胃氮素再循环[35]。动物的进食速度、饲料中尿素氮含量、再循环进入瘤胃尿素氮量和瘤胃中尿素氮分解量，以及动物自身唾液分泌量等都是影响瘤胃液尿素氮含量的重要因素[36]。尿素氮水平是蛋白质和氨基酸之间平衡的重要标志，机体内蛋白质代谢良好，血清尿素氮含量就会降低[37]。本试验B组瘤胃液尿素氮显著高于A组和C组(P<0.05)，A、C、D组间差异不显著(P>0.05)；C组母羊瘤胃液尿素氮含量明显低于A组母羊瘤胃液尿素氮(P<0.05)，与A组饲粮粗蛋白含量较高有关，各处理组瘤胃液尿素氮含量在1.69～2.36 mg/dL之间，高于谭建华等[38]报道0.56～1.60 mg/dL的范围。

VFA是日粮中的碳水化合物在瘤胃中发酵分解的最终产物，给反刍动物能提供约70%～80%的能量。Seal等[39]报道，当日粮中碳水化合物增多时，除了能提高丙酸摩尔比外，还能提高总VFA含量。刘晓牧等[40]研究发现，高精料日粮可使VFA 的乙酸丙酸比值降低，同时乙酸和丙酸浓度随精料比例的增加而上升，Serment等[41]研究表明日粮在维持需要的基础上再提高20%的能量，会明显降低乙酸的含量，证明随精料比例的增加总VFA浓度增加，乙酸丙酸比值下降，但Dung等[42]报道，粗蛋白水平对总VFA含量和各酸摩尔比均无显著影响。本研究乙酸和丁酸摩尔比组间差异不显著，而丙酸摩尔比试验组均高于对照组且B组显著高于对照组，这可能是对照组补饲料营养水平低引起的，也可能是饲喂低质粗饲料，使反刍动物瘤胃中发酵产生的丙酸数量不足，无法满足糖异生作用的正常进行，机体就不得不动员血液内源生糖氨基酸来合成葡萄糖，导致机体蛋白质沉积下降带来的不良后果[43]。本试验中试验组甘肃高山细毛羊瘤胃液丙酸摩尔比显著高于对照组，与妊娠母羊日增重和羔羊初生重亦显著高于对照组的结果相一致。所以说补饲料中蛋白、能量水平的合理设置直接影响瘤胃的代谢，更重要的是对保持妊娠母羊的体况和羔羊初生重具有显著的效果。

4 结论

1) 本试验3个补饲组母羊平均日增重和羔羊初生重显著高于对照组。

2) 补饲料Ⅲ对试验羊血清GLU、TG和BUN浓度有显著影响，补饲料Ⅱ对试验羊血清TP、AST含量有显著影响。

3) 补饲组试羊瘤胃液总氮、瘤胃液蛋白氮含量显著高于对照组，且补饲料Ⅰ组显著高于其他各组，补饲料Ⅱ组瘤胃液尿素氮显著高于其他各组。

4) 3个试验组母羊瘤胃液总VFA浓度和丙酸摩尔比显著高于对照组，与试验组母羊日增重和羔羊初生重均高相一致。

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Effects of supplementary feeding in late pregnancy on Gansu Alpine Fine-Wool ewes

ZHANG Chang-Ji, ZHANG Yong, GUO Wu-Jun, ZHANG Li-Ping, GUN Shuang-Bao*

CollegeofAnimalScienceandTechnology,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China

The nutrient intake of Gansu Alpine Fine-Wool ewes is often insufficient during late pregnancy. Therefore, three complementary concentrates (type Ⅰ, Ⅱ, and Ⅲ) with different energy and protein levels were designed and tested as supplementary feeds for Gansu Alpine Fine-Wool ewes during late pregnancy. Sixty healthy ewes with similar body weight in late pregnancy were randomly divided into four groups (A, B, C, and D). Each group comprised of 15 ewes with 1 ewe per replicate. Groups A, B, and C were fed with supplementary feed Ⅰ, Ⅱ, and Ⅲ, respectively, while group D was grazed on pasture according to the local practice. The experiment lasted for 68 days. The average daily weight gain of group A, B, C was 102, 109 and 114 g, respectively, and the lamb birth weight was 4.09, 3.91 and 4.40 kg, respectively. These values were higher than the corresponding values in group D. The serum glucose, triglyceride, and blood urea nitrogen concentration in ewes were significantly affected by supplementary feed Ⅲ (P<0.05). The total protein and aspartate transaminase contents were significantly affected by feed Ⅱ. The total nitrogen and rumen protein nitrogen contents in the rumen liquid of ewes were significantly higher in groups A, B, and C than in group D (P<0.05), and were significantly higher in group A than in groups B and C. The highest urea nitrogen content was in group B (P<0.05). The concentration and molar ratio of volatile fatty acids were significantly higher in groups A, B, and C than in group D (P<0.05), and the acetate/propionate ratio was significantly lower in groups A, B, and C than in group D (P<0.05). The rumen fluid pH and ammonia nitrogen concentration did not differ significantly among the four groups (P>0.05).

Gansu Alpine Fine-wool sheep; late pregnancy; supplementary feeding; production performance; serum biochemical indices; rumen environment

10.11686/cyxb2016302

2016-08-17；改回日期：2016-12-06

公益性行业(农业)科研专项放牧牛羊营养均衡需要研究与示范(201303062)和牧区极端气候条件下牛羊应急专用饲料研究与示范(201303062-5)资助。

张昌吉(1974-)，男,甘肃秦安人，副教授，博士。E-mail: 2473792146@qq.com

*通信作者Corresponding author. E-mail: gunsb@gsau.edu.cn

http://cyxb.lzu.edu.cn

张昌吉, 张勇, 郭武君, 张利平, 滚双宝. 甘肃高山细毛羊母羊妊娠后期补饲效果研究. 草业学报, 2017, 26(7): 106-115.

ZHANG Chang-Ji, ZHANG Yong, GUO Wu-Jun, ZHANG Li-Ping, GUN Shuang-Bao. Effects of supplementary feeding in late pregnancy on Gansu Alpine Fine-Wool ewes. Acta Prataculturae Sinica, 2017, 26(7): 106-115.