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薯蓣皂苷对大鼠心肌收缩与钠-钙交换体的影响*

2016-09-15丛恬马先尹永强娄建石

中国应用生理学杂志 2016年3期
关键词:薯蓣正性皂苷

杨 帆,韩 钰,丛恬马先,康 毅,李 燕,孙 凯,尹永强,娄建石

薯蓣皂苷对大鼠心肌收缩与钠-钙交换体的影响*

杨 帆,韩 钰,丛恬马先,康 毅,李 燕,孙 凯,尹永强△,娄建石△

(天津医科大学基础医学院药理学教研室 ,天津300070)

目的:观察薯蓣皂苷(Dio)对大鼠心肌收缩作用以及胞内Ca2+浓度的影响 ,并初步探讨其作用机制与Na+-Ca2+交换体(NCX)的关系。方法:采用Langendorff逆行主动脉灌流法对大鼠离体心脏进行灌流,利用压力感受器插管法测定左心室相关心功能参数,记录及其在应用NCX选择性抑制剂SEA0400情况下对左心室收缩压(LVSP)、左心室舒张末期压(LVEDP)、左心室内压最大上升/下降速率(±dp/dtmax)以及心率(HR)的影响;利用激光共聚焦显微观察薯蓣皂苷及SEA0400对大鼠心肌细胞H9c2细胞内Ca2+浓度的影响。结果:离体心脏灌流结果显示,1μmol/LDio可显著增加LVSP,增加约19.7%(P<0.01);增加左室内压最大上升速率(+dp/dtmax),增加约9.6% ;激光共聚焦测定Ca2+荧光强度实验结果显示:1μmol/L Dio可使H9c2细胞中Ca2+相对荧光强度增加(P<0.01);而在SEA0400存在的情况下,1μmol/L的Dio使细胞内Ca2+相对荧光强度变为(17.09±0.63),给予Dio后差异有显著性(P<0.01)。在细胞液中无Ca2+或无Na+时,给予1μmol/L的Dio使Ca2+相对荧光强度减小,与给予1 μmol/L的Dio差异有显著性(P<0.01)。结论:Dio可增加左心室收缩压和最大上升速率,表现正性肌力作用;Dio可使细胞内Ca2+浓度增加,其作用机制与增加Na+内流 ,促进NCX反向转运有关。

薯蓣皂苷;心肌;大鼠;正性肌力作用 ;Na+-Ca2+交换体

【DOI】10.13459/j.cnki.cjap.2016.03.005

药物的作用靶点在一定程度上决定了药物疗效。目前发现的与心肌收缩作用相关靶点[1]有很多,包括β肾上腺素受体[2]、磷酸二酯酶、L-型钙通道、蛋白激酶A、蛋白激酶C、蛋白磷酸酶、Na+-K+-ATP酶[3]、Na+-Ca2+交换体(sodium-calcium exchanger,NCX)、肌浆网钙泵[4]、兰尼定受体、三磷酸肌醇受体等。其中,NCX作为调节细胞内钙离子平衡的重要途径之一,与心肌收缩作用存在着密不可分的关系[5]。现代研究[6-9]证实 ,Dio具有改善心血管功能、降血脂、抗血小板聚集以及抗肿瘤、调节免疫等多种药理作用。但Dio产生正性肌力作用及其具体机制尚未见报道。化合物SEA0400(2-[4-[(2,5-difluorophenyl)methoxy]phenyl]-5-ethoxyaniline)是近年来发现的一类NCX选择性阻断剂 ,研究[10-13]表明,正常心肌细胞 25%的 Ca2+都是由 NCX外排,1μmol/L SEA0400可以抑制80%以上的Na+-Ca2+交换,对心肌细胞上其他离子通道、受体和转运蛋白没有影响。本实验室研究了Dio对大鼠离体心脏的正性肌力作用,发现Dio能够增加心脏收缩力,可增加心肌细胞内Ca2+浓度。本实验利用SEA0400作为模型药物,探讨Dio增加心肌收缩力和心肌细胞内Ca2+浓度的机制,以大鼠离体灌流心脏和心肌H9c2细胞为载体,观察Dio正性肌力作用和细胞内Ca2+浓度的变化,初步研究正性肌力作用与NCX之间的关系,为正性肌力药物的探索提供新的发现与科学依据。

1 材料与方法

1.1 实验对象

大鼠心肌细胞H9c2细胞株(中国协和医科大学基础医学研究所细胞中心)。健康、成年Wistar大鼠,雄性,体重250~300 g,合格证号SCXK(京)2012-0004,由北京维通利华实验动物技术有限公司提供。

1.2 主要仪器和试剂

仪器:PK-600S型恒温水浴锅;2℃~8℃药品保存冰箱;电热鼓风干燥箱;微量加样器;pH计;倒置荧光显微镜;Gemini XPS荧光读板机;24孔板;0.22 μm微孔滤膜;共聚焦培养皿;GL-2 Langendorff灌流装置;BL420-F生物机能实验系统;HW-1000超级恒温水浴。

试剂:薯蓣皂苷(国家天然药物研究中心);SEA0400(MedChem Express,USA);低糖DMEM培养基(HyClone,USA);胎牛血清(Gibco,USA);胰蛋白酶(HyClone,USA);双抗(青霉素及链霉素溶液100×)(北京索莱宝科技有限公司);Fluo3-AM钙离子荧光探针(碧云天);JC-1荧光探针(碧云天)。

1.3 大鼠左心室功能测定

1.3.1 实验分组:1μmol/L Dio组;1μmol/L SEA0400组;1μmol/L SEA0400+1μmol/L Dio组。以给药前5min作为正常对照,给药后20 min作为给药组。

1.3.2 离体心脏 Langendorff灌流法用25%乌拉坦1.0 g/kg麻醉大鼠,仰位固定于鼠台上,迅速剪开胸腔,暴露心脏,从主动脉根部离断取出心脏,放入4℃生理盐水中,轻轻按压,帮助泵出残留血液并去除脂肪及结缔组织。行主动脉逆行插管,注意插管不宜过深,不得超过动脉口进入心腔。将插管连接Langendorff灌流装置上,使用注射器快速注入4℃生理盐水,排尽残血,再以恒温(37℃)、充氧(95%O2± 5%CO2)的K-H液8ml/min连续灌流,灌注压为60 ~70mmHg左右。灌注K-H液。整个过程控制在1min以内,以减少缺血对心脏组织造成的损伤。待心脏逐渐恢复跳动,轻轻剪掉左心耳,采用插管法将球囊压力感受器探头经左心房插入左心室。实验中选择乳胶薄膜制作球囊,因其扩展能力好,变形能力强,对心室压力的变化更为敏感。压力感受器经压力换能器与BL420生物机能实验系统相连,用于记录左心室收缩曲线,采样频率为800/s。待心脏灌流稳定20min后给药。

1.3.3 观测指标 主要观察心肌最大缩短速率(maximum shortening velocity,Vmax)、心率(heart rate,HR)、左心室收缩压(left venteicular systolic pressuer,LVSP)、左心室舒张末期压(left ventricular end dilated pressure,LVEDP)、左心室压力上升最大速率(+dp/ dtmax)、左心室压力下降最大速率(-dp/dtmax)等指标。

1.4 细胞内Ca2+浓度的测定

1.4.1 Fluo3-AM工作液的配制 (1)母液配制:用44.2μl DMSO溶解50μg的Fluo3-AM粉末,配制成1mmol/L母液,分装,封口避光,-20℃保存。(2)Fluo3-AM工作液的配制:用1ml台氏液稀释4μl母液即可得到浓度为4μmol/L Fluo3-AM的工作液。无Na+、无Ca2+组则分别采用不含Na+、不含Ca2+的台式液稀释。

1.4.2 测定方法 (1)以8×104cells/ml的密度将细胞接种于共聚焦培养皿中,于37℃、5%CO2孵箱中培养24 h后,进行给药处理,与药液共孵育时间为20min。(2)取各组细胞,弃去旧培养液,以1 ml台氏液轻轻洗涤三遍。(3)加入500μl含4μmol/L Fluo3-AM的工作液,放入37℃、CO2孵育箱中避光负载30min。(4)在负载结束后,用1ml台氏液轻轻洗涤细胞3遍,充分去除残留的工作液。最后向激光共聚焦培养皿中的各组细胞加入1ml台氏液,避光孵育20~30 min,以确保AM体在细胞内的完全去酯化作用。(5)共聚焦显微镜Ca2+成像:加载好荧光指示剂的细胞置于激光共聚焦显微镜系统的载物台上,在激发光488 nm处,可于525 nm处探测到荧光。选取固定视野摄影记录最大荧光信号,经光电倍增管和数字传入式摄像机,输入计算机系统,利用Image J软件计算胞内平均荧光强度,以此衡量H9c2细胞内游离Ca2+水平。荧光强度越大,表示细胞内游离Ca2+越高。以上步骤均在37℃条件下进行。

1.4.3 实验分组 (1)正常对照组;(2)1μmol/L Dio组;(3)1μmol/L SEA0400组;(4)1μmol/L SEA0400+1μmol/L Dio组;(5)1μmol/L Dio+无Na+台氏液组;(6)1μmol/L Dio+无Ca2+台氏液组(其中无Na+台氏液配制时使用LiCl替代NaCl)。

1.5 数据处理

2 结果

2.1 大鼠左心室收缩功能测定

1μmol/L Dio可显著增加LVSP,由(80.34± 2.07)mmHg至(96.13±3.79)mmHg,增加近19.7% (P<0.01);+dp/dtmax由(3.01±0.53)mmHg/ms增至(3.30±0.16)mmHg/ms,增加约9.6%(P<0.05,图1)。

给予1μmol/L SEA0400+1μmol/L Dio的LVSP由(80.25±5.61)mmHg/ms上升为(81.79±9.35)mmHg/ms,+dp/dtmax由(2.83±0.09)mmHg/ms变为(2.83±0.25)mmHg/ms,与正常对照组相比无明显变化。将给药后各功能指标数值分别除以给药前正常对照组功能指标数值,得出变化比值(P<0.05,P <0.01,表1)。

Fig.1 Effectsof dioscin on LVSPof isolated Langendorff-perfused ratheart in the absence and presence of SEA0400LVSP:Left veatricular systolic pressure

Tab.1 Effects of SEA0400 and dioscin on cardiac functions in isolated ratheart

2.2 细胞内Ca2+浓度测定

荧光探针Fluo3-AM与H9c2细胞共孵育后,与Ca2+相结合产生较强的荧光(图2)。与正常对照组相比,SEA0400使细胞内Ca2+荧光强度降低,从(17.30±0.92)下降到(7.94±0.57);Dio能显著增强Ca2+荧光强度,从(17.30±0.92)上升到(26.90± 0.71);SEA0400+Dio组与正常对照组差别不大,分别为(17.30±0.92)与(17.09±0.63);与Dio组相比,无Ca2++Dio组和无Na++Dio组均使细胞内Ca2+荧光强度显著降低,从(26.90±0.71)下降到(8.17±0.50)和(12.73±0.39)(P<0.01,图3)。

3 讨论

本室前期实验研究发现Dio对乳鼠心肌细胞缺血再灌注损伤具有保护作用,可增强大鼠缺血再灌注损伤后的心肌抗氧化能力[14];在离体水平上,也有研究[15]证实Dio衍生物可改善SD大鼠离体心脏左心室收缩功能,对缺血再灌注损伤具有明显保护作用。在此基础上,本实验于离体和细胞水平,从心功能指标、生化指标角度证明了Dio具有正性肌力作用,且其机制与促进NCX反向运转,诱发Na+外排,继而促使Ca2+交换内流入胞有关。

心肌细胞接受脉冲信号后,Na+通道首先被激活开放,Na+大量内流,然后激活Ca2+通道,导致外Ca2+内流,继而激活胞内肌浆网释放Ca2+。此时,NCX根据细胞膜电位以及细胞内外Na+与Ca2+的浓度,采取两种转运方式:正向转运,即Ca2+外排耦联Na+内流;反向转运,即Ca2+内流耦联Na+外排。当抑制NCX正向转运,或促进NCX的逆向转运,使细胞Ca2+内流增加,产生正性肌力作用[1]。文献报道[16],临床上使用的洋地黄类药物通过抑制心肌Na+-K+-ATP(NKA)酶的活性,使钠泵失灵、细胞内Na+增多,从而促进Na+-Ca2+交换。本实验室之前的实验研究显示[17],Dio可激活Na+通道,使Na+内流。因此笔者首先考虑细胞内Ca2+升高可能与NCX有关。

Fig.2 Effects of Dioscin on the fluorescence intensity of intracellular calcium ion in H9c2 cells (×100)

Fig.3 Effects of dioscin on the fluorescence intensity of intracellular calcium ion in H9c2 cellsDio:Dioscin;SEA0400:2-[4-[(2,5-difluorophenyl)methoxy]phenyl]-5-ethoxyaniline

Farkas等[18]发现,1μmol/L SEA0400对正常兔离体心脏心肌收缩力无明显影响,这与本实验结果一致。即单独给予Dio时,正性肌力作用明显,共同给予SEA0400和Dio时,与正常组相比几乎无变化,但比单独给予 Dio时变化比值显著降低,说明SEA0400可削弱Dio的正性肌力作用。细胞水平实验结果显示,单独给予Dio时细胞内Ca2+浓度升高,共同给予SEA0400和Dio时,细胞内Ca2+浓度与正常水平无太大差别,说明SEA0400可部分阻断Dio升高细胞内Ca2+的能力,提示Dio产生心肌正性肌力作用,升高细胞内Ca2+浓度与NCX有关。其次,为进一步证明与NCX的联系,考虑到细胞外Na+或Ca2+对实验的影响,本实验设计了无Na+或无Ca2+细胞外液。当细胞外无Ca2+时,Dio不能升高细胞内Ca2+浓度,提示促进外Ca2+内流可能是其升高细胞内Ca2+浓度的机制之一;当细胞外无Na+时,Dio也不能使细胞内Ca2+浓度升高,表明促进Na+内流与其升高细胞内 Ca2+离子浓度密切相关。在SEA0400阻断NCX或细胞外液没有Na+或Ca2+时,Dio升高细胞内Ca2+浓度的作用均被阻断。笔者的实验证实Dio可升高细胞内Ca2+浓度,据此推断Dio增强心肌收缩力的作用与增强NCX反向转运有关。

本实验研究的Dio正性肌力作用机制与传统的正性肌力药物不同,为Dio的药理作用研究提供了新的发现与科学依据。然而,Dio促进Ca2+内流、引起细胞内Ca2+水平升高继而增强心肌收缩力是否存在其他机制以及是否会导致Ca2+超载等问题,是笔者今后深入探索的方向。

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The effects of dioscin on myocardial contraction and sodium-calcium exchanger

YANG Fan,HAN Yu,CONG Tian-shen,KANG Yi,LIYan,SUN Kai,YIN Yong-qiang△,LOU Jian-shi△
(Department of Pharmacology,Basic Medical College,Tianjin Medical University,Tianjin 300070,China)

【ABSTRACT】Objective:To investigate the inotropic effectsof dioscin(Dio)in rat isolated-heartand intracellular free calcium concentration in isolated ratventricularmyocytes and to explore itsmechanism preliminarily.Methods:Leftventricle contractile functionwasmeasured using the Langendorff non-recirculatingmode of isolated rat heart perfusion.Effects of dioscin and dioscin+SEA0400,sodium-calcium exchanger (NCX)inhibitor,were investigated by measuring left ventricular systolic pressure(LVSP)and left ventricular end diastolic pressure (LVEDP).Also,heart rate(HR),peak rateof rise/fallof leftventricular pressure(±dp/dtmax)of isolated ratheartwere calculated;Effects of dioscin and SEA0400 on intracellular free calcium concentration in ratH9c2 cellsweremeasured by Fluo3-AM and then detected the fluorescence intensitywith confocalmicroscopy.Results:With 1μmol/L dioscin,LVSPwas significantly increased by 19.7%(P<0.01)and dp/ dtmaxwas increased by 9.6%;With 1μmol/L dioscin,the relative fluorescence intensity of intracellular free calcium concentrationswere strong significantly(P<0.01).While in presence of SEA0400,the relative fluorescence intensitywas changed to 17.09±0.63(P<0.01)by 1μmol/L dioscin.With 1μmol/L dioscin,the relative fluorescence intensitywasweak(P<0.01)without calcium or sodium in the extracellular fluid.Conclusion:Dioscin shows positive inotropic effecton isolated ratheart,enhancing the LVSPand+dp/dtmax;Dioscin increases the intracellular concentration ofCa2+in the cardiacmyocytesby increasing Na+influx and facilitating the reversemode of the sodium-calcium exchanger.

dioscin; myocardium; rat; positive inotropic effect; sodium-calcium exchanger

R331.3

A

1000-6834(2016)03-209-05

天津应用基础及前言技术研究计划青年项目(14JCQNJC13700)

2015-11-12

2016-02-01

Tel:022-83336835,022-83336860;E-mail:13820043633 @126.com,jianshilou@163.com

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