APP下载

补肾壮督散水煎液对大鼠腰椎间盘退变的影响及其机制

2017-04-04张震刘海全林一峰唐汉武宋振杰王利仁

山东医药 2017年16期
关键词:细胞器塞来纤维细胞

张震,刘海全,林一峰,唐汉武,宋振杰,王利仁

(1广州中医药大学,广州510006;2广州中医药大学第三附属医院)

·基础研究·

补肾壮督散水煎液对大鼠腰椎间盘退变的影响及其机制

张震1,刘海全2,林一峰2,唐汉武2,宋振杰2,王利仁2

(1广州中医药大学,广州510006;2广州中医药大学第三附属医院)

目的 探讨补肾壮督散水煎液对大鼠腰椎间盘退变的影响及其可能机制。方法 将40只SD大鼠随机分为假手术组、模型组、补肾壮督散组、塞来昔布组,各10只。除假手术组外,其余各组均采用腰椎纤维环全层穿刺法制备腰椎间盘退变模型。造模第2天,补肾壮督散组和塞来昔布组分别给予补肾壮督散水煎液、塞来昔布胶囊水溶液灌胃,假手术组、模型组给予等量生理盐水灌胃,连续8周。各组处死后取出椎间盘组织,HE染色后观察病理变化,醋酸铀及枸橼酸铅双重染色后透射电镜观察超微结构,Western blotting法检测椎间盘组织基质金属蛋白酶3(MMP-3)蛋白表达。结果 假手术组椎间盘纤维环层次分明,与髓核界限分明;成纤维细胞呈梭条状,细胞质内细胞器较发达。模型组椎间盘胶原纤维排列紊乱,与髓核界限消失;成纤维细胞细胞质内细胞器不发达。补肾壮督散组椎间盘纤维环层次较分明,与髓核界限分明;成纤维细胞细胞质内细胞器稍不发达。塞来昔布组椎间盘纤维环层次较补肾壮督散组紊乱,与髓核界限欠分明;成纤维细胞细胞质内细胞器较不发达。假手术组椎间盘组织MMP-3蛋白相对表达量为0.198±0.028,补肾壮督散组为0.525±0.056,塞来昔布组为0.809±0.029,模型组为1.065±0.055;各组椎间盘组织MMP-3蛋白相对表达量依次升高,组间两两比较P均<0.05。结论 补肾壮督散水煎液灌胃可延缓大鼠腰椎间盘退变;抑制腰椎间盘组织MMP-3表达可能是其作用机制。

腰椎间盘退变;补肾壮督散;基质金属蛋白酶3;大鼠

腰椎间盘退变是导致腰背痛的主要原因之一[1]。腰椎间盘退变的基本病理变化是细胞外基质(ECM)的降解,而基质金属蛋白酶(MMPs)在椎间盘ECM的降解过程中发挥重要作用。MMP-3是椎间盘ECM降解的关键酶之一,其在退变的椎间盘组织中高表达[2]。2014年9月~2016年3月,本研究观察了补肾壮督散水煎液对大鼠腰椎间盘退变的影响,现分析结果并探讨其可能的机制。

1 材料与方法

1.1 材料 动物:雄性SD大鼠40只,SPF级,3月龄,体质量(250±20)g,均购于广州中医药大学实验动物中心,动物合格证号:粤监证字2008A002。药物及试剂:补肾壮督散(海马5 g、鹿角胶10 g、黄芪30 g、熟地黄20 g、细辛4 g)由广州中医药大学附属骨伤科医院制剂室制备成散剂,取温开水500 g冲溶,过滤去渣,蒸馏水调整定容至500 mL,药物含量为1 g/mL,4 ℃条件下保存备用。塞来昔布胶囊购于辉瑞制药有限公司,水合氯醛购于国药集团化学试剂有限公司,MMP-3兔多克隆抗体抗体(一抗)购于武汉博士德生物工程有限公司,羊抗兔二抗购于丹麦Dako公司。电子显微镜购于日本日立公司。

1.2 模型制备与分组处理 采用随机数字表法将40只大鼠随机分为假手术组、模型组、补肾壮督散组、塞来昔布组,各10只。除假手术组外,其余各组均参考文献[3]的方法采用腰椎纤维环全层穿刺法制备L5、6腰椎间盘退变模型,假手术组仅暴露椎间盘,不穿刺。术后单笼饲养,每只大鼠肌注8万U青霉素,连续应用3天。造模后第二天上午8时补肾壮督散组予补肾壮督散水煎液1 mL/100 g灌胃,塞来昔布组予塞来昔布胶囊水溶液1.25 mg/kg灌胃,假手术组、模型组给予等量生理盐水灌胃;均为1次/d,连续8周。

1.3 相关指标观察

1.3.1 椎间盘组织超微结构及病理情况 术后8周每组随机抽取5只,麻醉后处死,迅速取出L5、6椎间盘组织。以椎间盘中线为界,于损伤侧椎间盘外纤维环取1 mm3的组织块,置于30 g/L戊二醛缓冲液中固定24 h,加入10 g/L锇酸固定2 h,梯度丙酮脱水,环氧树脂812包埋。光镜下定位后行超薄切片,醋酸铀及枸橼酸铅双重染色。于7 500倍电子显微镜下观察椎间盘组织成纤维细胞和胶原纤维结构。将剩余椎间盘组织置于4%中性多聚甲醛溶液中固定24 h,经脱水、石蜡包埋,4 μm厚切片,烘烤后二甲苯脱蜡、梯度乙醇水化,进行HE染色。40倍光镜下观察椎间盘组织病理变化。

1.3.2 椎间盘组织MMP-3蛋白表达 采用Western blotting法。术后8周将剩余5只大鼠的L5、6椎间盘组织置于玻璃研磨器中捣碎,裂解液裂解后充分匀浆。冰上裂解30 min,4 ℃条件下14 000 r/min离心5 min,取上清。采用BCA试剂盒测定蛋白浓度,调整蛋白浓度合格后备用。10% SDS-PAGE凝胶恒压电泳,浓缩胶电压80 V,分离胶电压120 V。湿转法将蛋白转移至PVDF膜,5%脱脂牛奶恒温封闭1 h。加入一抗(1∶1 000)4 ℃孵育过夜,加入二抗(1∶20 000)进行杂交。以GAPDH为内参,ECL化学发光剂显影、定影,采用Image J 软件行MMP-3蛋白半定量分析。

2 结果

2.1 椎间盘组织超微结构及病理变化 椎间盘组织超微结构:假手术组椎间盘组织束状纤维平行排列,胶原纤维排列紧密,成纤维细胞呈梭条状,外形较圆滑,细胞质内细胞器较发达。模型组椎间盘组织束状纤维不完全孤立,胶原纤维排列较稀疏,成纤维细胞体型较小,细胞质内细胞器不发达。补肾壮督散组多数束状纤维平行排列,胶原纤维排列较紧密,成纤维细胞外形不圆滑,细胞质内细胞器稍不发达。塞来昔布组束状纤维间之间不完全孤立,胶原纤维排列稍稀疏,成纤维细胞外形不圆滑,细胞质内细胞器较不发达。椎间盘组织病理变化:假手术组椎间盘纤维环层次分明,呈同心圆形,排列规则整齐,胶原走行清楚,与髓核界限分明。模型组部分纤维环破裂,椎间盘胶原纤维排列紊乱,与髓核界限消失。补肾壮督散组椎间盘纤维环层次较分明,呈同心圆形,与髓核界限分明。塞来昔布组椎间盘纤维环层次较补肾壮督散组紊乱,与髓核界限欠分明。2.2 椎间盘组织MMP-3蛋白表达 假手术组椎间盘组织MMP-3蛋白相对表达量为0.198±0.028,补肾壮督散组为0.525±0.056,塞来昔布组为0.809±0.029,模型组为1.065±0.055;各组椎间盘组织MMP-3蛋白相对表达量依次升高,组间两两比较P均<0.05。

3 讨论

椎间盘是人体最早退变的器官,腰椎间盘退变最早可发生在10岁左右[4]。腰椎间盘退变是一个复杂的病理过程,由多种因素共同参与,如遗传因素、细胞代谢失衡、椎体结构的改变、新生血管长入、免疫炎症等[5]。近年来,中药复方治疗腰椎间盘退变多有报道,其延缓腰椎椎间盘退变的作用也越来越受到关注[6~8]。补肾壮督散是一种具有温肾强督作用的中药复方;塞来昔布是临床常用的环化酶2抑制剂,不仅可以消炎止痛,还能够增加椎间盘组织中的蛋白多糖水平,降低软骨细胞凋亡指数,延缓椎间盘退变[9]。本研究显示,与假手术组比较,模型组增生的胶原纤维排列紊乱,与髓核界限消失;成纤维细胞体型较小,细胞质内细胞器不发达;说明采用腰椎纤维环全层穿刺法制备腰椎间盘退变模型成功。本研究补肾壮督散组椎间盘纤维环层次较分明,与髓核界限分明,成纤维细胞外形不圆滑,细胞质内细胞器稍不发达;而塞来昔布组椎间盘纤维环层次较补肾壮督散组紊乱,与髓核界限欠分明,成纤维细胞外形不圆滑,细胞质内细胞器较不发达;两组椎间盘组织病理和超微结构改变均较模型组轻。说明补肾壮督散可以延缓大鼠腰椎间盘的退变,其效果优于塞来昔布。

腰椎间盘退变的主要表现为细胞减少和ECM降解,而ECM的丢失是导致椎间盘力学特性丧失的主要原因,ECM的合成和降解失衡可直接导致腰椎间盘退变[10,11]。MMPs是最重要的一类ECM分解蛋白酶,在腰椎间盘退变组织中表达显著升高[12]。MMP-3在ECM的降解过程中起着关键作用,不仅可以直接裂解胶原蛋白,还可以直接降解蛋白多糖和糖蛋白,更重要的是MMP-3还能激活其他潜在的MMPs,产生瀑布效应,发挥间接促ECM降解作用。MMP-3还能够降解椎间盘组织的胶原蛋白和蛋白多糖。Jing等[12]研究发现,在退变的髓核组织中MMP-3能够抑制Ⅱ型胶原蛋白表达,加速腰椎间盘退变。本研究假手术组、补肾壮督散组、塞来昔布组、模型组椎间盘组织MMP-3蛋白相对表达量依次升高,组间两两比较差异均有统计学意义;说明补肾壮督散延缓大鼠腰椎间盘退变的作用机制与其降低MMP-3蛋白表达有关。

综上所述,补肾壮督散水煎液灌胃可通过降低椎间盘组织MMP-3表达而延缓大鼠腰椎间盘退变,但其具体的作用机制尚需进一步研究。

[1] Capossela S, Schlafli P, Bertolo A, et al. Degenerated human intervertebral discs contain autoantibodies against extracellular matrix proteins[J]. Eur Cell Mater, 2014,27(4):251-263.

[2] Roberts S, Evans H, Trivedi J, et al. Histology and pathology of the human intervertebral disc[J]. J Bone Joint Surg Am, 2006,88(Suppl 2):10-14.

[3] Adams MA, Roughley PJ. What is intervertebral disc degeneration, and what causes it[J]. Spine, 2006,31(18):2151-2161.

[4] Roberts S, Evans H, Trivedi J, et al. Histology and pathology of the human intervertebral disc[J]. J Bone Joint Surg Am, 2006,88(Suppl 2):10-14.

[5] Capossela S, Schlafli P, Bertolo A, et al. Degenerated human intervertebral discs contain autoantibodies against extracellular matrix proteins[J]. Eur Cell Mater, 2014(27):251-263.

[6] Trinh K, Cui X, Wang YJ. Chinese herbal medicine for chronic neck pain due to cervical degenerative disc disease[J]. Spine, 2010,35(24):2121-2127.

[7] Liang QQ, Xi ZJ, Bian Q, et al. Herb formula "Fufangqishe-Pill" prevents upright posture-induced intervertebral disc degeneration at the lumbar in rats[J]. J Pharmacol Sci, 2010,113(1):23-31.

[8] 林一峰,梁祖建,李彩华.浅谈温养督脉法治疗脊柱退行性疾病的思路与方法[J].广州中医药大学学报,2012,29(2):215-216.

[9] 朱立新,王坤,曹延林,等.不同类型环氧化酶2抑制剂对椎间盘退变模型大鼠缺氧诱导因子1α和血管内皮生长因子表达的影响研究[J].中国全科医学,2013,16(1C):280-282.

[10] Sakai D. Future perspectives of cell-based therapy for intervertebral disc disease[J]. Eur Spine J, 2008,17(Suppl 4):452-458.

[11] Niu CC, Yuan LJ, Chen LH, et al. Beneficial effects of hyperbaric oxygen on human degenerated intervertebral disk cells via suppression of IL-1beta and p38 MAPK signal[J]. J Orthop Res, 2011,29(1):14-19.

[12] Jing W, Jiang W. MicroRNA-93 regulates collagen loss by targeting MMP3 in human nucleus pulposus cells[J]. Cell Prolif, 2015,48(3):284-292.

国家自然科学基金资助项目(81574000);广州中医药大学中医骨伤科学国家重点学科开放基金资助项目(ZD06)。

林一峰(E-mail: lyf@gzucm.edu.cn)

10.3969/j.issn.1002-266X.2017.16.009

R681.53

A

1002-266X(2017)16-0033-03

2016-03-20)

猜你喜欢

细胞器塞来纤维细胞
Tiger17促进口腔黏膜成纤维细胞的增殖和迁移
滇南小耳猪胆道成纤维细胞的培养鉴定
我国科学家绘制“生命暗物质”图谱
植物细胞器DNA的新功能
——可作为磷酸盐库再利用!
塞来昔布辅助治疗肿瘤患者难治性胃食管反流病的探讨并文献复习
塞来昔布对心肌肥厚大鼠TNF-α与心肌细胞凋亡的影响
胃癌组织中成纤维细胞生长因子19和成纤维细胞生长因子受体4的表达及临床意义
塞来昔布与溃疡性结肠炎相关性结直肠癌的研究进展
两种制备大鼠胚胎成纤维细胞的方法比较
独活寄生汤加减联合塞来昔布治疗轻中度膝骨关节炎的疗效观察