APP下载

紫草素对乳腺癌MCF-7细胞雌激素受体的表达和增殖及凋亡的影响

2016-09-12陈玉忠韩福生张智瑞金功圣

山西医科大学学报 2016年8期
关键词:紫草培养箱细胞株

陈玉忠, 韩福生, 许 磊, 张智瑞, 潘 琼, 刘 浩, 金功圣*

(1蚌埠医学院第一附属医院肿瘤外科,蚌埠 233000; 2蚌埠医学院药学系; *通讯作者,E-mail:jgs2007@qq.com)



紫草素对乳腺癌MCF-7细胞雌激素受体的表达和增殖及凋亡的影响

陈玉忠1, 韩福生1, 许磊1, 张智瑞2, 潘琼2, 刘浩2, 金功圣1*

(1蚌埠医学院第一附属医院肿瘤外科,蚌埠233000;2蚌埠医学院药学系;*通讯作者,E-mail:jgs2007@qq.com)

目的探讨紫草素(shikonin,SK)对乳腺癌MCF-7细胞雌激素受体表达及其对细胞的增殖和凋亡的影响。方法用MTT法检测不同浓度SK(0,1,2,4,8 μmol/L)处理MCF-7细胞24,48,72 h的增殖抑制作用;集落克隆形成实验观察低浓度SK(0,0.1,0.2,0.4 μmol/L)对MCF-7细胞增殖的影响;DAPI染色观察SK处理24 h对MCF-7细胞凋亡的影响;流式细胞术(PI单染法)检测不同浓度SK(0,1,2,4,8 μmol/L)作用MCF-7细胞24 h细胞凋亡比率;Western blot法检测SK对雌激素受体表达的影响。结果SK作用于MCF-7后细胞存活率随浓度增加而降低(P<0.05)。0.1,0.2,0.4 μmol/L SK作用MCF-7细胞后抑制集落克隆形成,0.1,0.2,0.4 μmol/L SK组分别与对照组相比,差异均具有统计学意义(P<0.05)。DAPI荧光染色结果显示,随SK浓度(1,2,4,8 μmol/L)增加,浓缩深染致密状的细胞核数目逐渐增加。不同浓度的SK(1,2,4,8 μmol/L)作用于MCF-7细胞凋亡率分别为(7.0±1.27)%,(11.6±1.45)%,(15.1 ±1.36)%,(29.5±1.41)%,与对照组相比差异有统计学意义(P<0.05)。MCF-7细胞株中雌激素受体的表达随SK浓度的增加而降低;2,4 μmol/L组与对照组相比,差异具有统计学意义(P<0.05)。结论SK可抑制乳腺癌MCF-7细胞增殖,并诱导其凋亡,其机制可能与雌激素受体表达降低有关。

紫草素;乳腺癌;MCF-7细胞;增殖;凋亡;雌激素受体

乳腺癌是女性高发的恶性肿瘤,同时是引起女性肿瘤相关死亡的首要原因[1]。其中死于雌激素受体(ER)阳性的乳腺癌患者明显高于HER2阳性及三阴性乳腺癌患者[2]。雌激素及雌激素受体在乳腺癌的发生发展中起到关键性作用。因此,针对ER的靶向治疗药物如他莫昔芬、氟维司群等已在ER阳性乳腺癌患者中应用[3],而乳腺癌内分治疗过程中耐药[4]的产生,不得不寻求其他可能有效的治疗手段。紫草作为一种抗炎、抗肿瘤药物,在我国传统医学中应用广泛,紫草素(shikonin, SK)可从紫草科植物中提取。有报道称其可对多种肿瘤细胞株产生作用。本研究以ER阳性乳腺癌MCF-7细胞株为研究对象,探讨SK对MCF-7细胞的增殖、凋亡及其对雌激素受体表达的影响,以期为乳腺癌治疗提供一些思路。

1 材料与方法

1.1主要试剂与仪器

人乳腺癌MCF-7细胞购于中国科学院上海细胞库。SK、MTT购于Sigma公司(美国),二甲亚砜(DMSO)(Biosharp公司,美国),DMEM培养基粉末、胰蛋白酶、胎牛血清(FBS)购于Gibco公司(美国),碘化丙啶(propidium iodide,PI)购于Sigma公司(中国)。兔抗ER抗体购于Proteintech公司(美国),鼠抗β-actin抗体购于Biosharp公司(中国),山羊抗兔IgG和山羊抗鼠IgG购于Santa Cruz Biotechnology公司(美国)。

恒温CO2培养箱(Themo公司,美国),Bio Tek酶标仪(Synergy HT公司,美国),Accuri C6流式细胞仪(Becton Dicknson公司,美国),IX73倒置荧光显微镜(Olympus公司,日本)。ChemDoc XRS凝胶成像系统(Bio-Rad公司,美国)。

1.2细胞培养

用含10% FBS、10 U/ml青霉素、100 U/ml链霉素的DMEM培养基培养MCF-7细胞,37 ℃、5%CO2细胞培养箱中培养。

1.3MTT法检测细胞存活率

MCF-7细胞以6 000个/孔接种于96孔板中放入培养箱,培养24 h细胞贴壁后分别加入不同浓度的SK(0,1,2,4,8 μmol/L),每组4个复孔,放入培养箱中继续培养。加入药物24,48,72 h再加入15 μl MTT(5 mg/ml溶于PBS中),放入CO2培养箱孵育4 h,吸出96孔板内液体并加入150 μl DMSO,用酶标仪在490 nm处检测每孔的吸光度。

1.4集落克隆形成实验检测SK对MCF-7细胞克隆形成的抑制作用

6孔板每孔接种5 500个细胞,放入培养箱培养24 h,分别加入0,0.1,0.2,0.4 μmol/L的SK,培养5 d集落形成,除去培养液,用PBS洗2次,用5%多聚甲醛固定后弃去多聚甲醛,加5%结晶紫染色并在室温孵育10 min回收结晶紫,用双蒸水清洗2次。室温干燥,观察药物作用后集落形成情况,以此反应药物对MCF-7细胞的增殖抑制作用。100倍显微镜下每组选取5个视野,统计集落个数(每个集落至少包含50个细胞),进行统计分析。

1.5DAPI染色法检测SK对MCF-7凋亡的影响

以1.2×105细胞/孔接种于12孔板,培养24 h分别予每孔加入不同浓度SK(1,2,4,8 μmol/L),给药24 h吸尽培养液,加0.5 ml多聚甲醛固定10 min,去除固定液后用PBS洗2遍,3 min/次,避光条件下,加入DAPI染色30 min,用荧光显微镜观察细胞核的形态学变化。

1.6PI单染法检测SK作用后细胞的凋亡

12孔板中每孔接种1.4×105个细胞,放入培养箱培养24 h,分别加入不同浓度的SK(0,1,2,4,8 μmol/L),继续培养24 h,收取细胞行PI染色用流式细胞仪检测细胞凋亡率。

1.7Western blot法检测紫草素作用后雌激素受体的表达

应用不同浓度的SK(1,2,4,8 μmol/L)作用于MCF-7细胞24 h,收取细胞,并用RIPA蛋白裂解缓冲液在冰上裂解30 min,置入4 ℃离心机12 000 r/min离心30 min,提取上清进行蛋白定量后,进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,电泳结束将蛋白条带转至PVDF膜,蛋白封闭,分别孵育一抗、二抗并进行曝光。使用Image J 软件对蛋白条带灰度值进行扫描,并做统计分析。

1.8统计学分析

2 结果

2.1SK对MCF-7细胞的增殖抑制作用

MTT法检测不同浓度SK(0,1,2,4,8 μmol/L)作用MCF-7细胞株24,48,72 h,MCF-7细胞的增殖明显被抑制,随着SK浓度的增加和作用时间的延长,药物对细胞增殖抑制的作用增强(见图1),1,2,4,8 μmol/L SK作用相同分别与对照组(0 μmol/L SK)相比,差异有统计学意义。相同浓度SK作用后分别与前一时段比较,差异具有统计学意义(P<0.05)。

2.2SK对MCF-7细胞克隆形成的抑制作用

分别用0,0.1,0.2,0.4 μmol/L的SK处理MCF-7细胞5 d,与对照组相比MCF-7细胞株中雌激素受体的表达随SK浓度的增加而降低,药物作用组的细胞集落克隆数逐渐减少(见图2A)。100倍视野下统计形成集落数,各组分别与对照组比较,差异均具有统计学意义(见图2B)。

与对照组(0 μmol/L)相比,*P<0.05;与24 h比较,#P<0.05;与48 h相比,P<0.05图1 SK对MCF-7细胞存活率的影响Figure 1 The effect of SK on cell viability in MCF-7 cells treated with SK

2.3DAPI染色检测SK对MCF-7凋亡的作用

在分别使用1,2,4,8 μmol/L SK作用24 h,DAPI染色检测SK作用细胞后细胞核的变化,结果显示,随着药物浓度的增加,与对照组相比,细胞密度逐渐降低,细胞核呈现出浓染致密的固缩形态及颗粒状荧光,随着SK浓度增加,浓缩深染致密状的细胞核数目也逐渐增加(见图3,红色箭头所示)。

2.4PI染色检测SK对MCF-7细胞凋亡的影响

在不同浓度SK作用于乳腺癌MCF-7细胞株24 h,流式细胞术检测结果显示,随着给药浓度的增加,细胞凋亡率逐渐增加,与对照组相比,差异具有统计学意义(P<0.05,见图4)。

图2 SK对MCF-7细胞增殖的抑制作用Figure 2 Inhibition of SK on colony formation of MCF-SK 7 cells

图3 SK对MCF-7细胞凋亡的影响Figure 3 The effect of SK on apoptosis of MCF-7 cells

2.5SK对MCF-7细胞株雌激素受体表达的影响

Western blot 条带结果显示,SK作用于MCF-7细胞后ER的表达降低(见图5A)。测定灰度值并计算出分别应用1,2,4 μmol/L SK后,MCF-7细胞中ER的相对表达量分别是1.71±0.205,1.12±0.097,0.92±0.160,0.56±0.147(见图5B);ER抑制率分别是为(34.38±5)%、(44.24±15)%、(65.64±12)%。与对照组相比,应用2 μmol/L及4 μmol/L SK组,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01,见图5B)。

图4 SK对MCF-7细胞凋亡的作用Figure 4 The apoptosis induced by SK in MCF-7 cells

图5 SK作用于MCF-7细胞24 h雌激素受体的表达Figure 5 Expression of estrogen receptor in MCF-7 cells after treated by SK for 24 h

3 讨论

中药紫草提取物SK及其衍生物可通过Bax/Bcl-XL,MAPK,HIF-1,TRAP1,Nur77/Bcl-2,NF-κB以及ROS的参与介导细胞凋亡,并且可以引起肿瘤细胞坏死,抑制肿瘤转移,抗血管增生等[5]。并且,SK可诱导多种肿瘤细胞株凋亡,如人早幼粒细胞白血病HL60细胞株[6]、人肝癌细胞株Hep-1细胞[7]、人恶性黑色素瘤细胞株A375-S2[8]、人结肠癌细胞[9]及宫颈癌细胞株[10]的凋亡,并且明显抑制乳腺癌细胞增殖以及促进细胞凋亡[11,12]。文献报道SK联合他莫昔芬(tamoxifen,TAM)对乳腺癌细胞株有明显抑制作用[11]。

在对乳腺癌药物干预的探究中,SOFT和TEXT临床实验表明,降低机体内雌激素的作用有助于改善患者的生存状况[13],然而一部分病人在内分泌治疗中产生耐药[4],SK的抗肿瘤作用可能与乳腺癌内分泌治疗耐药存在共同的作用分子[14,15]。

在Yao等进行的研究中,SK联合TAM对MCF-7细胞存活率的抑制较单药应用效果明显增强[11]。本研究应用SK作用于ER阳性乳腺癌细胞MCF-7后,细胞增殖明显被抑制,并且随着给药浓度的增加,细胞凋亡比例也逐渐增加。Western blot法中检测到随着SK浓度的增加,蛋白条带显示ER表达降低。在动物实验中SK抑制肿瘤的情况较好,但在应用之后出现了体重减轻等副作用[16]。虽然SK联合TAM对MCF-7细胞株的作用强于单药[11],但考虑到SK副作用带来的不良影响[16],应用时或许需要降低SK剂量,本研究中较低浓度的SK对MCF-7细胞株的增殖抑制及凋亡作用不明显;本研究中SK可以降低ER表达,ER是TAM作用靶点,在低剂量SK联合TAM进行治疗时,可能会因为SK剂量低而使其抗肿瘤作用不明显,SK又可降低ER表达而使TAM不能充分发挥作用。然而,本研究的不足之处在于,未在分子水平上进行针对ER的干扰或过表达等实验。随后可以进行动物体内实验来探究SK的抗肿瘤效果及抗肿瘤机制。

以上研究结果提示,SK可以抑制乳腺癌MCF-7的增殖并诱导其凋亡,其机制可能与降低ER的表达有关。本研究为中药提取物SK用于治疗乳腺癌提供了一些思路和理论支持。

[1]Torre LA,Bray F,Siegel RL,etal.Global cancer statistics,2012[J].CA Cancer J Clin,2015,65(2):87-108.

[2]Clarke R,Tyson JJ,Dixon JM.Endocrine resistance in breast cancer-An overview and update[J].Mol Cell Endocrinol,2015,418 Pt 3:220-234.

[3]Gradishar W,Salerno KE.NCCN Guidelines Update:Breast Cancer[J].J Natl Compr Canc Netw,2016,14(5 Suppl):641-644.

[4]Viedma-Rodriguez R,Baiza-Gutman L,Salamanca-Gomez F,etal.Mechanisms associated with resistance to tamoxifen in estrogen receptor-positive breast cancer(review)[J].Oncol Rep,2014,32(1):3-15.

[5]朱梦媛,王汝冰,周文,等.紫草素及其衍生物抗肿瘤作用研究进展[J].药学学报,2012,47(5):588-593.

[6]Yoon Y,Kim YO,Lim NY,etal.Shikonin,an ingredient of Lithospermum erythrorhizon induced apoptosis in HL60 human premyelocytic leukemia cell line[J].Planta Med,1999,65(6):532-535.

[7]Chen CH,Chern CL,Lin CC,etal.Involvement of reactive oxygen species, but not mitochondrial permeability transition in the apoptotic induction of human SK-Hep-1 hepatoma cells by shikonin[J].Planta Med,2003,69(12):1119-1124.

[8]Wu Z,Wu L,Li L,etal.p53-mediated cell cycle arrest and apoptosis induced by shikonin via a caspase-9-dependent mechanism in human malignant melanoma A375-S2 cells[J].J Pharmacol Sci,2004,94(2):166-176.

[9]Hsu PC,Huang YT,Tsai ML,etal.Induction of apoptosis by shikonin through coordinative modulation of the Bcl-2 family,p27,and p53,release of cytochrome c, and sequential activation of caspases in human colorectal carcinoma cells[J].J Agric Food Chem,2004,52(20):6330-6337.

[10]Wu Z,Wu LJ,Tashiro S,etal.Phosphorylated extracellular signal-regulated kinase up-regulated p53 expression in shikonin-induced HeLa cell apoptosis[J].Chin Med J(Engl),2005,118(8):671-677.

[11]Yao Y,Zhou Q.A novel antiestrogen agent Shikonin inhibits estrogen-dependent gene transcription in human breast cancer cells[J].Breast Cancer Res Treat,2010,121(1):233-240.

[12]Hou Y,Guo T,Wu C,etal.Effect of shikonin on human breast cancer cells proliferation and apoptosis in vitro[J].Yakugaku Zasshi,2006,126(12):1383-1386.

[13]Bernhard J,Luo W,Ribi K,etal.Patient-reported outcomes with adjuvant exemestane versus tamoxifen in premenopausal women with early breast cancer undergoing ovarian suppression(TEXT and SOFT):a combined analysis of two phase 3 randomised trials[J].Lancet Oncol,2015,16(7):848-858.

[14]Lewis-Wambi JS,Jordan VC.Estrogen regulation of apoptosis:how can one hormone stimulate and inhibit?[J].Breast Cancer Res,2009,11(3):206.

[15]Ellis PA,Smith IE,Detre S,etal.Reduced apoptosis and proliferation and increased Bcl-2 in residual breast cancer following preoperative chemotherapy[J].Breast Cancer Res Treat,1998,48(2):107-116.

[16]Wang RB,Zhou W,Meng QQ,etal.Design,synthesis,and biological evaluation of shikonin and alkannin derivatives as potential anticancer agents via a prodrug approach[J].Chem Med Chem,2014,9(12):2798-2808.

Effects of shikonin on proliferation, apoptosis and expression of estrogen receptor in breast cancer MCF-7 cells

CHEN Yuzhong1, HAN Fusheng1, XU Lei1, ZHANG Zhirui2, PAN Qiong2, LIU Hao2, JIN Gongsheng1*

(1DepartmentofSurgicalOncology,FirstAffiliatedHospitalofBengbuMedicalCollege,Bengbu233000,China;2FacultyofPharmacy,BengbuMedicalCollege;*Correspondingauthor,E-mail:jgs2007@qq.com)

ObjectiveTo investigate the effect of shikonin(SK) on the expression of estrogen receptor(ER) and the proliferation and apoptosis in breast cancer cell line MCF-7.MethodsMCF-7 cells were exposed to different concentrations(0,1,2,4,8 μmol/L) of SK for 24, 48 and 72 h and the cell viability was assessed with MTT assay. The nuclear changes in MCF-7 cells treated with SK were observed under fluorescent microscope. The apoptotic cell after treated with 0,1,2,4,8 μmol/L SK for 24 h was quantified by flow cytometry. Colony formation assay was used to detect the proliferation of MCF-7 cells after treated with SK.Western blot was used to detect the expression of ER in MCF-7 cells after SK treatment.ResultsThe cell viability of MCF-7 cells decreased in a concentration-dependent manner after treated with SK(P<0.05). Low levels(0.1,0.2,0.4 μmol/L) of SK inhibited cell colony formation,and the number of colony formation of MCF-7 cells was significantly decreased in 0.1,0.2,0.4 μmol/L SK groups compared with control group(P<0.05). DAPI staining showed that MCF-7 cell nucleus became condensed and deep-stained gradually after treated with 1,2,4,8 μmol/L SK. The apoptotic rate was(7.0±1.27)%,(11.6±1.45)%, (15.1±1.36)% and (29.5±1.41)% in MCF-7 cells treated with 1,2,4,8 μmol/L SK, respectively, which was significantly higher than in control group(P<0.05). The expression of ER in MCF-7 cells treated with SK was decreased, and a significant difference was detected in MCF-7 cells exposed to 2, 4 μmol/L SK compared with control group(P<0.05).ConclusionSK could inhibit the proliferation and induce the apoptosis in MCF-7 cells, which may be related to down-regulation of the expression of estrogen receptor.

shikonin;breast cancer;MCF-7;proliferation;apoptosis;estrogen receptor

国家自然科学基金资助项目( 81372899);安徽省自然科学基金资助项目(1508085MH166)

陈玉忠,男,1990-02生,硕士,E-mail:cyz0903@foxmail.com

2016-06-08

R737.9

A

1007-6611(2016)08-0724-05

10.13753/j.issn.1007-6611.2016.08.011

猜你喜欢

紫草培养箱细胞株
婴儿培养箱的质控办法及设计改良探讨
微生物培养箱的选购与管理
小儿红屁股涂紫草油
基于模糊PID参数自整定的细胞培养箱温度控制算法
浅探婴儿培养箱校准中存在问题及质量管控
稳定敲低MYH10基因细胞株的建立
Rab27A和Rab27B在4种不同人肝癌细胞株中的表达
不同市场紫草相关质量的比较研究
稳定抑制PAK2蛋白表达的HUH—7细胞株的建立
HPLC测定滇紫草及其两个近缘种中乙酰紫草素的含量